DNA İzolasyonu ve Restriksiyon Enzim Analizi

KavramlarEğitmen HazırlığıÖğrenci Protokolü
0 görüntüleme04:46 dk
Print Procedure Steps
Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. DNA İzolasyonu ul class="lab-items">
  2. NOT: Bu deneyde iki deneysel koşul altında DNA izolasyonu gerçekleştireceksiniz: biri deterjan SDS içeren bir tampon kullanarak ve diğeri deterjansız. Hipotezler: Bu deney için alternatif hipotez, hücre zarlarını parçalayan güçlü bir anyonik deterjan olan SDS olmadan hazırlanan numunenin, SDS ile hazırlanan numuneden daha az DNA vereceği olabilir. Bu deney için sıfır hipotezi, her iki örneğin de eşit miktarda DNA vereceği olabilir.
  3. DNA izolasyonu için bir doku örneği toplamaya başlamak için. Burada kendi yanak hücrelerinizi kullanacaksınız. Yanaklarınızın iç kısımlarını yaklaşık 30 saniye boyunca kazımak için bir buzlu şeker çubuğu kullanın. ÖNEMLİ: Ağrıya neden olacak veya kan çekecek kadar sert kazımayın.
  4. 15 mL'lik konik bir tüpe bir huni yerleştirin.
  5. Ardından, size verilen %1'lik tuzlu su çözeltisinden 10 mL'yi etiketli bir kapta alın ve yutmadan ağzınızda çevirin.
  6. 90 saniye boyunca çalkalamaya devam edin ve ardından yanak hücrelerinizi içeren salin solüsyonunu konik tüpte toplamak için huniye tükürün.
  7. Ardından, iki boş mikrosantrifüj tüpünü baş harflerinizle etiketleyin.
  8. İki tedaviyi ayırt etmek için tüplerden birini +SDS, diğerini -SDS olarak etiketleyin.
  9. Ardından, yanak hücrelerini içeren salin solüsyonundan her tüpe 1,5 ila 2 mL ekleyin.
  10. Tüpleri 30 saniye boyunca bir mikrosantrifüjde döndürün.
  11. Tüpleri mikrosantrifüjden çıkarın ve her tüpün dibinde toplanan hücreleri rahatsız etmeden süpernatanı dikkatlice dökün.
  12. Tüpleri yanak hücrelerini içeren tuzlu su çözeltisiyle doldurun ve santrifüjlemeyi tekrarlayın.
  13. Tüm yanak hücreleri toplanana kadar hücreleri +SDS ve -SDS tüpleri arasında eşit olarak dağıtmaya dikkat ederek bu işlemi tekrarlayın.
  14. Ardından, +SDS olarak işaretlenmiş tüpe SDS içeren 1 mL lizis tamponu ekleyin ve ardından hücre peletini yukarı ve aşağı pipetleyerek yeniden süspanse edin.
  15. Ardından, -SDS ile işaretlenmiş tüpe SDS'siz 1 mL lizis tamponu ekleyin ve hücre peletini yukarı ve aşağı pipetleyerek yeniden süspanse edin.
  16. Bundan sonra her tüpe 10 μL proteinaz K ekleyin ve ardından tüpleri 10 dakika boyunca 56 ºC su banyosuna dikkatlice yerleştirin.
  17. 10 dakika sonra tüpleri dikkatlice su banyosundan çıkarın ve her tüpe 100 μL 2,5 M NaCl ekleyin.
  18. Tüpleri sıkıca kapatın ve karıştırmak için birkaç kez ters çevirin.
  19. Ardından, bir 15 mL konik tüpü +SDS ve diğerini -SDS olarak etiketleyin.
  20. Her mikrosantrifüj tüpünün içeriğini karşılık gelen 15 mL konik tüpe dökün.
  21. Dondurucudan 10 mL'lik bir adet %100 etanol alikotu alın.
  22. Konik tüplerden birini belirli bir açıyla tutun ve zaten tüpte bulunan sıvının üzerinde bir tabaka oluşturmak için 1 mL %100 etanolü tüpe yavaşça dağıtın.
  23. İkinci konik tüp için bu işlemi tekrarlayın.
  24. Şimdi her iki tüpünüze de bakın. Etanolün arayüzünde ve altındaki sulu tabakada lifli bir çökelti bulunmalıdır. Bu lifli materyal izole edilmiş DNA'yı içerir. Tüpteki DNA'nın fotoğraflarını çekin ve gözlemlerinizin net tanımlayıcı notlarını ve çizimlerini not defterinize koyun.
