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Articolo metodologico

Imaging a fluorescenza risolta nel tempo e analisi dell'invasione delle cellule tumorali nel modello sferoide 3D

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DOI:

10.3791/61902

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30 gennaio 2021

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In questo articolo

Sommario

Presentato qui è un protocollo per la fabbricazione di un dispositivo di imaging sferoide. Questo dispositivo consente l'imaging a fluorescenza dinamica o longitudinale degli sferoidi delle cellule tumorali. Il protocollo offre anche una semplice procedura di elaborazione delle immagini per l'analisi dell'invasione delle cellule tumorali.

Abstract

L'invasione delle cellule tumorali dal tumore primario nei tessuti sani adiacenti è un primo passo nella metastasi. Le cellule tumorali invasive rappresentano una sfida clinica importante perché non esiste un metodo efficiente per la loro eliminazione una volta avviata la loro diffusione. Una migliore comprensione dei meccanismi che regolano l'invasione delle cellule tumorali può portare allo sviluppo di nuove terapie potenti. A causa della loro fisiologica somiglianza con i tumori, gli sferoidi incorporati nel collagene sono stati ampiamente utilizzati dai ricercatori per studiare i meccanismi che regolano l'invasione delle cellule tumorali nella matrice extracellulare (ECM). Tuttavia, questo saggio è limitato da (1) una mancanza di controllo sull'incorporamento degli sferoidi nell'ECM; (2) costo elevato del collagene I e delle stoviglie di fondo in vetro, (3) etichettatura immunofluorescente inaffidabile, a causa dell'inefficiente penetrazione di anticorpi e coloranti fluorescenti e (4) elaborazione delle immagini dispendiosa in termini di tempo e quantificazione dei dati. Per affrontare queste sfide, abbiamo ottimizzato il protocollo sferoide tridimensionale (3D) per immaginire cellule tumorali etichettate fluorescentmente incorporate nel collagene I, utilizzando video time-lapse o imaging longitudinale, e analizzare l'invasione delle cellule tumorali. In primo luogo, descriviamo la fabbricazione di un dispositivo di imaging sferoide (SID) per incorporare sferoidi in modo affidabile e in un volume minimo di collagene I, riducendo il costo del saggio. Successivamente, delimitiamo i passaggi per l'etichettatura a fluorescenza robusta di sferoidi vivi e fissi. Infine, offriamo una macro Fiji facile da usare per l'elaborazione delle immagini e la quantificazione dei dati. Complessivamente, questa semplice metodologia fornisce una piattaforma affidabile e conveniente per monitorare l'invasione delle cellule tumorali nel collagene I. Inoltre, questo protocollo può essere facilmente modificato per soddisfare le esigenze degli utenti.

Introduzione

Durante la progressione del cancro, le cellule tumorali possono acquisire un fenotipo mobile e invasivo, consentendo loro di sfuggire alla massa tumorale e invadere nei tessuticircostanti 1. Alla fine, queste cellule tumorali invasive possono raggiungere e crescere all'interno degli organi secondari, un processo chiamato metastasitumorale 1. La metastasi causa più del 90% dei decessi correlati al cancro2. Una ragione di ciò è che, mentre i tumori localizzati sono clinicamente gestibili, non esistono metodi efficienti per l'eliminazione delle cellule tumorali invasive una volta che si è verificata ....

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Protocollo

1. Fabbricazione di un dispositivo di imaging sferoide (SID) per ottimizzare l'incorporamento di sferoidi (durata 1 giorno)

  1. Creare il distanziale utilizzando una stampante 3D (Figura 1A, B e File supplementare 1).
  2. Pesare un rapporto 10:1 (wt/wt) di polimero di base:crosslinker in una tazza di plastica [ad esempio, 20 g di polimero di base etilbenzene e 2 g di crosslinker in resina siliconica per creare polidimetilsiloxano (PDMS)].
  3. Mescolare accuratamente la soluzione PDMS nella tazza di plastica utilizzando una pipetta monouso.
  4. Posizionare la tazza di plastica in una camera a vuoto ....

