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Article de méthode

Dimensions des tissus inflammatoires humaines équivalents de la gencive

9.6K vues

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DOI :

10.3791/57157

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3 avril 2018

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Dans cet article

Résumé

L’objectif du protocole est de construire un modèle d’inflammatoire gencive humaine in vitro. Ce modèle de tissu co cultive trois types de cellules humaines, HaCaT kératinocytes, fibroblastes gingivaux et macrophages THP-1, dans des conditions en trois dimensions. Ce modèle peut être appliqué à une enquête sur les maladies parodontales, telles que la gingivite et la parodontite.

Résumé

Les maladies parodontales (telles que la gingivite et la parodontite) sont les principales causes de la perte des dents chez les adultes. Inflammation de la gencive est la fondamentale physiopathologie des maladies parodontales. Les modèles expérimentaux actuels des maladies parodontales ont été créés dans différents types d’animaux. Toutefois, la physiopathologie des modèles animaux est différente de celle des humains, il est difficile d’analyser les mécanismes cellulaires et moléculaires et d’évaluer les nouveaux médicaments pour les maladies parodontales. Nous présentons ici un protocole détaillé pour reconstruire les équivalents humains inflammatoires des tissus de la gencive (iGTE) in vitro. Nous avons tout d’abord créer des équivalents de tissus humains de la gencive (GTE) en utilisant deux types de cellules humaines, y compris les fibroblastes gingivaux humains (HGF) et les kératinocytes épidermiques de la peau humaine (HaCaT), dans des conditions en trois dimensions. Nous créons un modèle de la plaie à l’aide d’un perforateur de tissu pour percer un trou dans le GTE. Ensuite, humaines monocytes THP-1 mélangés avec du gel de collagène sont injectées dans le trou dans le GTE. Par adimistration de 10 ng/mL phorbol 12-myristate 13-acétate (PMA) pendant 72 h, THP-1 cellules se différencient en macrophages aux foyers inflammatoires de la forme en GTE (iGTE) (IGTE peut également être stumilated avec 2 µg/mL de lipopolysaccharides (LPS) pendant 48 h initier l’inflammation ). IGTE est le premier modèle in vitro de la gencive inflammatoire utilisant des cellules humaines avec une architecture en trois dimensions. IGTE reflète des changements pathologiques principaux (immunocytes activition, interactions intracellulaires chez les fibryoblasts, les cellules épithéliales, les monocytes et les macrophages) dans les maladies parodontales. GTE, GTE blessé et iGTE utilisable comme outils polyvalents pour étudier la cicatrisation, régénération des tissus, l’inflammation, interaction cellule-cellule et médicaments potentiels écran des maladies parodontales.

Introduction

Les maladies parodontales sont la principale cause de la perte des dents chez les adultes. La gingivite et la parodontite est des maladies parodontales les plus courantes. Les deux induite par le biofilm aiguës ou chroniques inflammatoires changements actuels dans la gencive. La gingivite est caractérisée par une inflammation aiguë, tandis que la parodontite se présente généralement comme une inflammation chronique. Sur le plan histologique, les composantes bactériennes déclenchent l’activation des cellules immunitaires, tels que les macrophages, lymphocytes, plasmocytes et mastocytes1,2. Ces cellules immunita....

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Protocole

Ce protocole est conçu pour créer des tissus gingivaux humains équivalents, blessure gingivale modèles et modèles de gingivite. Kératinocytes épidermiques de la peau humaine (HaCaT) ont été gracieusement fournis du professeur Norbert E. Fusenig de Deutsches Krebsforschungszentrum (Heidelberg, Allemagne)7. Les fibroblastes gingivaux humains (HGFs) ont été isolés des tissus gingivaux selon les protocoles publiés précédemment8. Le consentement éclairé a été obtenu au préalable et l’étude a été approuvée selon les lignes directrices établies par le Comité d’éthique, l’Université dentaire Nippon School of Life Dentistry à Tok....

