Numune toplama ile ilgili tüm prosedürler enstitünün IRB yönergelerine uygun olarak gerçekleştirilmiştir.
1. Lt-NES hücrelerinin çoğalması ve farklılaşması
NOT: insan kaynaklı pluripotent kök hücre türevli uzun süreli kendi kendini yenileyen nöroepitel benzeri kök (lt-NES) hücreler, kurucu bir promotör (GFP-lt-NES hücreleri) altında yeşil floresan protein (GFP) taşıyan bir lentiviral vektör ile üretilir ve dönüştürülür. 3 x 106 hücre içeren şişeler kullanılana kadar −150 ° C'de saklanır.
1. Stok çözeltilerinin ve media
1'in hazırlanması. 10 μg bazik fibroblast büyüme faktörünü (bFGF) 10 mL fosfat tamponlu salin (PBS) -% 0.1 sığır serum albümini (BSA) içinde 10 μg / mL'lik bir stok konsantrasyonuna sahip olacak şekilde seyreltin. 100 μL alikot hazırlayın.
2. 10 μg/mL'lik bir stok konsantrasyonuna sahip olmak için 10 μg epidermal büyüme faktörünü (EGF) 10 mL PBS-%0.1 BSA içinde seyreltin. 100 μL alikot hazırlayın.
3. Aliquot başına 100 μL'lik bir hacimde 50x B27 takviyesi.
4. 100 μg/mL'lik bir stok konsantrasyonuna sahip olmak için 10 mg poli-L-ornitini 100 mL deiyonize su içinde seyreltin. 1 mL alikot yapın.
5. 1.20 mg / mL fare laminininden 30 μL alikot hazırlayın.
6. 10 mL tripsin-etilendiamintetraasetik asit (EDTA) (%0.25) 90 mL PBS içinde %0.025'lik bir stok konsantrasyonuna seyreltin. 1 mL alikot hazırlayın.
7. 0.025 g tripsin inhibitörünü 50 mL PBS'de 0.5 mg / mL'lik bir stok konsantrasyonuna seyreltin. 1 mL alikot hazırlayın.
8. 10 μg / mL'lik bir stok konsantrasyonuna sahip olmak için 1 μg Wnt3a'yı (Kanatsız tip MMTV entegrasyon sitesi aile üyesi 3A) 1 mL PBS-0.1% BSA içinde seyreltin. BMP4'ü (kemik morfogenetik proteini 4) aynı şekilde hazırlayın. 100 μL'lik bir hacme aliquot.
9. 1 mg siklopamini 2,5 mL dimetil sülfoksit (DMSO) içinde 400 μg/mL'lik nihai konsantrasyona seyreltin ve 100 μL alikot yapın.
10. Temel ortamı (Tablo 1) ve farklılaşma tanımlı ortamı (DDM, Tablo 2) hazırlayın ve 4 °C'de 2 haftaya kadar saklayın.
2. Kültür kaplarının kaplanması
1. Proliferasyon veya farklılaşma sırasında GFP-It-NES hücrelerini kültürlemek için bulaşıkları önceden kaplamak için, poli-L-ornitin 1:100'ü deiyonize suda seyreltin ve bir T25 şişesine 5 mL çözelti ekleyin. Gece boyunca oda sıcaklığında (RT) inkübe edin.
2. Poli-L-ornitin kaplı plakaları 1 adet deiyonize su ile ve 1 adet PBS ile yıkayın.
3. Proliferasyondaki GFP-It-NES hücreleri için, fare lamininini PBS'de 1:500'de seyreltin ve 37 °C'de en az 2 saat inkübe edin. Farklılaşmadaki GFP-It-NES hücreleri için, fare lamininini PBS'de 1:100'de seyreltin ve 37 °C'de en az 2 saat inkübe edin.
3. GFP-lt-NES hücrelerinin çoğalması
1. İki farklı 15 mL tüpte 5 mL (yıkama için) ve 5 mL (tohumlama için) bazik ortamı ısıtın.
2. Bir şişe GFP-lt-NES hücresini 37 °C'de hızla çözdürün, yıkama tüpüne aktarın ve 300 x g'da 5 dakika santrifüjleyin.
3. Peletlere dokunmadan ortamı dikkatlice aspire edin ve hücreleri 1 mL önceden ısıtılmış bazik ortamda yeniden süspanse edin. Hücre süspansiyonunu, proliferasyon faktörleri ile desteklenmiş temel ortamı içeren tohumlama tüpüne aktarın: EGF (10 ng/mL), bFGF (10 ng/mL) ve B27 (10 ng/mL). Hücreleri poli-L-ornitin / laminin kaplı bir T25 şişesine tohumlayın.
