Abstract
الزرد هي كائن نموذجا هاما مع المزايا الكامنة التي لديها القدرة على جعل الزرد نموذجا يطبق على نطاق واسع لدراسة توازن الطاقة والسمنة. صغر حجم الزرد يسمح لفحوصات على الأجنة التي ستجري في شكل لوحة 96- أو 384-جيدا والتكنولوجيات Morpholino وكريسبر أساس تعزيز سهولة التلاعب الجيني، والعلاج من تعاطي المخدرات من خلال تطبيق الحمام غير قابلة للحياة. وعلاوة على ذلك، الزرد مثالية لشاشات الوراثية إلى الأمام السماح لاكتشاف الجين الرواية. نظرا لحداثة النسبية للالزرد كنموذج للسمنة، فمن الضروري لتطوير الأدوات التي تستغل بشكل كامل هذه الفوائد. هنا، نحن تصف طريقة لقياس استهلاك الطاقة في الآلاف من الزرد الجنينية في وقت واحد. قمنا بتطوير كامل منصة صفيحة ميكروسكوبية الحيوانات التي نستخدمها لوحات 96-جيدا لعزل الأسماك الفردية ونقيم التراكمي إنتاج NADH 2 باستخدام المتاحة تجاريا زراعة الخلايا جدوى إعادةوكيل alamarBlue. في متغيرات الحرارة ترتبط بإحكام العلاقة بين NADH 2 إنتاج واستهلاك الطاقة. هذا الاختبار نفقات الطاقة يخلق القدرة على الشاشة بسرعة التلاعب الدوائية أو الوراثية التي تغير مباشرة نفقات الطاقة أو تغيير الاستجابة لدواء التطبيقية (على سبيل المثال محسسات الأنسولين).
Introduction
الفأر هو حاليا النموذج السائد للأبحاث السمنة. كانت فترة جيل قصيرة والأدوات الجينية المتاحة في الماوس لا مثيل لها حتى الآن. ومع ذلك، فقد الزرد أيضا فاصل الجيل قصيرة (3-4 أشهر)، ويفوق حتى الماوس في سهولة التلاعب الجيني 1،2. يحافظ على الزرد ما يقرب من 90٪ من الجينات الثدييات، في حين يتجاوز بكثير الماوس في عدد من ذرية والإمكانات للاستخدام في شاشات الوراثية والمخدرات 3.
للاستفادة من إمكانات من طراز الزرد للدراسات في السمنة، ويجب وضع المقايسات للتحقيق في العوامل التي تؤثر على تنظيم وزن الجسم، بما في ذلك نفقات الطاقة. كما تتم معالجة الأيض من خلال β للأكسدة وحمض الكربوكسيليك دورة الأكسجين ويستهلك وينتج NADH 2. وهكذا، NADH 2 هو مؤشر مباشر على تدفق الأيض من خلال المسارات الأيضية (التمثيل الأيضي الأكسدة). في poikilotherms، H + تسرب من خلال غشاء الميتوكوندريا الداخلية، التي uncouples NADH 2 الأكسدة من ATP التوليف، هو 4-5 أضعاف أقل مما كانت عليه في متجانسات الحرارة 4. وفقا لذلك، في NADH الزرد 2 يرتبط بإحكام جدا لإنتاج ATP من خلال الفسفرة التأكسدية. هنا، نحن تصف مقايسة الذي يقيس NADH 2 الإنتاج في الزرد اليرقات كوكيل للإنفاق الطاقة 5.
استهلاك الأوكسجين هو المعيار الذهبي لقياس استهلاك الطاقة. ومع ذلك، وإلى الاستفادة القصوى من إمكانيات إنتاجية عالية من الزرد، ويجب أن تكون المقايسات من نفقات الطاقة قابلة للالإنتاجية العالية. نظم استهلاك الأوكسجين التي تعتمد على غرفة مغلقة تعميم نظام محدودة في الإنتاجية من قبل عدد من الغرف المتاحة 6. فتح O الهواء 2 استهلاك / CO 2 فحوصات الإنتاج كما تم تطبيقه في الزرد 5،7. هذه 96-جيدا في الهواء الطلق لوحة قاعدةنظم د قابلة للإنتاجية عالية. للأسف، تبادل الغازات مع البيئة يحد حساسية هذه المقايسات. نشرنا مؤخرا تطبيق مقايسة التي تراقب NADH 2 باستخدام مؤشر الأكسدة alamarBlue 5. هذا الاختبار يتغلب على القيود في سرعة وحساسية مشتركة لتحليل استهلاك الأوكسجين في الزرد.