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Risultati

Grazie alla sua biocompatibilità, PDMS è ampiamente utilizzato per la microfabbricazione di pozzi confinanti, francobolli e stampi, che ha rivoluzionato il micropatterning e i dispositivi microfluidici. Nel metodo qui descritto, viene utilizzato per creare SID, pozzi personalizzabili che ottimizzano l'incorporamento dello sferoide e la procedura di imaging. La figura 1 illustra i principali componenti utilizzati nella fabbricazione dei SID. Per lanciare lo stampo PDMS, viene stampato 3D un d.......

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Discussione

Il distanziale stampato in 3D è stato progettato per creare fogli di PDMS spessi 1 mm che possono quindi essere utilizzati per creare facilmente varie forme di PDMS, come richiesto dalle applicazioni sperimentali. Grazie alla semplicità della sua fabbricazione e alla libertà di alterare il design, questo metodo di fusione PDMS è stato scelto per la progettazione iniziale del SID. Se è richiesto un elevato volume di SID, la produzione può essere resa più efficiente creando uno stampo stampato in 3D, che contiene già disch.......

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Dichiarazioni

Gli autori non hanno nulla da rivelare.

Ringraziamenti

Vorremmo ringraziare i membri di Temple Bioengineering per le preziose discussioni. Ringraziamo David Ambrose al flow cytometry core (Lewis Katz School of Medicine) per la sua assistenza allo smistamento cellulare e Tony Boehm dell'IDEAS Hub (College of Engineering, Temple University) per l'aiuto con la stampa 3D. Ringraziamo anche le nostre risorse di finanziamento: American Cancer Society Research Scholar Grant 134415-RSG-20-034-01-CSM, Conquer Cancer Now / Young Investigator Award, National Institutes of Health, R00 CA172360 e R01 CA230777, tutto a BG.

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
1 N NaOHHoneywell Fluka60-014-44
10X Dulbecco' soluzione salina tamponata con fosfato (PBS)GibcoSH30028.LS
16% paraformaldeide (PFA)Alfa Aesar43368-9M
1X Dulbecco' soluzione salina tamponata con fosfato (PBS)Gibco20012027
4',6-diamidino-2-fenilindolo (DAPI)InvitrogenD1306
piastra a 48 pozzettiFalconT1048
Alexa Fluor 647 falloidinaLife TechnologiesA20006
Anticorpo anti cortactinaAbcamab33333diluizione da 1 a 200
Anticorpo E-caderinaInvitrogen13-1900Diluizione da 1 a 100
Soluzione di atelocollagene bovino I (Nutragen)Advanced Biomatrix501050ML
Albumina sierica bovina (BSA)Sigma AldrichA4503-50G
CellTracker Red CMTPX DyeInvitrogenC34552
Tubi coniciFalcon352095
Vetrini coprioggettiFisherBrand12-548-5E
Contenitore monousoGraffe Bicchieridi plastica
Pipetta di trasferimento monousoThermo Scientific202
DMEMFisher Scientific11965118
Nastro bifaccialeScotch
EthanolSigma AldrichE7023-500ML
Siero fetale bovino (FBS)Bio-TechneS11550
Fluoromount-GeBioscience00-4958-02
GlutaraldeideSigma AldrichG5882-100mL
Colorazione nucleare HoeschtThermo Fischer62249
IsopropanoloThermo FischerS25371A
Piatto MatTek (piatto con fondo in vetro)MatTek CorporationP35G-1.5-14-C
MetilcellulosaSigma AldrichM6385-100G
MilliQ acqua
Penicilina/streptomicina soluzioneThermo Fischer15140122
PetriCorning353003
Punte per pipetteFisherbrand02-707
GilsonF167300
Poly-L-LysineSigmaP8920
Anticorpi primari, specifici
Rat Tail Collagen ICorning47747-218
Razor Blade Personna74-0001
Anticorpi secondari, specifici
per l'utente SlidesGlobe Scientific1354W-72
Sylgard 184 SiliconeDow Corning4019862
TapeScotch
Triton X100Sigma Aldrich10789704001
Tween 20Sigma Aldrich655204-100ML
per l'utente

Riferimenti

  1. Hanahan, D., Weinberg, R. A. Hallmarks of cancer: The next generation. Cell. 144, 646-674 (2011).
  2. Noone, A., et al. SEER Cancer statistics review 1975-2015, based on November 2017 SEER data submission. , (2019).
  3. Yamada, K. M., Cukierman, E.

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Ristampe e permessi

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