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方法文章

研究小鼠中的正畸牙齿移动

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DOI:

10.3791/66884

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2024年8月2日

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本文内容

摘要

本文介绍了一种研究正畸牙齿移动(OTM)的实验方案,该模型适用于探究骨组织适应机制、牙根吸收过程以及骨细胞对机械刺激的反应。本综合指南详细阐述了OTM模型的建立、微型计算机断层扫描(micro-CT)的数据采集及其后续分析方法。

摘要

正畸牙齿移动(OTM)是一种动态过程,其中牙槽骨在受压区域发生吸收,在受拉区域发生沉积,分别由破骨细胞和成骨细胞调控。该机制为研究骨适应的多个方面提供了有价值的模型,包括牙根吸收以及细胞对机械力刺激的反应。本文所述的实验方案提供了一种简便的方法用于研究OTM,在采用镍钛(NiTi)螺旋弹簧的小鼠模型中确定0.35 N为最佳施力。通过显微计算机断层扫描(micro-CT)分析,我们通过测量釉牙骨质界处线性距离的差异来量化OTM。评估还包括对正畸诱导的炎性牙根吸收的分析,评估指标包括牙根矿化密度以及牙根体积占总体积的百分比。该综合性实验方案有助于深入理解骨重建过程,并提升开发有效正畸治疗策略的能力。

引言

骨重建是一个由破骨细胞、成骨细胞、骨衬细胞和骨细胞共同调控的持续过程,对维持成人骨骼系统的完整性至关重要1,2。这一动态过程主要由破骨细胞和成骨细胞的分化与活性驱动,包括骨吸收和骨沉积,通常由机械应力和负荷触发3,4,5。

动物实验在阐明正畸牙齿移动(OTM)背后的复杂生物学和细胞机制方面发挥着关键作用6,7。该过程涉及多种细胞类型,如成骨细胞、破骨细胞、骨细胞、成纤维细胞,以及位于颌骨和牙周膜内的免疫细胞(如巨噬细胞和T细胞)7,8。这些细胞会动态响应机械刺激及局部微环境的变化,从而影响周围骨组织的组成和结构7,8。此外,即使不存在病原体,这些细胞也会在细胞水平上引发炎症反应。这种炎症反应有助于提高骨组织的更新速率

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方案

所有实验程序均严格遵守米纳斯吉拉斯联邦大学伦理委员会(编号:166/2022)制定的伦理标准。每次实验前必须进行样本量计算。使用8至10周龄、体重约20至30 g的雄性C57BL6/J野生型小鼠。小鼠应饲养在温度维持在25 °C的房间内的笼子中,并保持12小时光照/12小时黑暗的循环周期。安装线圈后,应为动物提供软质饲料。每日需监测体重及整体健康状况。

1. 机械诱导的牙槽骨重塑

  1. 使用远端剪钳,用正畸Weingart钳将0.25 × 0.76英寸的NiTi开放式线圈弹簧剪成六个环,并将两个环形末端垂直于弹簧方向定位。
  2. 使用Mathieu镊子和圆形工具作为尺寸参考,将直径为0.20 mm的圆形铬镍(CrNi)金属丝弯制成所需形状,并带有环形末端。
  3. 将线圈的环形末端与0.20 mm圆形CrNi金属丝连接在一起。
  4. 通过腹腔注射0.2 mL含有赛拉嗪(10 mg/kg)和氯胺酮(100 mg/kg)的溶液对动物进行麻醉。在开始操作前,使用足底反射评估麻醉深度。用镊子轻轻夹捏动物的一个脚趾,若无反射,则表明已达到适当的全身麻醉水平。为避免角膜损伤和术后疼痛,在动物麻醉后应涂抹眼用润滑剂。
  5. 将动物仰卧位固定于手术台上,固定其四肢以限制活动,并便于口腔内操作。
  6. 使用由直径0.50 mm金属丝制成并用0.08 mm金属丝固定的开口器,以....