الزرد أصبحت نموذجا متزايد الأهمية للدراسات كله توازن الطاقة في الجسم. في جزء منه، لأن الزرد هي قابلة للاستخدام في شاشات الوراثية إلى الأمام وشاشات المخدرات. وعلاوة على ذلك، تستهدف التلاعب الجيني، بما في ذلك ضربة قاضية واضعا في، ويمكن تطبيقها بسرعة. لقد أظهرنا سابقا أن هذا الاختبار يمكن دمجه مع تطبيق حمام المخدرات وضربة قاضية وراثية أو خروج المغلوب لتحديد المركبات والجينات التي تغير معدل الأيض 5. وعلاوة على ذلك، تم تصميم هذا الاختبار لاستغلال مزايا الإنتاجية العالية المتأصلة في الزرد.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
ملاحظة: هذا البروتوكول يتبع المبادئ التوجيهية للجامعة أريزونا مكتب للسلوك المسؤول من البحوث وتمت الموافقة من قبل لجنة رعاية واستخدام الحيوان المؤسسي
1. تربية اسماك الزرد والصيانة الأجنة
- إعداد E3 المتوسط الجنين 8. جعل 60X حل سهم، ويحل 34.8 غرام كلوريد الصوديوم، 1.6 غرام بوكل، 5.8G CaCl 2 ● 2H 2 O، و9.78 ز MgCl 2 ● 6H 2 O في 1.95 L ddiH 2 O. ضبط درجة الحموضة إلى 7.2 باستخدام هيدروكسيد الصوديوم وحمض الهيدروكلوريك ضبط مستوى الصوت إلى 2 لتر باستخدام ddiH 2 O.
- لإعداد 1X E3 المتوسط الجنين، وتمييع 16.5 مل 60X الأسهم في 1 L ddiH20. إضافة 100 ميكرولتر 1٪ الميثيلين الأزرق.
- تربية
- منزل ذكر وأنثى الأسهم الحضنة (7-18 شهرا من العمر) على حدة لتحقيق أقصى قدر من الخصوبة.
- تحويل الأنوار 1-2 ساعة قبل يوم قبل أن يتم المطلوب البيض. إعداد التزاوج (1 الذكور و1-2 إناث) في جأقفاص rossing كما هو موضح سابقا 9. أقفاص عبور تسمح للبيض للهروب الافتراس لأنها تمر من خلال قاعدة مثقبة من إدراج دبابات التي تقام في الأسماك البالغة.
- اختياري: لتربية الموقوتة، (كما ستكون هناك حاجة لدراسات شملت morpholino حقن)، فصل الذكور والإناث الأسماك التي كتبها مقسم البلاستيك الشفاف، إزالة هذا في الصباح أن يؤدي إلى زرع توقيت البيض والإخصاب. لmorpholino الدراسات وإجراء عمليات حسابية القدرة على تقييم عدد من الأسماك الجنينية المطلوبة لكل معاملة. دون تقدير لحجم تأثير أو الاختلاف، يمكن تشغيل محاكمة الأولية مع ن = 8.
- صب البيض من القفص معبر في طبق بتري (100-150 الأجنة / 10 سم طبق بتري). السماح للبيض لتستقر في قاع الطبق وتخلصي من الماء. إزالة أي المياه المتبقية باستخدام طرف غرامة نقل المتاح ماصة. إضافة مرة أخرى E3 المتوسط الجنين في الخطوة 1.1.
- جعل بالعربيةعرجاء ماصة المتاح مصقول للبيضة في المستقبل، ونقل الأسماك. باستخدام مقص، وقطع نقل المتاح ماصة تخرج في تخريج 0.25 مل. لإزالة حواف خشنة، والبولندية لهب قطع أكثر من طرف على موقد بنسن.
- الحفاظ على الأسماك الجنينية إلى 4 أيام بعد الإخصاب (إدارة الشرطة الاتحادية) في 10 سم أطباق بتري في الزرد المتوسطة E3 الجنين في 28.5 ○ C. كل يوم مرتين، واستخدام اللهب مصقول تخرج نقل المتاح ماصة لإزالة أي بويضة غير مخصبة أو الأجنة الميتة (ظهور الأبيض مبهمة). مرة واحدة كل يوم، استبدال E3 المتوسط الجنين. تخلصي E3 المتوسط الجنين، وإزالة السائل المتبقي باستخدام طرف غرامة نقل المتاح ماصة، وإضافة مرة أخرى قبل تحسنت (28.5 ○ C) E3 المتوسط الجنين.
