$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Bölüm 1: embriyoların hazırlanması
Bu protokol, varsayımsal bir zebrafish objektif mutant göstermek için jj xy sembolü kullanabilirsiniz.
- Zebra balığı suşları 14h light/10h karanlık döngüsü 28.5 C'de standart balık tesisi şartlarda muhafaza edilir.
- Akşam, erkek ve zebrafish gerginlik jj xy kadınların yer: AB / TU, birbirinden ayırmak için bölücü ile bir tank tg (mGFP). Bu haç döl tüm dokularda GFP transgen ifade edecek ve bağışçılar olarak kullanılacaktır. Buna paralel olarak, transgenik olmayan yabani tip hayvanlar arasındaki haçlar kurmak için aynı prosedürü kullanın. Bu deneyin amacı bağlı olarak, bir bağışçılar veya ana gibi jj xy lokustaki yabani tip hayvanlar geçebilir.
- Sabah ışık yanar sonra bir saat içinde balık, çiftleşmek için izin vermek için bölücüler çıkarın.
- 15-30 dakika 100 x 15 mm Petri kapları embriyolar topladıktan sonra, onlara temiz ve orta (yumurta su) değiştirmek.
- 28.5 C inkübatörde embriyolar istenilen zaman kadar tutun.
- Transplantasyon için hazır, iki çift keskin forseps ile koryon el kaldırmak ve embriyoların% 0.2 EDTA kalsiyum ZFR 30 dakika inkübe edin.
Bölüm 2: diseksiyon iğneleri Hazırlık
- Ve donör objektif hareket ve ev sahibi içine girmek için kullanılan bir künt bir iğne, lens çevre dokulara kesmek koryon kaldırmak ve agaroz serbest embriyolar kullanılır bilenmiş biri: nakli prosedürü iki tür iğneler gerektirir. İşte biz bu iğneler nasıl yapılacağını göstereceğim.
- Birincisi, bir elmas bıçak kullanarak Pasteur pipet ucu kesilmiş olmalıdır. Sonra bir cam kapiller uzunluğu yaklaşık yarısı içinde böylece Pasteur pipet içine yerleştirin. Bu kolay bir sonraki adım cam içine eriterek tungsten tel hareketsiz hale getirecektir.
- Sonra ince kılcal açık ucunu bir tungsten tel yerleştirin. Bunsen beki ile tel üzerinden cam eritin. Elinizle iğnenin diğer ucunu büküm forseps kullanarak, metal tel ile sabit cam sonunda tutun. Yumuşatılmış cam, metal çevresinde sarmal yerde sürükleyici olmalıdır.
- Künt bir ucu iğne yapıyorsanız, o zaman bu prosedürün sonuna. Bilenmiş bir iğne oluşturmak için, çok ince uçlu oluşturulur böylece metal yakarak, Bunsen beki üzerinden 1-1.5 dakika tungsten tel tutun. Microscropy.It ucu kalite nakli hemen önce birkaç saniye için alev hem de iğneler sterilize etmek için iyi bir fikir olup olmadığını kontrol edin.
Bölüm 3: reaktiflerin hazırlanması
- Kalsiyum-Zebra balığı Ringer (ZFR) Çözümleri (116 mM NaCl, 2.9 mM KCl, 5 mM HEPES, pH 7.2)
- Kalsiyum Zebra balığı Ringer Çözümleri (pH 7,2)% 0.2 EDTA
- Kalsiyum ücretsiz ZFR% 1.2 agaroz (düşük erime noktası)
- Kalsiyum ücretsiz ZFR% 0.2 agaroz (düşük erime noktası)
- Embriyo orta (pH 7.0, litre başına içerir: 10 ml Hanks Çözüm # 1, 1 ml Hanks Çözüm # 2, 10ml Hanks Çözüm # 4, 10ml Hanks Çözüm # 5, 0.35 g sodyum bikarbonat, 300 uL 2M HCl, penisilin-streptomisin 500.000 U) Zebra balığı Kitap (Oregon Üniversitesi Press, 2000) gibi.
- Tungsten tel, altın kaplama, 0.1mm çap, Alfa Aesar
