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Article de méthode

Imagerie en temps réel des plantes Dynamics de surface cellulaire avec angle variable épifluorescence Microscopie

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DOI :

10.3791/53437

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12 décembre 2015

Dans cet article

Résumé

L'objectif de ce protocole est de démontrer comment surveiller la dynamique des protéines étiquetées par fluorescence sur des surfaces de cellules végétales avec angle variable épifluorescence microscopie, montrant clignoter points de GFP-tagged PATR1, une protéine de trafic membranaire, dans le cortex cellulaire du complexe stomatique dans Arabidopsis thaliana.

Résumé

La surface cellulaire d’une plante est son interface pour percevoir les signaux environnementaux ; elle répond par des changements biologiques cellulaires tels que le trafic membranaire et le réarrangement cytosquelettique. L’analyse d’images en temps réel et à haute résolution de ces événements intracellulaires augmentera la compréhension de la biologie des cellules végétales au niveau moléculaire. La microscopie à épifluorescence à angle variable (VAEM) est une technique émergente qui fournit des images en accéléré de haute qualité de protéines marquées par fluorescence à la surface des cellules végétales. Dans cet article, les procédures pratiques sont décrites pour la préparation des échantillons VAEM, le réglage du système optique VAEM, la capture vidéo et l’analyse d’images. A titre d’exemple d’observation VAEM, des résultats représentatifs sont présentés sur la dynamique des PATROL1. Il s’agit d’une protéine essentielle au mouvement des stomates, dont on pense qu’elle est impliquée dans l’administration de la pompe à protons aux membranes plasmiques dans le complexe stomatique d’Arabidopsis thaliana. L’observation en temps réel des cellules de garde et des cellules subsidiaires dans les cotylédons d’A. thaliana a montré que les PATROL1 marquées par fluorescence apparaissaient sous forme de structures en forme de points sur les membranes plasmiques pendant plusieurs secondes, puis disparaissaient. L’analyse kymographe des données de films VAEM a déterminé la distribution temporelle de la présence (appelée « temps de séjour ») des structures en forme de points. L’utilisation de VAEM est abordée dans le contexte de cet exemple.

Introduction

La surface de la cellule végétale, y compris la membrane plasmique et son cytoplasme immédiatement adjacent, est la principale région de la perception d’une cellule végétale et l’intégration des signaux biotiques et abiotiques de l’environnement extracellulaire. En réponse à ces signaux, les composants de surface cellulaire, y compris les protéines de la membrane plasmique et le cytosquelette cortical, subissent des changements dynamiques, sur une échelle de temps allant de quelques secondes à1 à 4 minutes. Ainsi, l’imagerie en temps réel et à haute résolution des protéines fluorescentes à la surface des cellules peut éclairer les réponses d’une plante aux ....

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Protocole

1. Préparation de semis

  1. Stériliser les graines.
    1. Préparer la solution de stérilisation en ajoutant 500 ul de NaClO (chlore disponible: 5,0%) et 1 ul de 10% de Triton X-100 à 500 pi d'eau stérile.
    2. Lieu ca. 10 transgénique A. thaliana graines transportant GFP-PATR1 8 dans un tube de 1,5 ml.
    3. Ajouter une solution d'éthanol 1 ml de 70%, et bien mélanger en inversant cinq fois. Laissez pendant 1 min.
    4. Observer les graines tombent au fond du tube. Dans une hotte à flux laminaire propre, retirez délicatement l'éthanol à 70% à l'aide d'une micropipette, et ajouter 1 ml de solution....

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Résultats

Dans cet article, de la vidéo, les protocoles d'observation VAEM de GFP-PATR1 dans A. cellules complexes thaliana cotylédons stomates sont fournis. Montage de chute de Sky est une méthode de préparation simple qui peut aider à réduire l'apparition de bulles d'air dans les préparations VAEM de A. cotylédons thaliana (Figure 1). Une inclinaison trop importante du laser d'entrée et / ou z-positionnement des spécimens pour VAEM fournira une image claire. S.......

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Discussion

Dans cet article, de vidéo, les protocoles sont donnés pour surveiller et mesurer le comportement dynamique des points GFP-PATR1 sur le complexe stomatique de Arabidopsis thaliana. Comme indiqué ici, l'observation VAEM est un outil puissant pour l'imagerie en direct de la surface des cellules de la plante. Dans les conditions expérimentales utilisées ici pour la surveillance GFP-PATR1, il y avait très peu de photoblanchiment de fluorescence dans l'échantillon utilisé pendant 1 min de capture vidéo, .......

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Déclarations de divulgation

L'auteur n'a rien à révéler.

Remerciements

Je suis reconnaissant au Dr Masaru Fujimoto pour ses suggestions techniques pour VAEM. Je suis également reconnaissant au professeur Koh Iba et au Dr Mimi Hashimoto-Sugimoto d’avoir fourni des plantes transgéniques PATROL1 GFP et d’avoir discuté de PATROL1. Je remercie le professeur Seiichiro Hasezawa pour son soutien continu à mon travail. Ce travail a été soutenu par la Société japonaise pour la promotion de la science (JSPS) numéro de subvention KAKENHI 25711017.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Microscope inverséOlympusIX-73
Unité TIRFObjectif OlympusIX3-RFAEVAW
TIRF  ;OlympusUAPON 100 & fois ; OTIRF  ;NA = 1,49
Boîtier de contrôle d’angle laserChuo SeikiQT-AK
Laser semi-conducteur à pompage optiqueSaphirTM LP USB 488-20 CDRH Laser
510&ndash ; Filtre passe-bande 550 nmOlympusU-FBNA
EM Caméra CCDHamamatsu PhotonicsImagEM C9100-13
Unité de changement de grossissement de la caméra à monture C  ;Logiciel OlympusU-TVCAC
MetaMorphDispositifs moléculairesMetaMorph version 7.7.11.0
Manuel de microscopie TIRFOlympusAX7385Instructions : Système d’éclairage par réflexion interne totale (imprimé au Japon le 24 août 2012)
Huile d’immersion Huile d’immersionOlympusTypr-Fne = 1,518 (23 degrés)

Références

  1. Konopka, C. A., Bednarek, S. Y. Comparison of the dynamics and functional redundancy of the Arabidopsis dynamin-related isoforms DRP1A and DRP1C during plant development. Plant Physiol. 147 (4), 1590-1602 (2008).
  2. Fujimoto, M., et al.

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Réimpressions et autorisations

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