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Résultats

Cellules HaCaT affichent la morphologie typique de kératinocytes sous observation au microscope à contraste de phase (Figure 2 a). Images de scanner électronique microscopiques (SEM) ont montré que les surfaces de cellules HaCaT étaient couverts de nombreuses microvillosités. Liens intercellulaires entre les cellules HaCaT ont été véhiculées par des procédés à membranes (Figure 2 b). HaCaT cellules expriment l’épithélium gingival.......

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Discussion

Ce protocole est basé sur les méthodes de création d’équivalents de tissu gingival et les équivalents de-le tissu adipeux sous-cutané décrits par les précédents rapports8,21,22. Bien qu’il s’agit d’une méthode simple et facile, certaines étapes nécessitent une attention particulière. Par exemple, le mélange collagène doit être maintenu sur la glace jusqu'à l’utilisation afin d’éviter la formation de gel dans la solution. Lorsque.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs ne déclarent aucun conflit d’intérêts.

Remerciements

Ce travail a été soutenu en partie par la société japonaise pour la subvention Promotion of Science (JSPS) pour la recherche scientifique (26861689 et 17 K 11813). Les auteurs tiennent à remercier M. Nathaniel Green pour la relecture.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Collagène de type I-ANitta Gelatin IncPour la fabrication du derme de GTE
MEM-alphaThermo Fisher Scientific11900073Milieu de culture cellulaire
Insert de culture cellulaire (pour plaque de 24 puits), taille des pores 3,0 &mu ; mCorning, Inc.353096Pour la culture tissulaire
GlutaMAXThermo Fisher Scientific35050061Réactif de culture cellulaire
DMEMThermo Fisher Scientific31600034Milieu de culture cellulaire
KnockOut Serum ReplacementThermo Fisher Scientific10828028Réactif de culture cellulaire
Perforateur de tissusShibata system service co., LTDSP-703Pour perforation de trous dans GTE
RPMI 1640Thermo Fisher Scientific31800022Milieu de culture cellulaire
BSASigma-AldrichA3294Pour l’immunomarquage
Hoechst 33342 (coloration NucBlue Live Cell)Thermo Fisher ScientificR37605Pour le marquage des noyaux
Milieu de montage par fluorescenceDakoPour le montage d’échantillons après immunomarquage
Anticorps anti-cytokératine 8+18 [5D3]abcamab17139Pour l’identification de l’épithélium
Microscope électronique à balayageHitachi, Ltd.HITACHI S-4000Pour l’observation de la surface, de la topographie et de la composition des échantillons
Microscopie confocale à balayage laserLSM 700 ; Carl Zeiss Microscopy Co., Ltd.LSM 700Pour l’observation de la coloration par immunofluorescence des échantillons
Anticorps anti-cytokératine 19abcamab52625Pour l’identification de l’épithélium
Anticorps anti-vimentineabcamab92547Pour l’identification des fibroblastes et des macrophages activés
Anticorps anti-TE-7MilliporeCBL271Pour l’identification des fibroblastes dans le derme
Anti-CD68 anticorpsSigma-AldrichSAB2700244Pour l’identification des macrophages
Anticorps CD14 humainsR& D SystemsMAB3832-SPPour l’identification des macrophages
Anticorps anti-lapin secondaire conjugué Alexa Fluor 594Thermo Fisher ScientificA11012Pour la coloration par immunofluorescence
Anticorps anti-souris secondaire conjugué Alexa Fluor 488Thermo Fisher ScientificA11001Pour la coloration par immunofluorescence
Système d’imagerie cellulaire EVOS FLThermo Fisher ScientificPour l’observation de la coloration par immunofluorescence de l’échantillon des
cellules THP-1Banque de cellules BRC RikenRCB1189Pour la fabrication de l’iGTE
PMA (Phorbol 12-myristate 13-acétate)Sigma-AldrichP8139Pour différencier les cellules THP-1

Références

  1. Cekici, A., Kantarci, A., Hasturk, H., Van Dyke, T. E. Inflammatory and immune pathways in the pathogenesis of periodontal disease. Periodontology 2000. 64 (1), 57-80 (2014).
  2. Hasturk, H., Kantarci, A., Van Dyke, T. E. Oral Inflammatory Diseases a....

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Réimpressions et autorisations

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