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结果

该方案利用镍钛合金线圈弹簧建立正畸牙齿移动(OTM)小鼠模型。当施加0.35 N的力时,对照侧第一与第二磨牙之间的釉牙骨质界(CEJ)平均距离为 243.69 µm (图1A,线A),而在OTM侧的测量位置为 284.66 µm (图1A,线B)。OTM侧与对照侧之间的差异为 40.97 µm (图1B)右侧上颌半侧(OTM侧)与左侧上颌半侧(对照侧)第一和第二磨牙间釉牙骨质界(CEJ)的线性距离,使用适当的微计算机断层扫描(microCT)分析软件中的直线工具,在至少六个不同断面上进行测量。将对照侧六次测量的平均值减去OTM侧六次测量的平均值得到OTM结果。图1).

关于OIIRR,在对照侧和OTM侧的牙槽骨RV/TV值和RMD值分别为71.02 ± 10.11%和1.071 ± 0.1536 g/cm

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讨论

本文介绍了一种标准化的实验方案,旨在阐明正畸牙齿移动(OTM)过程中骨重建的细胞与分子机制。要全面理解小鼠中的这些机制,必须制定周密的实验流程,以确保结果的准确性和可靠性7,11。本研究团队开展的研究表明,该方案通过引入张力测量装置和专门设计的器械,有效降低了操作者间的差异,并确定0.35 N为小鼠模型中OTM的最佳施力值4,16,17,18,19,20。为了提高实验操作的效率并最大化动物样本的利用,用于显微CT分析的样本还可进一步进行常规组织学处理。随后可在5 µm切片中评估OTM情况,并以牙骨质-釉质交界处(CEJ)作为测量参.......

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披露

作者声明无任何利益冲突。

致谢

我们衷心感谢 Beatriz M. Szawka 女士在示意图绘制方面所做的贡献,以及 Ilma Marçal de Souza 女士提供的技术支持。J.A.A.A. 获得了巴西里约热内卢州卡洛斯·查加斯·菲略研究资助基金会(FAPERJ,项目编号 E-26/200.331/2024)的博士后奖学金资助。本研究得到了巴西国家科学技术发展委员会(项目编号 406928/2023-1)、米纳斯吉拉斯州研究资助基金会以及高等级人才培养协调办公室(资助代码 001)的支持。 作者感谢巴西米纳斯吉拉斯联邦大学实验室生物技术中心(LabBio/UFMG)Eduardo H. M. Nunes 教授博士提供的X射线显微断层扫描分析支持。

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材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
丙酮Sigma-Aldrich67-64-1
远端剪断钳QuinelatoQO.700.00
测力计SHIMPOFGE-5XY
光纤照明器Cole-ParmerN/A
氯胺酮Syntec100477-72-3
NiTi 开簧弹簧 0.25 × 0.76Lancer Orthodontics
Ø 0.20 mm 圆形铬镍(CrNi)丝Morelli55.01.208
圆形 CrNi 高弹性正畸丝 Ø0.50 mm(0.020 英寸)Morelli55.01.050
圆形 CrNi 结扎丝 Ø0.20 mm(0.008 英寸)Morelli55.01.208
体视显微镜QuimisQ7740SZ
Transbond Plus 自酸蚀粘接剂3MLE-Q100-1004-7
Weingart 钳QuinelatoQO.120.00
赛拉嗪Syntec23076-35-9
MicroCT 分析
Skyscan 1174v2Bruker1174v2
软件
NReconSkyscanN/A
DataViewerSkyscanN/A
CTAnSkyscanN/A
MimicsMaterialiseN/A

参考文献

  1. Kohli, N., et al. Bone remodelling in vitro: Where are we headed?: -A review on the current understanding of physiological bone remodelling and inflammation and the strategies for testing biomaterials in vitro. Bone. 110, 38-46 (2018).
  2. Epsley, S., et al.

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