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Article de méthode

Biosensing Potentiel de membrane de neurones moteurs dans les embryons vivants de zébrés

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DOI :

10.3791/55297

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26 juin 2017

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* These authors contributed equally

Dans cet article

Résumé

Les protocoles décrits ici permettent d’étudier les propriétés électriques des cellules excitables dans les conditions physiologiques les moins invasives en utilisant des embryons de poisson-zèbre dans un système in vivo associés à un indicateur de tension génétiquement codé (GEVI) basé sur le transfert d’énergie par résonance de fluorescence (FRET) exprimé sélectivement dans le type de cellule d’intérêt.

Résumé

Les protocoles décrits ici sont conçus pour permettre aux chercheurs d’étudier la communication cellulaire sans altérer l’intégrité de l’environnement dans lequel les cellules se trouvent. Plus précisément, ils ont été développés pour analyser l’activité électrique des cellules excitables, telles que les neurones spinaux. Dans un tel scénario, il est crucial de préserver l’intégrité de la cellule vertébrale, mais il est également important de préserver l’anatomie et la forme physiologique des systèmes impliqués. En effet, la compréhension de la manière dont le système nerveux - et d’autres systèmes complexes - fonctionne doit être basée sur une approche systémique. Pour cette raison, l’embryon vivant de poisson-zèbre a été choisi comme système modèle, et les changements de tension de la membrane des neurones spinaux ont été évalués sans interférer avec les conditions physiologiques des embryons.

Ici, une approche combinant l’utilisation d’embryons de poisson-zèbre avec un biocapteur basé sur FRET est décrite. Les embryons de poisson-zèbre sont caractérisés par un système nerveux très simplifié et sont particulièrement adaptés aux applications d’imagerie grâce à leur transparence, permettant l’utilisation d’indicateurs de tension basés sur la fluorescence au niveau de la membrane plasmique pendant le développement du poisson-zèbre. La synergie entre ces deux composants permet d’analyser l’activité électrique des cellules dans des organismes vivants intacts, sans perturber l’état physiologique. Enfin, cette approche non invasive peut coexister avec d’autres analyses (par exemple, les enregistrements de mouvements spontanés, comme le montre ici).

Introduction

L'analyse in vivo des composants systémiques permet aux scientifiques d'étudier le comportement cellulaire de la manière la plus fiable. Cela est particulièrement vrai lorsque l'activité sous contrôle est fortement influencée par les interactions cellule-cellule (dépendantes en contact et sans contact), comme dans le système nerveux, où les changements de tension membranaire entraînent la communication entre les cellules excitables. La compréhension de l'information codée par ces signaux électriques est la clé pour comprendre comment fonctionne le système nerveux dans les états physiologiques et pathologiques.

Afi....

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Protocole

1. pHuC_Mermaid Plasmid Generation

NOTE: Mermaid est un biocapteur développé en associant le domaine de détection de tension (VSD) de Ciona intestinalis (maintenant Ciona robusta ) 5 capteur de tension contenant de la phosphatase (Ci-VSP) avec les fluorophores partenaires de FRET Umi-Kinoko Green (mUKG: donneur) et une version monomère de la protéine fluorescente émettrice d'orange Kusabira Orange (mKOk: accepteur). Pour ce biocapteur, les changements conformationnels du domaine VSD, induits par la dépolarisation de la membrane, augmentent la proximité des protéines fluorescentes donn....

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Résultats

Un vecteur d'expression portant la séquence de codage du biocapteur Mermaid à base de FRET sous le contrôle du promoteur pan-neuronal pHuC, qui conduit la synthèse de la protéine exclusivement dans le système nerveux, a été administré dans des oeufs fertilisés à une seule cellule au moyen d'une micro-injection dans Afin d'obtenir des embryons transgéniques transitoires ( figure 1 , Panneau de gauche). Après avoir maîtrisé la technique de mi.......

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Discussion

Le protocole présenté ici nous a permis d'explorer l'association entre les propriétés électriques des neurones moteurs de la colonne vertébrale du embryon de poisson zèbre et le comportement d'enroulement spontané, l'activité motrice stéréotypée la plus ancienne, qui apparaît autour de 17 hpf de développement embryonnaire et dure jusqu'à 24 hpf 10 .

Notre approche fournit aux chercheurs un outil pour étudier le système nerveux des embryons intacts,.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Remerciements

Les auteurs tiennent à remercier Simona Rodighiero pour son soutien inestimable dans l’analyse d’imagerie FRET.

....

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Agarose à bas point de fusion  ;Sigma-AldrichA9414
DMSO  ;Sigma-AldrichW387520
RiluzoleSigma-AldrichR116
Pfu Ultra HQ ADN polymérase  ;Agilent Technologies - Division des produits Stratagene600389
T3 Universal primer  ;Sigma-Aldrich
Wizard SV Système de nettoyage en gel et PCRPromegaA9280
Universal SmaI.mammifères Eurofins
StrataClone / vecteur contondant pCMV-SC  ;Agilent Technologies - Division des Produits Stratagene
SmaI  ;New England BiolabsR0141S
T4 ADN ligasePromegaM1801
SalINew England BiolabsR0138S
EcoRVNew England BiolabsR0195S
35 mm, antenne parabolique d’imagerie à fond de verre  ;Ibidi81151
pinceSigma-AldrichF6521
StéréomicroscopeLeica MicrosystemsM10 F
Appareil photo numériqueLeica MicrosystemsDFC 310 FX
Leica Application Suite 4.7.1 logiciel  ;Leica Microsystems
QuickTime Player, v10.4Apple
Microscope confocal (inversé)Micro-injecteur Leica MicrosystemsTCS SP5
  ;Eppendorf  ;Femtojet
ImageJ macro Biosensor_FRET
GraphPad Prism 6.0c  ;GraphPad Software, Inc
Système de vecteurs d’expression de 240228

Références

  1. Knöpfel, T., Gallero-Salas, Y., Song, C. Genetically encoded voltage indicators for large scale cortical imaging come of age. Curr Opin Chem Biol. 27, 75-83 (2015).
  2. Chemla, S., Chavane, F. Voltage-sensitive dye imaging: Technique review and models. J Physi....

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Réimpressions et autorisations

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