  25. Bir cam karıştırma çubuğu kullanarak, +SDS tüpünden DNA'yı alın ve inceleyin. Bunu -SDS tüpü için tekrarlayın ve gözlemlerinizi tekrar kaydedin. Tüplerden birinin diğerinden daha fazla çökeltiye sahip görünüp görünmediğini ve bunun neden olabileceğini not edin.
  26. Son olarak, tüm sıvı atıkları uygun atık kabına atın ve tüm aletleri laboratuvardaki uygun yerlerine geri koyun.
  27. Kısıtlama Enzimi Sanal Özeti
    • Restriksiyon enzimlerinin nasıl çalıştığını incelemek için önce New England Biolabs web sitesine gidin: https://www.neb.com/
    • Bu sitede bulunan kaynaklar, araştırmacıların laboratuvarda gerçekleştirilmeden önce sanal deneyler yapmalarına olanak tanır. NEBcutter aracını bulmak ve programı açmak için "Araçlar ve Kaynaklar"a tıklayın.
    • Arama kutusunun sağında "Viral + faj" yazan listeyi bulun. Bu listeden Lambda'yı seçin. Bu, sindireceğiniz DNA'nın adıdır. Aracın "dizi" dediği Doğrusal seçeneğini ve aracın "Kullanılacak enzimler" dediği "NEB enzimleri" seçeneğini seçin. Ardından Gönder'i tıklayın.
    • Sonraki sayfada lambda DNA'sının tam bir kısıtlama haritası görüntülenecektir. Bu kısıtlama haritası, belirli enzimler kullanılırsa ne olacağını tahmin etmek için kullanılabilir. Ardından, "Ana seçenekler" başlığı altındaki "Özel özet"e tıklayın.
    • StuI enzimini arayın ve tampon 2.1 veya CS tamponunda en iyi şekilde çalıştığını unutmayın. StuI enzimini seçin ve özeti tıklayın.
    • Bir sonraki pencerede "Ana seçenekler" başlığının altındaki "Jeli görüntüle"ye tıklayın. Bir pBR322-BstN1 özeti kullanarak sanal %1'lik bir jel çalıştırma seçeneğini seçin.
    • Sonuçlar göründükten sonra bir ekran görüntüsü alın ve boş bir belgeye yapıştırın.
    • Bundan sonra, NEBcutter aracının ana sayfasına geri dönün ve "Yeni özel özet"i seçin.
    • Bu sefer BsrGI enzimini arayın ve tampon 2.1 veya tampon 3.1'de en iyi şekilde performans gösterdiğini not edin. Enzimi seçin ve sindir'e tıklayın.
    • Ana seçenekler başlığının altında "Jeli görüntüle"ye tıklayın ve bir pBR322-BstN1 özeti kullanarak sanal bir %1 jel çalıştırma seçeneklerini seçin.
    • Sonuçların ekran görüntüsünü alın ve bunu bir metin belgesine kaydedin.
    • Son olarak, hem StuI hem de BsrGI'yi tek bir özette birlikte kullanarak bu adımları tekrarlayın.
    • Yine, bir ekran görüntüsü alın ve elde edilen jeli kaydedin.
  28. DNA Profili Oluşturma ul class="lab-items">
  29. Kısıtlama enzimi sindirimlerine başlamadan önce lambda DNA, NEB tamponu 2.1, StuI enzimi ve BsrGI enzimi alikotlarınızı bir buz kovasına koyun ve bunu çalışma alanınıza götürün.
  30. Bir tüpü StuI olarak etiketleyin – bu, StuI özetini içerecektir.
  31. BsrGI özetini içerecek şekilde bir tüpü BsrGI olarak etiketleyin.
  32. Ardından, her iki enzimle birlikte sindirimi içerecek şekilde bir tüp S+B etiketleyin.
  33. Tablo 1'de listelenen reaksiyonları ayarlamak için uygun mikropipetleyicileri kullanın:Tablo 1'i indirmek için buraya tıklayın
  34. İlk olarak, her tüpe 40 μL su pipetleyin.
  35. Ardından, her seferinde yeni bir pipet ucu kullanarak, her tüpe 5 μL tampon 2.1 dağıtın ve karıştırmak için yukarı ve aşağı pipetleyin.
