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Article de méthode

Macro-imageur à vie de fluorescence pour applications biomédicales

1.5K vues

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DOI :

10.3791/64321

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7 avril 2023

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Dans cet article

Résumé

Cet article décrit l’utilisation d’un nouvel imageur optique rapide pour l’imagerie macroscopique à vie par photoluminescence d’échantillons émettant de longues désintégrations. Les procédures d’intégration, d’acquisition d’images et d’analyse sont décrites, ainsi que la préparation et la caractérisation des matériaux du capteur pour l’imagerie et l’application de l’imageur dans l’étude d’échantillons biologiques.

Résumé

Cet article présente un nouvel imageur à durée de vie par photoluminescence conçu pour cartographier la concentration d’oxygène moléculaire (O2) dans différents échantillons phosphorescents allant des revêtements sensibles à l’état solide à l’O 2 aux échantillons de tissus animaux vivants colorés avec des sondes solubles sensibles à l’O2. En particulier, la sonde proche infrarouge à base de nanoparticules NanO2-IR, qui est excitable avec une diode électroluminescente (LED) de 625 nm et émet à 760 nm, a été utilisée. Le système d’imagerie est basé sur la caméra Timepix3 (Tpx3Cam) et l’adaptateur opto-mécanique, qui abrite également un intensificateur d’image. La microscopie d’imagerie à vie par phosphorescence O2 (PLIM) est couramment requise pour diverses études, mais les plates-formes actuelles ont des limites dans leur précision, leur flexibilité générale et leur facilité d’utilisation.

Le système présenté ici est un imageur rapide et très sensible, construit sur un capteur optique intégré et un module de puce de lecture, Tpx3Cam. Il est démontré qu’il produit des signaux de phosphorescence de haute intensité et des valeurs de vie stables à partir d’échantillons de tissus intestinaux colorés en surface ou de fragments du gros intestin colorés par voie intraluminale et permet la cartographie détaillée des niveaux de tissu O2 en environ 20 s ou moins. Des expériences initiales sur l’imagerie de l’hypoxie dans les tumeurs greffées chez des animaux inconscients sont également présentées. Nous décrivons également comment l’imageur peut être reconfiguré pour une utilisation avec des matériaux sensibles à l’O2 à base de colorants Pt-porphyrine à l’aide d’une LED de 390 nm pour l’excitation et d’un filtre passe-bande de 650 nm pour l’émission. Dans l’ensemble, on a constaté que l’imageur PLIM produisait des mesures quantitatives précises des valeurs de durée de vie des sondes utilisées et des cartes bidimensionnelles respectives de la concentration d’O2. Il est également utile pour l’imagerie métabolique de modèles tissulaires ex vivo et d’animaux vivants.

Introduction

O2 est l’un des paramètres environnementaux clés pour les systèmes vivants, et la connaissance de la distribution deO2 et de sa dynamique est importante pour de nombreuses études biologiques 1,2,3. L’évaluation de l’oxygénation des tissus au moyen des sondes phosphorescentes 4,5,6,7,8 et PLIM 9,10,11,12,13 gagne en popularité dans la recherche biologique et médicale

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Protocole

Toutes les procédures sur les animaux ont été effectuées en vertu d’autorisations délivrées par l’Autorité de réglementation des produits de santé (HPRA, Irlande) conformément à la directive du Conseil des Communautés européennes (2010/63/UE) et ont été approuvées par le Comité d’éthique de l’expérimentation animale de l’University College Cork.

1. Préparation de l’échantillon

  1. Coloration avec la sonde d’échantillons de tissus vivants ex vivo
    1. Pour les applications ex vivo , utiliser des échantillons de tissus fraîchement isolés provenant de souris Balb/c femelles âgées de 4 semaines.
    2. ....

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Résultats

Pour les applications d’imagerie ex vivo , des fragments de tissus intestinaux ont été colorés par l’application topique de la sonde NanO2-IR sur la face sérossale du tissu. Pour une coloration plus profonde, 1 μL de la sonde a été injecté dans la lumière. Dans ce dernier cas, la paroi intestinale de 0,2 à 0,25 mm d’épaisseur protégeait la sonde de la caméra. Les deux procédés de coloration sont illustrés à la figure 2A.