- Kapiler tüp, 1.0mm çap, Dünya Hassas Aletler
Bölüm 4: Transplantasyon prosedürü
- Plastik bir santrifüj tüpüne, bir su banyosunda 40 ° C önceden ısıtılmış kalsiyum ücretsiz ZFR% 1.2 düşük erime noktası agaroz hazırlamak.
- Istenilen evre (30 hpf, örneğin), bir Pasteur pipeti embriyoların sürebilir santrifüj tüpü içine yavaş yavaş onları kovmak ve santrifüj tüpü içine yavaş yavaş onları kovmak ve yaklaşık 5 saniye boyunca inkübe edin. Donörler ve bilgisayarlara ayrı inkübe edilmelidir.
- Bir pipet ile,% 1.2 agaroz santrifüj tüpüne embriyoların kadar sürebilir ve 100mm polistiren Petri kabındaki iki paralel sıralar halinde düzenlemek, host ve donörlerin ayrı tutulması. Yavaş ve dikkatli bir şekilde onları pipetleme, en embriyolar agaroz onların yüzüne yalan. Agaroz katılaşır önce göz yukarı bakacak şekilde künt bir iğne kullanılarak bu pozisyonda yalan olmadığını reorient gerekecektir.
- Sağlamlaştırmak için% 1.2 agaroz için bekleyin ve daha sonra% 0.2 düşük erime noktası agaroz çözümü ile kaplaması.
- Bilenmiş bir iğne yardımıyla, göz çevresi herhangi bir agaroz kaldırmak ve çok dikkatli bir şekilde küçük bir vuruş kullanan ev sahibi ve donör embriyoları mercek kesip. Lensin yeterince yakın şekilde gözyaşı kesmek için emin olun, ancak bu nedenle ev sahibi göz geri kalanından çok fazla doku çıkarmayın.
- Bir kez ücretsiz, lensler orta float. Künt iğne kullanarak, dikkatli bir şekilde donör itinobjektif sadece normal ev sahibi objektif olacağını yerini yukarıda ve daha sonra göz içine künt iğne ile aşağı doğru itin. Ev sahibi objektif atılabilir.
- 30-60 dakika süreyle% 1.2 agaroz donör ve host embriyolar bırakın, sonra keskin bir iğne kullanılarak agaroz onları serbest bırakın ve embriyo orta ile 24 plaka içine aktarabilirsiniz. Her embriyo ayrı bir iyi kurulmalıdır. Bu yüzden düzgün bir şekilde ev sahibi olan donör tekabül eden net olduğunu kuyuların etiket emin olun.
- 28.5 C inkübe donör elde edilen objektif, aynı hayvanın GFP floresan dayalı unoperated tarafta ev sahibi objektif ayırt edilebilir. Bölümleri de objektif boyutunu ölçmek için ve düzgün bir şekilde ayıran olup olmadığını belirlemek için yapılabilir.

Şekil 1 objektif nakli için kullanılan bir bilenmiş iğne Düşük büyütme görüntü. Kılcal bir cam Pasteur pipeti (A) (B) eklenir ve kılcal açık ucuna ince bir tungsten teli (C) eklenir. Tel üzerinden cam bir Bunsen beki ile yumuşatılmış. Pasteur pipetin diğer ucunu elinizle büküm forseps kullanarak, metal tel ile sabit cam sonunda tutun. Yumuşatılmış cam bir yere sürükleyici, metal etrafında sarmal.

Şekil 2 objektif nakli için kullanılan iki çeşit iğne uçları.

Şekil 3 Embriyolar 30hpf objektif nakli yapıldı. Gösterilen bir donör embriyo (A, B), nakledilen lens (C, D) ile bir host göz ve ev sahibi embriyo kontrol tarafı (E, F). Belirtildiği gibi her bir göz iletilen ışık ve UV aydınlatma hem de gösterilmiştir. Fotoğraflar 48 hpf alınmıştır. Q01 [9] transgenik hattı bu deneyde kullanıldı.