  36. Ardından, her tüpe 4 μL lambda DNA'sı ekleyin ve ardından her enzimin 0,5 μL'sini uygun tüplere pipetleyin.
  37. Son olarak, toplam hacmi 50 μL'ye çıkarmak için her tüpe yeterli miktarda su ekleyin.
  38. Ardından, tüpleri 37 ºC'de bir su banyosunda 15 - 60 dakika inkübe edin ve tamponları ve enzimleri dondurucuya geri koyun.
  39. Sindirimi çalıştırmak için bir agaroz jeli hazırlamak için, 250 mL'lik bir şişede 1 g agaroz tozunu 100 mL TAE tamponu ile karıştırın.
  40. Çözeltiyi tam güçte yaklaşık 90 saniye mikrodalgada ısıtın ve çözeltinin kaynamasını önlemeye dikkat edin.
  41. Ardından, solüsyonu bir eldiven veya ısı pedi kullanarak mikrodalgadan dikkatlice çıkarın ve yaklaşık 15 dakika soğumaya bırakın.
  42. Agaroz çözeltisi soğurken bir döküm tepsisi kurun.
  43. Agaroz çözeltisi soğuduğunda, çözeltiye 5 μL 10.000X SYBR Safe jel boyası ekleyin.
  44. Jelin kuyularını yapmak için kullanılan tarağı jel elektroforez aparatının döküm tepsisine ekleyin.
  45. Agaroz jel solüsyonunu döküm tepsisine dökün ve katılaşmasına izin verin.
  46. Jel katılaştıktan sonra, tarağı jelden çıkarmak için düz bir şekilde yukarı çekin ve ardından uygunsa barajları döküm tepsisinden çıkarın.
  47. Jeli, oyuklar negatif veya siyah elektroda en yakın olacak şekilde elektroforez odasına yerleştirin ve jeli tamamen kaplamak için odayı 1x TAE tamponu ile doldurun.
  48. Numunelerinizi su banyosundan çıkarın.
  49. Ardından her numuneye 8,3 μL 6X yükleme boyası ekleyin.
  50. Bilinen boyutta DNA parçaları içeren pBR322-BstN1 sindiriminden 10 μL'yi ilk kuyucuğa dağıtın.
  51. Ardından ikinci kuyucuğa 25 μL numune StuI yükleyin.
  52. Üçüncü kuyucuğa 25 μL örnek BsRGI yerleştirin.
  53. Dördüncü kuyucuğa 25 μL numune S+B yükleyin.
  54. Jeli çalıştırmak için uçları elektroforez odasına ve ardından güç kaynağına takın. Kırmızı pozitif uç kuyulardan en uzakta uçta olmalı ve siyah negatif uç kuyulara en yakın olmalıdır. Bunun nedeni, numunelerin negatiften pozitife doğru çalışacak olmasıdır.
  55. Güç kaynağını açın ve jel kutusunu yaklaşık 60 dakika boyunca 170 voltta çalışacak şekilde ayarlayın.
  56. Çalışma tamamlandıktan sonra jel kutusuna giden gücü kapatın ve elektrotları tanktan ayırın.
  57. Ardından jeli elektroforez odasından çıkarın ve bir UV transilluminatörü ile gözlemleyin. DİKKAT: Gözlük takarak veya sağlanan siperi kullanarak gözleri UV'den koruyun.
  58. Son olarak, jelin doğrudan yukarıdan ve jel yüzeyine paralel olarak resmini çekmek için bir cep telefonu kamerası kullanın.
  59. Sonuçlar ul class="lab-items">
  60. Laboratuvarda çalıştırdığınız jeli StuI ile sanal enzimatik özetinizle karşılaştırın.
  61. StuI ile sanal özet yedi bantla sonuçlandı. Jelinizin StuI şeridindeki bantları sayın ve bunun sanal sindirimle eşleşip eşleşmediğini veya benzer bir model gösterip göstermediğini not edin. NOT: Agaroz elektroforez jelleri üzerindeki küçük bantlar genellikle görünmezdir.
  62. Şimdi BsrGI özetinizin sonuçlarına bakın. BsrGI ile sanal özet altı grupla sonuçlandı. BsrGI şeridindeki bantları sayın. Yine, sanal özetin ve laboratuvar özetinin aynı mı yoksa benzer bir desen mi gösterdiğine dikkat edin.
  63. Son olarak, StuI ve BsrGI ile sanal özete bakın. Her iki enzimle yapılan sanal sindirim, 12 bantla sonuçlandı. Jelinizin ilgili şeridindeki bantları sayın ve DNA bantlama modelinin sanal sindirime benzeyip benzemediğini düşünün.

Browse More Videos

Yanak H cresi Toplama