2. إعداد الفحص الحل
- تحضير محلول الفحص وفقا للجدول 1. محلول معقم مرشح فحص باستخدام فلتر 0.22 ميكرومتر. قبل لفحص بدء، تدفئة حل فحص العقيمة في 28.5 ○ Cحمام الماء.
| عنصر | ٪ من إجمالي | الحجم (ميكرولتر / 10 مل) |
| 60X E3 الأجنة المتوسطة | 1،667 | 166.7 |
| منزوع الأيونات المزدوج (DDI) H 2 0 | 96،233 | 9623.3 |
| الامار الأزرق | 1 | 100 |
| 400 ملي هيدروكسيد الصوديوم | 1 | 100 |
| DMSO | 0.1 | 10 |
الجدول 1. الفحص المتوسطة
3. إجراء الفحص
- شطف الأجنة الزرد 3 مرات مع العقيمة التي تمت تصفيتها E3 المتوسط الجنين. الجمع بين جميع الأجنة الزرد قابلة للحياة من مخلب في دورق. تصفية العقيمة 75 مل E3 المتوسط الجنين. باستخدام طرف غرامة نقل المتاح ماصة، وإعادةنقل أكبر قدر من المتوسط الجنين E3 من الأجنة الزرد وقت ممكن. إضافة إلى الوراء 20 مل العقيمة التي تمت تصفيتها E3 المتوسط الجنين. إزالة واستبدال E3 المتوسط الجنين 3 مرات.
- لوحة 1 الأسماك في كل من 93 بئرا من الأسود 96-جيدا وقفت أسفل لوحة واضحة. نقل الأسماك الجنينية لوحة من قبل التقاط فردي الجنين داخل اللهب مصقول تخرج من البلاستيك القابل للتصرف نقل ماصة (الخطوة 1.5) وإخراج بلطف في البئر. نقل E3 المتوسط الجنين المأخوذة من دورق يحتوي على الأسماك تشطف في 3 آبار فارغة. هذا يضمن أن بئر فارغة تعرضوا لنفس الماء بالضبط كما الآبار التي تحتوي على الأسماك. يجب على الآبار التي تحتوي على الأسماك والآبار فارغة تكون على الاقل ½ الكامل (200 ميكرولتر) في ختام هذه الخطوة.
- استبدال E3 الجنين المتوسطة مع الحل فحص في جميع الآبار 96، بما في ذلك آبار فارغة. يجب أن يتم تنفيذ هذه الخطوة 1 عمود في وقت لكل من الأعمدة 12 في 96 لوحة جيدا. باستخدام طرف غرامة التخلص منها عبرفر ماصة، وإزالة E3 المتوسط الجنين من كل جيدا في عمود واحد من لوحة (8 آبار). الحرص على عدم لمس الجنين الزرد. إضافة 300 ميكرولتر من محلول الفحص على كل جانب من التي تمت إزالة المياه. تكرار إزالة E3 المتوسط الجنين واستبدال مع حل فحص لجميع الأعمدة 12 لوحة.
- اختياري: لاختبار تغير معدل الأيض ردا على المجمع، وجعل الحل الذي هو 100 مرات (100X) تركيز العلاج المطلوب. من المذكرة، وضمان أن الحل 100X لا يتجاوز 10٪ DMSO للحد من تركيز DMSO النهائية بما لا يزيد عن 0.1٪. إضافة 3 ميكرولتر من الحل 100X إلى كل من الآبار العلاج.
ملاحظة: إجراء العمليات الحسابية القدرة على تقييم عدد من الآبار العلاج. ومع ذلك، من دون تقدير لحجم الاستجابة أو الاختلاف، يمكن تشغيل محاكمة تمهيدية في 8 مجمع المعالجة و8 مركبة تعامل آبار المراقبة التي تحتوي على الأسماك.- إضافة 3 ميكرولتر من السيطرة على السيارة لسيطرة (لا دروز العلاج) الآبار التي تحتوي على الأسماك. لضمان الاستجابة الفلورسنت إلى المركب هو نتيجة للإجراءات داخل الأسماك، وتطبيق العلاجات الدوائية والمركبات إلى 3 آبار فارغة في 96 لوحة جيدا.
