Hayvan modellerini içeren tüm prosedürler, yerel kurumsal hayvan bakım komitesi ve JoVE veteriner inceleme kurulu tarafından gözden geçirilmiştir.
1. Utero Transdüksiyonda
- : pH 7.4'te fosfat tamponlu salin (PBS) içinde istenen hedefi (4 x 10,11 viral partikül / μL AAV1) kodlayan adeno-ilişkili virüs tip 1'i (AAV1) hazırlayın. 0.1 mg/μL Fast Green ekleyin ve AAV1-Fast-Green karışımını 37 °C'de tutun.
- Bir mikropipet çektirme kullanarak istenen şekle sahip (8 mm uzunluğunda, dış çapı 80 μm ve iç çapı 50 μm) ince bir kılcal uç hazırlayın (ayarlar: basınç = 500, ısı = 700, çekme = 0, hız = 80, zaman = 200, Malzeme Tablosuna bakın). Kılcal damarın ucunu 4-5 mm olacak şekilde kırın.
- Kılcal uç ile bir aspiratör tüpü (44 cm x 0,7 cm) monte edin ve 15 μL AAV1-Fast-Green karışımını kılcal damara aspire edin.
- Hayvan denekleri tüm prosedür boyunca 37 °C'lik sabit bir fizyolojik vücut sıcaklığında tutun.
- Hamile bir C57Bl / 6 faresini (embriyonik gün 14.5) ön inkübasyon odasına yerleştirin ve fareyi gaz halinde% 4 izofluran (0.6-0.8 L / dak hacimsel hava akış hızı ile) ile uyuşturun.
- Deri altına buprenorfin (vücut ağırlığının 0.1 mg/kg'ı) enjekte edin.
- Anestezi uygulanmış fareyi önceden ısıtılmış cerrahi plakaya (37 °C) yerleştirin.
- Gözleri bir kayganlaştırıcı ile örtün.
- Fareyi anestezi maskesi (0,6-0,8 L/dk hacimsel hava akış hızında gaz halinde% 1,5 izofluran) ile cerrahi plakaya yerleştirin ve karın derisi bölgesini tıraş edin. Traş edilmiş bölgeyi 3X %75 etanol ve ardından betadin solüsyonu ile silin.
NOT: Anestezi uygulanmış farenin solunum davranışını sürekli olarak izleyin. İzofluran gazının konsantrasyonunu farenin soluma-soluma modeline göre ayarlayın. - Farenin arka pençe falankslarını sıkarak plantar refleksin yokluğunu kontrol edin.
- Cildi kavisli tırtıklı iris forseps (10 cm) ile kavrayarak ve cildi düz tungsten karbür makasla (10 cm) linea mediana boyunca keserek karın boşluğunu açın ve ardından periton duvarını düz Dumont cımbızla (12 cm, 0,2 mm x 0,12 mm) kavrayarak ve düz Vanna makasıyla (8 cm) linea alba boyunca duvarı keserek açın.
- Karın açıklığına bir parça fenestre parafin filmi yerleştirin ve filmi her iki ucuna mikro sivrisinek hemostatik forseps (12,5 cm, kavisli) ile sabitleyin.
- Rahim boynuzlarının içindeki embriyolara zarar vermemek için rahim boynuzlarını kaşık benzeri bir cihazla açığa çıkarın. Rahim boynuzlarına birkaç damla PBS (37 °C) damlatın ve embriyoları rahim kesesi içinde hasar veya malformasyon açısından inceleyin.
- Rahim boynuzlarındaki embriyoların sırasını ve konumunu belgeleyin. Enjeksiyon için istenen pozisyona ulaşılana kadar embriyoları uterus kesesinin içinde dikkatlice çevirin.
- Enjeksiyon bölgesini (örneğin beyin ventrikülleri) ve boya penetrasyonunu stereomikroskop altında görsel olarak inceleyerek 1-2 μL AAV1-Fast-Green karışımı enjekte edin.
- Enjekte edilen embriyoları belgeleyin ve enjekte edilen embriyolarla birlikte uterus boynuzlarını karın boşluğuna geri yerleştirin.
- Karın boşluğuna birkaç damla PBS (37 °C) damlatın. Halsted'in sivrisinek hemostatik forsepslerini (12,5 cm, kavisli) kullanarak periton duvarını (poliamid 6-0 boyutlu dikişler kullanın) ve cildi (poliamid 3-0 boyutlu dikişler kullanın) dikerek boşluğu kapatın. Alternatif olarak, karın boşluğunu ve cildi kapatmak için basit bir kesintili desen veya paslanmaz çelik dikiş/zımba kullanın.