Hayvan modellerini içeren tüm prosedürler, yerel kurumsal hayvan bakım komitesi ve JoVE veteriner inceleme kurulu tarafından gözden geçirilmiştir.
1. Zebra Balığı Ksenogreft Testi
NOT: Bu teknik yaklaşım bir şematik olarak görselleştirilmiştir (Şekil 1).
- Stok reaktiflerinin hazırlanması
- 1 L 30x Danieau çözeltisi hazırlayın: 1740 mM NaCl, 21 mM KCl, 12 mM MgSO4•7H2O, 18 mM Ca(NO3)2 ve 150 mM HEPES. Bir pH metre kullanarak tamponun pH'ını 7,6'ya ayarlayın.
- % 1 (50x) trikain çözeltisi hazırlayın: 20 mg etil 3-aminobenzoat metansülfonatı (trican) 2 mL damıtılmış suda çözün.
- % 1 fenol Kırmızı-PBS çözeltisi hazırlayın: 1.5 μL'lik bir tüpte 198 μL sterilize PBS çözeltisine 2 μL Fenol Kırmızı sodyum tuzu çözeltisi ekleyin.
- % 3 metilselüloz hazırlayın: 100 mL 1x Danieau çözeltisine 3 g metilselüloz ekleyin.
- Zebra balığı yumurtası üretimi ve kuluçka
- Karanlıkta 28,5 °C'de UV ile sterilize edilmiş ve filtrelenmiş musluk suyuyla doldurulmuş bir bölme tankında bir dişi ve bir erkek zebra balığını ayırın. 24 saatlik ayrılmadan sonra, çiftleşmeyi başlatmak için her iki cinsiyetten balıkları karıştırın. Döllenmiş yumurtaları çiftleşme tankından 5 mL taze Danieau çözeltisi içeren bir Petri kabına aktarın.
- Yumurtaları 5 mL Danieau solüsyonu ile üç kez yıkayın. Yıkama için, yumurtaları bir pipetle dikkatlice aspire edin ve 5 mL taze çözeltiye aktarın. 28.5 °C'de 8 saat inkübe edin.
- Danieau'nun çözeltisinde 8 saatlik inkübasyondan sonra, pigmentasyonu inhibe etmek için Danieau'nun% 0.03 1-fenil-2-tiyoüre (PTU) içeren çözeltisine geçin. Kontaminasyonu önlemek için opak yumurtaları (döllenmemiş veya gelişmemiş embriyolar içeren) ayırın.
- Embriyo dekoryonasyonu
- Döllenmeden 24 saat sonra (HPF), zebra balığı embriyolarını keskin forseps kullanarak dekoryonlayın. Kuluçkalık embriyoları Danieau'nun solüsyonunda 28.5 ° C'de% 0.03 PTU ile 48 hpf'ye kadar inkübe edin.
- Bileşikle işlenmiş hücre hazırlığı
- 25 cm2 kültür şişesinde 20.000 hücre / cm2'de A549 hücrelerini tohumlayın. 24 saatlik tohumlamadan sonra, 37 ° C'de ve% 5 CO2'de bir inkübatörde 24 saat boyunca bileşikler (burada 50 μM'de OT48 ve / veya 20 μM'de A1210477) ekleyin.
- Hücrelerin canlılığını korumak, ancak onları hücre ölümüne doğru işlemek için her bileşik için tedavi süresini ayarlayın. Bu zaman noktasının, hücre canlılığı, morfolojisi ve moleküler belirteçlere dayalı olarak ayrı ayrı ayarlanması gerekir.
- Tedavinin bitiminden 2 saat önce, hücreleri 37 ° C'de ve% 5 CO2'de 4 μM floresan hücre izleyici boyası CM-Dil ile boyayın. 2 saatlik inkübasyondan sonra, hücreleri% 0.05 tripsin-EDTA ile tripnize edin ve enjeksiyondan önce 106 hücreyi 50 μL fenol Red-PBS çözeltisi içinde seyreltin.
- Ksenogreft oluşumu için kanser hücrelerinin mikro enjeksiyonu
- Zebra balıklarını bir agar tabağına yerleşene kadar 5 dakika boyunca% 0.02'lik bir tricaine solüsyonunda uyuşturun.
- 1.0 mm'lik (dış çap (OD) cam kılcal) bir mikropipet çekiciyle çekin (Program ayarları: P: 300, Isı: 260, Çekme: 60, VEL: 50 ve Süre: 200). Keskin bir kenar oluşturmak için mikrokılcal damarı bir şırınga ile kesin. Mikrokılcal damarları 20 μL hücre / fenol Red-PBS çözeltisi ile yükleyin. Enjeksiyon başına 2 nL dağıtmak için enjeksiyon basıncını ve süresini ayarlayın.
- 3 ila 5 enjeksiyon yoluyla 6 ila 10 nL enjekte ederek yumurta sarısı kesesine 100-200 hücre enjekte edin. Enjeksiyondan sonra, balığın PTU çözeltisi içeren 5 mL taze Danieau çözeltisinde 10 ila 30 dakika iyileşmesine izin verin. Balıkları 1 mL Danieau'nun PTU çözeltisi içeren çözeltisi ile 24 oyuklu plakalara gönderin ve 28.5 ° C'de 72 saat inkübe edin.
- 72 saatlik inkübasyondan sonra, balıkları% 0.02'lik bir tricaine çözeltisinde uyuşturun ve% 3'lük bir metilselüloz damlası ile bir cam slayt üzerinde hareketsiz hale getirin. Floresan mikroskobu ile 620 ila 750 nm dalga boyunda 5x fotoğraf çekin.
- ImageJ yazılımı ile floresan tümörlerin boyutunu ölçün. Menüyü seçin "Analiz | Ölçün". Floresan sinyale karşılık gelen değerleri kaydedin ve grafiksel gösterim için bir istatistik yazılımı ile analiz edin.