- قراءة الأسماك شغل وحة على قارئ لوحة الفلورسنت مع الطول الموجي الإثارة في 530 نانومتر والطول الموجي الانبعاثات في 590 نانومتر.
- مكان لوحة في حاضنة ترطيب مجموعة إلى 28.5 ○ C (الحفاظ على لوحة في الظلام طوال فحص لتجنب photobleaching من محلول الفحص). يمكن تشغيل مقايسة لفترات من الزمن تتراوح من 1 ساعة إلى 24 ساعة. مدة الاختبار يعتمد على الهدف من الدراسة. لاختبار استجابة لمركب غير مستقر قصير المفعول قد تكون قصيرة المدة الأنسب. بعد، لاختبارات مجمع مستقرة أو اختبارات التأثيرات الجينية، وتعظيم مدة الفحص هو الأفضل لاستغلال المزايا المرتبطة إشارة تراكمية.
- في نقطة زمنية محددة مسبقا (انظر الخطوة 3.6 للمساعدة في تحديد التوقيت)قراءة مضان لوحة مليئة الأسماك مرة أخرى مع نفس الإعدادات كخطوة 3.5.
4. تقييم التغير النسبي في الإسفار أسوشيتد مع العلاج
- حساب التغير في مضان من كل بئر من خلال طرح مضان في وقت 0 من مضان في ختام الدراسة. يجب آبار بلا الأسماك (الفراغات) لديها قيم بالقرب من 0، أقل بكثير من القيم من الآبار التي تحتوي على الأسماك.
تغيير في الإسفار = الإسفار في ختام - مضان في وقت 0 - للتأكد من التغير النسبي في مضان، وحساب متوسط التغير في مضان لآبار المراقبة ثم يقسم التغير في مضان من كل بئر من متوسط التغير في مضان من آبار المراقبة. وتجدر الإشارة، يمكن التحكم تكون إما الضوابط سيارة أو الضوابط الوراثية.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
حل الاختبار لا يزيد مضان في غياب الأسماك الجنينية (الشكل 1). ومع ذلك، فإن فحص حساس جدا لتغيرات صغيرة في معدل الأيض داخل البئر. سمكة واحدة داخل بئر يخلق إشارة مختلفة إلى حد كبير من الآبار فارغة في حدود 1 ساعة (P <0.0001). الشكل 2 يوفر التمثيل البصري من الإشارات التي تولدها الأسماك الجنينية بعد 24 ساعة من الحضانة. لغرض هذه الصورة استخدمت الآبار جانب واضحة. بعد، ويفضل الآبار جانب السوداء لأداء الاختبار لمنع الرشح من إشارة الفلورسنت من الآبار القريبة.
لأن الحد يسببها NADH 2 من alamarBlue هو غير قابل للعكس، وإشارة يتراكم مع مرور الوقت. وهذا يسمح لتغييرات صغيرة ليتم تضخيمه. إظهار أن الاختلاف تتراكم وبالتالي تزيد مع الوقت، ونحن رصد التغير النسبي في مضان الناجمة عن 1-5 الأسماك في 1 و 2 و 4 ساعة (الشكل 3). في كل عدد من الأسماك / جيد التغير النسبي في مضان زاد بشكل ملحوظ مع مرور الوقت (P <0.001). الأهم من ذلك، لأن إشارة يتراكم مع الوقت، وحجم الاختلافات في التغيير مضان التي تنتج عن التلاعب في عدد من الأسماك / جيدا أكثر قوة في 4 ساعات من الساعة 1 ساعة من الحضانة. وهكذا، من خلال زيادة مدة التعرض نتمكن من تعزيز القدرة على الكشف عن الاختلافات المرتبطة علاج معين.
الشكل 1. مقارنة الضوضاء إلى الإشارة. يتم إنشاء التغيير كشف في مضان بنسبة 1 الزرد في 96 لوحة جيدا في 1 ساعة. الآبار التي لا تحتوي على الأسماك (الفراغات) توليد إشارة صغيرة. أشرطة الخطأ تمثل SEM (ن = 5-8). الرجاء انقر هنا لعرض نسخة أكبر منهذا الرقم.
الشكل 2. التمثيل المرئي للفحص لوحة في 24 ساعة. الصورة التمثيلية للنتائج التي تم الحصول عليها باستخدام هذا الاختبار. آبار الوردي تدل على الأسماك مع ارتفاع معدل التمثيل الغذائي، والآبار الأرجواني معدل التمثيل الغذائي المعتدل، والآبار الزرقاء معدل الأيض المنخفض. الرجاء انقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.
