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Article de méthode

Grand Dauphin (Tursiops truncatus) spermatozoïdes : Collection, cryoconservation et la fécondation In Vitro hétérologue

14.1K vues

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DOI :

10.3791/55237

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21 août 2017

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Dans cet article

Résumé

Nous présentons ici les protocoles qui ont été utilisées avec succès pour la collection de spermatozoïdes de Dauphin, cryoconservation et les performances FIV hétérologue ovocytes bovines.

Résumé

L’utilisation de spermatozoïdes cryoconservés Dauphin facilite l’échange de matériel génétique entre les parcs aquatiques et rend les spermatozoïdes accessible aux laboratoires d’études afin d’améliorer nos connaissances de la reproduction des mammifères marins. FIV hétérologue, un remplacement pour une FIV homologue, pourrait fournir un moyen de tester la fertilité du sperme potentielle ; pour étudier la physiologie des gamètes et début du développement embryonnaire ; et d’éviter l’utilisation d’ovocytes Dauphin précieux, qui sont difficiles à obtenir. Nous présentons ici les protocoles qui ont été utilisées avec succès pour recueillir et cryopréserver des spermatozoïdes de Dauphin. La collecte de sperme s’effectue par stimulation manuelle des dauphins formés. Cryoconservation s’effectue à l’aide d’un extenseur de jaune d’oeuf-basée de TRIS avec le glycérol. En outre, nous présentons un protocole décrivant les FIV hétérologue utilisant Dauphin spermatozoïdes et les ovocytes bovines et qui vérifie la nature hybride de l’embryon qui en résulte, à l’aide de la PCR. La fécondation hétérologue soulève des questions sur la fécondation et peut servir comme un outil pour étudier la physiologie des gamètes et début du développement embryonnaire. En outre, le succès de la FIV hétérologue démontre le potentiel de cette technique pour tester le sperme Dauphin fertilisation de capacité, qui mérite un examen plus poussé.

Introduction

Techniques de procréation assistée sont peu développés chez les animaux sauvages, y compris les mammifères marins. L’absence de méthodes sensibles pour évaluer la réussite fécondante du sperme contribue au développement lent des technologies de la reproduction chez les espèces comme les dauphins. Il n’était pas jusqu'à une date récente que les paramètres fondamentaux séminales du grand dauphin (Tursiops truncatus) ont été signalés1,2. Toutefois, des variables telles que la motilité et la morphologie, bien que largement utilisé, donnent des informations limitées sur l’efficacité reproductive. Le meille....

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Protocole

déclaration d’éthique : toutes les procédures expérimentales ont été examinés et approuvés par le Comité de l’utilisation de l’Instituto Nacional de Investigación y Tecnología Agraria y Alimentaria (INIA) et d’institutionnels animalier. Toutes les expériences ont été effectuées conformément au Guide pour le soin et l’utilisation des animaux de laboratoire, tel qu’adopté par la société pour l’étude de la Reproduction et à la Loi sur le bien-être Animal pour les soins des mammifères marins.

1. dolphin prélèvement du sperme et la cryoconservation

  1. préparation
    1. FERT rendre médium (héparine - et hypotaurine-lib....

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Résultats

Toutes les résultats, les tables et les figures (1 et 2) présentées ici ont été reproduites avec la permission de3.

Les spermatozoïdes des dauphins ont grande motilité après congélation-décongélation

Les éjaculats congelé-décongelé Dauphin a montré les pourcentages (% ± SD) 84.5 ± 5,3 total motile et 69,1 ± 5.1 progressive spermatozoïdes. En termes.......

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Discussion

Pour de nombreuses espèces de mammifères différents, il y a divers avantages à l’utilisation de sperme congelé-décongelé. Celles-ci comprennent la possibilité de transférer le matériel génétique précieux, le potentiel de distribution dans le monde entier, le faible risque de contamination et la capacité de préserver des gamètes mâles pendant des décennies. L’utilisation de spermatozoïdes cryoconservés est essentielle pour le grand dauphin, parce que cette espèce est protégée en vertu de l’annexe II de la CITES, qui limit.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Remerciements

ses travaux ont été financés par le ministère espagnol de l’économie et la compétitivité (AGL2015-70140-R à D. Rizos), AGL2015-66145R A. Gutierrez-Adan et J. F. Pérez-Gutiérrez et Seneca Fondation de Murcie (Grant 20040/germe/16 à F. García-Vázquez)

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
FERT-TALP mediumMerck
TCM-199SigmaM-4530
Hoechst 33342SigmaB-2261
Plats à 4 puitsNunc176740
Gradient de densité BoviPureNidacon InternationalBP-100
Solution de lavage BoviwashNidacon InternationalBW-100
Chlorure de magnésiumPromegaA35 1H
Eau stérileMili Q sintesis A10 MilliporeA35 1H
Buffer Tris Borate EDTASigmaT4415
MB agaroseBiotools20.012
5X GoTaq flexi bufferMili Q sintesis A10 MilliporeM 890 A
MB agaroseBiotools20.012
Taq polymérasePromega
SafeViewNBS Biologicals Ltd.M 890 A
Chambre de comptage MaklerSefi Medical
Chambre ThomaHecht-Assistant
pHmètre MicropH 2000Crison Instruments
Osmomètre Micro osmomètre avancé 3300Norwood
Système d’analyse de sperme assisté par ordinateurProjectes y Serveis R+D
Stéréomicroscope MZ 95Leica
Optique épifluorescente Eclipse Te300Nikon
Assistant confocal 4.02 LogicielBio-RadLogiciel
Microscopie confocale à balayage laserBio-Rad
Micropippetes (P2. P20, P200, P1000)Gilson
Microcentrifuge tubesVWR
UV iluminateurBio-Rad
PCR Thermocycleur Primus 96 PlusMWG AG Biotech
d’analyse 3D

Références

  1. Montano, G. A., et al. Evaluation of motility, membrane status and DNA integrity of frozen-thawed bottlenose dolphin (Tursiops truncatus) spermatozoa after sex-sorting and recryopreservation. Reproduction. 143 (6), 799-813 (2012).
  2. Sánchez-calabuig, M. J., et al.

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Réimpressions et autorisations

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