L’intensité résultante et les imag.......

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Discussion

Les protocoles ci-dessus donnent une description détaillée de l’assemblage du nouvel imageur et de son fonctionnement en mode FLIM/PLIM à la microseconde. La caméra Tpx3Cam de nouvelle génération basée sur TCSPC, couplée au moyen de l’adaptateur opto-mécanique Cricket avec l’intensificateur d’image, le filtre d’émission et la macro-lentille, produit un module optique stable, compact et flexible facile à utiliser. L’imageur s’est avéré performant avec une gamme d’échantillons et de tâches analytiques différents, qui compr.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont aucun conflit d’intérêts à déclarer.

Remerciements

Le soutien financier pour ce travail de la Science Foundation Ireland, des subventions SFI/12/RC/2276_P2, SFI/17/RC-PhD/3484 et 18/SP/3522, et de Breakthrough Cancer Research (Precision Oncology Ireland) est vivement apprécié.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
627 nmLED Parts ExpressPeut être remplacé par différentes LED en fonction de la longueur d’onde d’excitation du capteur. LED 390 nm utilisée pour les colorants Pt-porphyrine.
Filtre d’émission 760 ± ; 50 nmEdmund Optics84-788Peut être remplacé par un filtre différent en fonction de la longueur d’onde d’émission du capteur. Usagé 650 ± ; Filtre passe-bande 50 nm pour colorants Pt-porphyrine.
Souris Balb/cEnvigo, Royaume-UniBalb/c
Boîte noireThorlabsXE25C9/M
Cricket AdaptateurPhotonisCricket-2
CT26 cellules  ;ATCCCT26. WThttps://www.atcc.org/products/crl-2638
DMEMSigma-AldrichD0697 D’autressupports peuvent également être utilisés
Logiciel ImageJLogiciel d’analyse d’images gratuit. Téléchargeable à partir de : https://imagej.nih.gov/ij/index.html
intensificateur d’image MCP-125 avec écran phosphore P47PhotonisPP0360EF
Mini parabolesSarstedt83.3900.30035 mm de diamètre  ;
Film plastique Mylar, 75 micron² ;RS Ireland785-0795D’autres substrats en plastique peuvent également être utilisés
NanO2-IRfait maisonn/aLa sonde peut être synthétisée selon la méthode publiée 'Tsytsarev V, Arakawa H, Borisov S, Pumbo E, Erzurumlu RS, Papkovsky DB. Imagerie in vivo de l’activité métabolique cérébrale à l’aide d’une sonde phosphorescente sensible à l’oxygène. J Méthodes Neurosci. 15 juin 2013 ; 216(2):146-51. DOI : 10.1016/j.jneumeth.2013.04.005. Epub 25 avril 2013. PMID : 23624034 ; PMCID : PMC3719178.' ou fourni par notre laboratoire.
NMV-50MObjectif 11" 50 mmNavitarD’autres objectifs compatibles avec les adateurs à monture C peuvent être utilisés
Plaque d’expérimentation optiqueThorlabsMB1836
Boîtes de PétriSarstedt82.1472.001Diamètre 92 mm
AlimentationTenma72-10495
Générateur d’impulsionsTenmaTGP110
SophyAmsterdam Scientific Instrumentsn/zFourni par ASI avec le Tpx3Cam
Tpx3CamAmsterdam Scientific InstrumentsTPXCAM
Tri2 SoftwareUniversity of Oxfordn/aFree Time Resolved Imaging software, peut être téléchargé à partir de : https://users.ox.ac.uk/~atdgroup/index.shtml
XYZ Translation StageThorlabsLT3

Références

  1. Papkovsky, D. B., Dmitriev, R. I. Imaging of oxygen and hypoxia in cell and tissue samples. Cellular and Molecular Life Sciences. 75 (16), 2963-2980 (2018).
  2. Carreau, A., El Hafny-Rahbi, B., Matejuk, A., Grillon, C., Kieda, C.

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Réimpressions et autorisations

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