الاختلافات الشكل 3. الإشارة تضخيم مع الوقت. والفرق في إشارة الفلورسنت المتولدة من خلال تغيير عدد من الأسماك / جيد يزيد مع مرور الوقت. لأن إشارة يتراكم مع الوقت، وحجم التغير مضان يتباعد مع betweensamples الزمن tقبعة تختلف في معدل توليد إشارة. أشرطة الخطأ تمثل SEM (ن = 7).
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
سوف التلوث بالبكتيريا أو الفطريات يحد بشكل كبير من تطبيق هذا الاختبار. الأزرق الميثيلين في المتوسط الجنين E3 يحد من إمكانية التلوث الفطري. في جميع أنحاء الجنين تربية فمن الأهمية بمكان أن الرعاية التي اتخذت لإزالة الأجنة الميتة مرتين كل يوم. بالإضافة إلى ذلك، فمن الضروري أن يشطف جيدا الأجنة مع E3 العقيمة المتوسط الجنين في يوم الفحص بدء. هذه الخطوات من 2 إلى الحد من احتمالات التلوث الجرثومي للأجنة. إدراج الآبار فارغة هو موضح في الخطوة 3.2 يسمح للكشف عن أي تلوث بكتيري. التلوث الجرثومي التي تعطي إشارة قابلة للقياس أمر نادر الحدوث. ومع ذلك، إذا الآبار فارغة تفعل تظهر إشارة قوية، وينبغي تكرار الفحص مع الحرص على الحفاظ على نظافة الجنين. إذا يتوقع المستخدم أن التلوث هو الناشئة قبل جمع الأجنة، ويمكن تبييض الأجنة كما هو موضح سابقا (ص 22) (10). بدلا من ذلك، إذا اشتبه المجرب أنتلوث يحدث بعد جمع يجوز للمستخدم استخدام E2 مع البنسلين والستربتومايسين إلى الخلف الأجنة إلى 4 DPF (ص 23) (10).
على الرغم من أن هذا الاختبار هو قيمة لتطبيقها في الأجنة، ونحن لم تختبر للصحة في الزرد الكبار. ونعتقد أن وظيفة من هذا الاختبار سيكون محدودا في الأسماك البالغة التي كتبها اختراق الأنسجة الفقراء من AlamarBlue. وعلاوة على ذلك، في الأسماك تغذية الجراثيم الأمعاء قد ينتج إشارة عميقة، لا تدل على عملية التمثيل الغذائي الأسماك. وبالتالي، يقتصر هذا الاختبار لاستخدامها في صفار تغذية الأسماك الجنينية. الخمول النسبي من الأسماك الجنينية يوفر ميزة فريدة من نوعها، وهذا يحد من التقلبات التي من شأنها أن تترافق مع النشاط الناجم عن استهلاك الطاقة 11. وبالتالي هذا الاختبار هو أداة فريدة من نوعها لفحص استجابة مستوى الأيض للتلاعب الجيني أو الدوائي في نظام كل الحيوانات.
الزرد سرعان ما أصبحت نموذجا رائدا لماضطرابات etabolic التي تصاحب السمنة. في الواقع، يتم نشرها هناك نماذج من كل من السمنة الزرد المعدلة وراثيا والتي يسببها النظام الغذائي 12،13. على غرار نماذج الماوس، والنظام الغذائي الناجم عن البدانة في الزرد زيادة الدهون الثلاثية في الدم والدهون الكبدية تراكم 12. وعلاوة على ذلك، الزرد نفرط وارتفاع السكر في الصيام، مما يدل على التعصب الجلوكوز 14. باستخدام مقايسة الموصوفة هنا أظهرنا أن 24 ساعة من المعالجة مع ميتفورمين، والمحسس الأنسولين، يزيد من مستوى الأيض استجابة للعلاج الانسولين 5. وهكذا، فإن الزرد قد يثبت أنه نموذج حيواني كله المثالي لاكتشاف العقاقير التي تعزز الحساسية للانسولين (الجنين) وإقامة فعاليتها في التخفيف من السمنة المرتبطة مقاومة الانسولين (الكبار).
