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Article de méthode

Circulation extracorporelle dans un modèle murin : une nouvelle approche

10.7K vues

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DOI :

10.3791/56017

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22 septembre 2017

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* These authors contributed equally

Dans cet article

Résumé

Cet article explique comment effectuer la circulation extracorporelle chez la souris. Ce nouveau modèle permettra de faciliter l’étude des mécanismes moléculaires impliqués dans les lésions organiques.

Résumé

Comme extracorporelle prolongée devient plus essentiel pendant les interventions cardiaques, une demande croissante de clinique se pose pour l’optimisation de la procédure et pour minimiser les lésions organiques résultant de la circulation extracorporelle prolongée. L’objectif de cette étude était de démontrer un modèle entièrement fonctionnel et cliniquement pertinent de la circulation extracorporelle chez une souris. Nous rapportons sur la conception de l’appareil, optimisation de circuit de perfusion et techniques microchirurgicales. Ce modèle est un modèle aiguë, ce qui n’est pas compatible avec la survie en raison de la nécessité de multiples dessins de sang. En raison de l’éventail d’outils disponibles pour la souris (par exemple, marqueurs, Ejecteurs, etc.), ce modèle facilitera l’enquête sur les mécanismes moléculaires de lésions organiques et l’effet de la circulation extracorporelle par rapport aux autres comorbidités.

Introduction

Depuis l’introduction d’extra-corporelle (CEC) dans la clinique, il a joué un rôle essentiel dans la chirurgie cardiaque1. En chirurgie cardiaque moderne, prolongée de la DGPC est indispensable pour effectuer des reconstructions aortiques et procédures combinées. Bien que les progrès technologiques ont été énormes, l’utilisation de la circulation extracorporelle est associée avec intra - et postopératoires systémique et endommager les organes locaux2,3.

Grands modèles animaux ont été développés pour étudier le rôle de la DGPC sur les processus physiologiques<....

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Protocole

toutes les expérimentations animales ont été réalisées dans le respect de la loi allemande de Protection animale (TierSchG) et ont été approuvées par le Comité de bien-être des animaux locaux (Basse Saxe Office d’État pour la Protection des consommateurs et la sécurité alimentaire, protocole TSA 14/1556). Le poids minimal de souris approprié pour ce modèle est de 25 g.

1. préparations préopératoire

Remarque : toutes les procédures sont effectuées dans des conditions propres, non stériles, avec des instruments stérilisés à l’autoclave.

  1. Lieu 50-60 8 cm long propylène fibres en parallèle dans un....

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Résultats

Ce protocole décrit le circuit de perfusion, les interventions chirurgicales et la surveillance des paramètres physiologiques au cours de la DGPC de souris. Lorsque exécutée par une microsurgeon adéquatement qualifié, on obtient les résultats régulièrement et de façon reproductible.

Pour maintenir la perfusion tissulaire adéquate, la pression artérielle moyenne est toujours entre 40 et 60 mmHg en ajustant le débit sanguin de la .......

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Discussion

Nous avons développé un modèle ayant une pertinence clinique pleinement opérationnel de la DGPC dans une souris. Avec plus d’une trentaine de souches de souris ayant des maladies cardiovasculaires, notre modèle pourrait être un point de départ pour le développement de nouveaux protocoles éventuels associés au doryphore. En outre, en raison de la pléthore des réactifs spécifiques de souris et souris knockout-out, ce modèle ne peut pas seulement remplacer l’actuel modèle de rat de CPB mais facilitera la dissection des méca.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Remerciements

Les auteurs n’ont aucun remerciements.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
SterofundinB.Braun Petzold GmbHPZN :8609189volume d’amorçage, 1:1 avec Tetraspan
Tetraspan 6 % HES SolutionB. Braun Melsungen AGPZN : 05565416volume d’amorçage, 1:1 avec Sterofundin
Heparin Natrium 25.000Ratiopharm GmbHPZN : 30298432,5 UI par ml de solution d’amorçage
NaHCO3 8,4 % SolutionB. Braun Melsungen AGPZN : 15797753 % dans la solution d’amorçage
KCL 7,45 % SolutionB. Braun Melsungen AGPZN : 24185770,1 mL pour la cardioplégie
CarprofenZoetis Inc., États-UnisPZN : 00289615 088591535 mg/kg/p.c.
1 Fr Cathéter PUInstechlabs INC., États-UnisC10PU-MCA1301artère carotide
2 Fr Cathéter PUInstechlabs INC., États-UnisC20PU-MJV1302veine jugulaire
Vasofix Cathéter de sécurité 20GB.Braun Medical4268113S-01intubation orotrachéale
8-0 Suture en soie tresséeAshaway Line & Ficelle Mfg. Co., USA75290ligature
IsofluranePiramal Critical Care Deutschland GmbHPZN :9714675narcose
CLINITUBES capillaires sanguinsRadiomed GmbH51750132prélèvement sanguin 60 - 95 microlitres
Ciseaux à ressort - 6mmLames Fine Science Tools GmbH15020-15instruments
Ciseaux à ressort - 2mm LamesFine Science Tools GmbH15000-03instruments
Halsted-Mosquito HemostatFine Science Tools GmbH13009-12instruments
Dumont #55 ForcepsFine Science Tools GmbH11295-51instruments
Castroviejo Micro Needle Holder - 9cmFine Science Tools GmbH12060-02instruments
Micro SerrefinesScience Tools GmbH18555-01Instruments
Bulldog SerrefineFine Science Tools GmbH18050-28instruments
MiniVent Ventilateur pour souris (Modèle 845)Harvard Apparatus73-0044ventilation mécanique
Isoflurane Vaporisateur Drager 19.1Drä ; gerwerk AG & Co. KGaAanesthésie 1,3 - 2,5
Dispositif d’acquisition de données PowerLab 4/35ADInstruments Ltd, Nouvelle-ZélandePL3504pression invasive, ECG, température
ABL 800 FlexRadiometer GmbHanalyse des gaz du sang
souris NMRICharles River LaboratoriesCrl :NMRI(Han)mâle, 30 - 35 g, 12 semaines, logé au moins 1 semaine avant l’expérience
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Références

  1. Edmunds, L. Cardiopulmonary Bypass after 50 Years. N. Engl. J. Med. 351 (16), 1601-1603 (2004).
  2. Goto, T., Maekawa, K. Cerebral dysfunction after coronary artery bypass surgery. J. Anesth. 28 (2), 242-248 (2014).
  3. Uysal, S., Reich, D. L.

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Réimpressions et autorisations

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