4. Hücreleri her gün çoğalma faktörleriyle besleyin. Ortamı sararırsa değiştirin. Hücreleri her üç veya dört günde bir geçirin (% 100 birleşmeye ulaştıktan 1 gün sonra).
4. Proliferasyon ve farklılaşma için GFP-lt-NES hücrelerinin bölünmesi
1. Şişe başına 5 mL bazik ortamı (hücreleri toplamak için) ve ayrıca onları yeniden tohumlamak için gereken toplam hacmi önceden ısıtın.
NOT: Geçiş, hücreleri çoğalmada tutmak için 15 mL bazik ortam gerektiren 1:3 seyreltmede yapılır ve farklılaşmayı başlatmak için 30 mL bazik ortam gerektiren 1:6 seyreltmede yapılır.
2. Ortamı aspirasyon ile hücre kültürü şişesinden çıkarın ve 500 μL önceden ısıtılmış %0.025 tripsin ekleyin. RT'de 5-10 dakika inkübe edin. Hücrelerin ayrılması, 10x büyütmede standart bir ışık mikroskobu altında doğrulanabilir.
3. Eşit hacimde tripsin inhibitörü (0.5 mg / mL nihai konsantrasyon) ve ardından 5 mL ılık bazik ortam ekleyin. Hücreleri nazikçe yukarı ve aşağı pipetleyerek ayırın ve toplayın. Hücreleri 15 mL'lik bir tüpe aktarın ve 300 x g'da 5 dakika santrifüjleyin.
4. Hücreleri proliferasyonda tutmak için, proliferasyon faktörleri ile desteklenmiş taze bazik ortamda 1: 3 seyreltmede yeniden plakalayın ve adım 1.3.4'ü tekrarlayın.
5. GFP-lt-NES hücrelerinin kortikal farklılaşması
1. 0. günde, hücreleri (farklılaşma için kullanılmak üzere) proliferasyon faktörleri ile desteklenmiş 30 mL bazik ortamda yeniden süspanse edin ve bunları altı farklılaşma kaplı T25 şişesine (bölünmüş 1: 6) yerleştirin.
2. 1. günde, ortamın yarısını DDM olarak değiştirin ve konsantrasyonlarının yarısına proliferasyon faktörleri ekleyin.
3. 2. günde, ortamı tamamen farklılaşma faktörleriyle desteklenmiş DDM'ye değiştirin: BMP4 (10 ng/mL), Wnt3a (10 ng/mL) ve siklopamin (400 ng/mL).
4. 4. günde, farklılaşma faktörlerini tek başına ekleyin. Ortamı sararırsa değiştirin.
5. 6. günde, ortamı BMP4 ve Wnt3a ile desteklenmiş DDM olarak değiştirin. Siklokamin bu adımda çıkarılır.
6. 7. günde, hücreleri adım 1.4.2 ve adım 1.4.3'te belirtildiği gibi ayırın.
2. GFP-lt-NES hücrelerinin organotipik hACtx dilimlerine nakli
NOT: Yetişkin insan kortikal (hACtx) dokusu, hücre naklinden önce 1 hafta boyunca kültürlenmelidir. Transplantasyon prosedürünü kolaylaştırmak için, dokunun yüzmesini önlemek için ekin üstünden 2 mL hACtx ortamının çıkarılması gerekir.
1. Kortikal olarak astarlanmış GFP-lt-NES hücrelerini (adım 1.5.6'dan itibaren) soğuk saf bazal membran matrisinde (Malzeme Tablosuna bakınız) 1 x 105 hücre / μL konsantrasyonda yeniden süspanse edin ve çözeltiyi daha küçük bir steril tüpe aktarın.
NOT: Nakil işlemi sırasında, jel katılaşmasını önlemek için tüm malzemeler (pipet uçları, tüpler, kılcal damar vb.) önceden soğutulmalıdır. Kullanmadan önce bazal membran matris jelini 30 dakika buz üzerinde çözdürün.
2. Hücre süspansiyonunu, emme için kauçuk bir emziğe bağlı soğuk bir cam kılcal damara toplayın. Yarı kuru doku dilimini çeşitli bölgelerden bıçaklayarak hücre süspansiyonunu küçük damlalar halinde (her biri yaklaşık 1 μL) enjekte edin.
3. Jelin katılaşması için 37 ° C'de 30 dakika inkübe edin. Plakayı inkübatörden tekrar kaputa aktarın ve dokuyu tamamen daldırmak için ekin üstüne dikkatlice 2 mL hACtx ortamı ekleyin.
4. Kültür ortamını haftada bir kez taze hACtx ortamı ile değiştirin.