تطوير نماذج الزرد السمنة الوراثية والنظام الغذائي الناجم التي تحاكي الظواهر التي لوحظت في الثدييات السمنة يخلق زخما لبدء ستو الزردوفاة تركز على أمراض التمثيل الغذائي. فحوصات إنتاجية عالية ضرورية لتقدير كامل قيمة نموذج الزرد إلى دراسات توازن الطاقة. وأدوات مبتكرة مصممة لتقييم حملة phagic تسمح للشاشات التي تركز على استهلاك الطاقة، في حين المقايسات تخزين إنتاجية عالية الدهون يؤدي إلى الدراسات على الجسم كله دهن التوازن 15-17. مقايسة وصفنا هنا يوفر أداة إنتاجية عالية لتقييم دور الجينات، المركبات أو تفاعلاتها على كامل نفقات الطاقة في الجسم.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| AlamarBlue | Fisher Scientific | 10-230-103 | Manufactured by Thermo Scientific |
| Fine Tip DisposableTransfer Pipette | Fisher Scientific | 13-711-26 | Manufactured by Thermo Scientific |
| Fisherbrand Graduated Disposable Transfer Pipette | Fisher Scientific | 13-771-9AM | Manufactured by Thermo Scientific |
| Black sided clear bottom 96-well plates | Fisher Scientific | 50-320-785 | Manufactured by E&K Scientific Products Inc. |
References
- Jao, L. E., Wente, S. R., Chen, W. Efficient multiplex biallelic zebrafish genome editing using a CRISPR nuclease system. PNAS. 110, 13904-13909 (2013).
- Kimura, Y., Hisano, Y., Kawahara, A., Higashijima, S. Efficient generation of knock-in transgenic zebrafish carrying reporter/driver genes by CRISPR/Cas9-mediated genome engineering. Sci. Rep. 4, 6545 (2014).
- Lieschke, G. J., Currie, P. D. Animal models of human disease: zebrafish swim into view. Nat. Rev. Genet. 8, 353-367 (2007).
- Brand, M. D., Couture, P., Else, P. L., Withers, K. W., Hulbert, A. J. Evolution of energy metabolism. Proton permeability of the inner membrane of liver mitochondria is greater in a mammal than in a reptile. Biochem. J. 275 (Pt 1), 81-86 (1991).
- Renquist, B. J., Zhang, C., Williams, S. Y., Cone, R. D. Development of an assay for high-throughput energy expenditure monitoring in the zebrafish. Zebrafish. 10, 343-352 (2013).
- Livingston, R. J. A volumetric respirometer for long-term studies of small aquatic animals. J.Mar. Biol. Assoc. U.K. 48, 485-497 (1968).
- Makky, K., Duvnjak, P., Pramanik, K., Ramchandran, R., Mayer, A. N. A whole-animal microplate assay for metabolic rate using zebrafish. J. Biomol. Screen. 13, 960-967 (2008).
- E3 medium (for zebrafish embryos) Cold Spring Harb. Protoc. , http://cshprotocols.cshlp.org/citmgr?gca=protocols%3B2011%2F10%2Fpdb.rec66449 (2011).
- Nasiadka, A., Clark, M. D.
- Brand, M., Granato, M., Nusslein-Volhard, C. Zebrafish, A practical approach. Nusslein-Volhard, C., Dahm, R. , Oxford University Press. (2002).
- Fry, F. E. J., Hart, J. S. Cruising speed of goldfish in relation to water temperature. J. Fish. Res. Board Can. 7, 169-175 (1948).
- Oka, T., et al. Diet-induced obesity in zebrafish shares common pathophysiological pathways with mammalian obesity. BMC physiol. 10 (21), (2010).
- Song, Y., Cone, R. D. Creation of a genetic model of obesity in a teleost. FASEB J. 21, 2042-2049 (2007).
- Maddison, L. A., Joest, K. E., Kammeyer, R. M., Chen, W. Skeletal muscle insulin resistance in zebrafish induces alterations in beta-cell number and glucose tolerance in an age and diet dependent manner. Am. J. physiol. Endocrinol. , (2015).
- Flynn, E. J. 3rd, Trent , C. M., Rawls, J. F. Ontogeny and nutritional control of adipogenesis in zebrafish (Danio rerio). J. lipid res. 50, 1641-1652 (2009).
- Shimada, Y., Hirano, M., Nishimura, Y., Tanaka, T. A high-throughput fluorescence-based assay system for appetite-regulating gene and drug screening. PloS one. 7, e52549 (2012).
- Tingaud-Sequeira, A., Ouadah, N., Babin, P. J. Zebrafish obesogenic test: a tool for screening molecules that target adiposity. J. lipid res. 52, 1765-1772 (2011).
