Yöntem makalesi

Vibrio cholerae ile enfekte olan zebrabalıklarda bağırsak bakteri yükünün nicelendirilmesi

26 Şubat 2026

Bu makalede

Özet

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Kaynak: Nag, D. ve diğerleri. Yetişkin Zebrafish modelinde Vibrio kolera kolonizasyonu ve ishalinin nicelendirilmesi. J. Vis. Exp. (2018)

Bu video, antibiyotiklere dirençli Vibrio cholerae stürüyle enfekte olmuş yetişkin zebrafishlerde bağırsak bakteri yükünü niceliklendirmek için bir protokolü göstermektedir. Ötenazi ve diseksiyon sonrası, bağırsak sistemi izole edilir, cam boncuklarla homojenleştirilir ve bakteriler serbest bırakılmak için işlenir. Ortaya çıkan homojenat, seçici bir ortama kaplama yapılır ve bakteri yükünü tahmin etmek için β-galaktosidaz ifade eden mavi renkli koloniler sayılır.

Protokol

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Bağırsak kolonizasyon seviyelerinin belirlenmesi

NOT: Bağırsak kolonizasyonu, zebrafish modelinde en faydalı metriktir; çünkü çeşitli V. cholerae suşlarının göreceli uygunluğunu veya mutasyonların ya da gen nakavtlarının etkilerini karşılaştırmak için kullanılabilir.

1. Ötenazi

1. Deney istenen son noktaya ulaştığında, enfeksiyon suyundan bir numune alın (genellikle 15 mL yeterlidir) böylece dışarı atılan bakteri sayımları ve istenilirse ishal ölçümü (örneğin müsin testi, protein içeriği ve/veya OD) yapılabilir.

2. Kalan suyu balık ağından (balıkları toplamak için) çamaşır suyu ile dökerek V. cholerae'yi suda öldürür.

3. Balığı enfeksiyon suyu ile 336 μg/mL Etil 3-aminobenzoat metansülfonat (tricaine) içeren bir beğene koyup balığı bu trikain çözeltisinde RT süresinde 20 dakika kuluçka yapın.
NOT: Balık filesi %10 çamaşır suyu çözeltisi ile sterilize edildi.

2. Diseksiyon

1. Balığın hazırlanması

1. Trikain çözeltisinden bir balığı tek kullanımlık plastik kaşıkla alıp diseksiyon yüzeyine yerleştirin.

2. Balığı ventral tarafı yukarıya bakacak şekilde konumlandırın ve alt çenesinden geçirin, pimin küt ucu vücudun merkezinden uzakta açılı olarak yerleştirilsin. Anüsün hemen arkasına bir pim daha yerleştirin, o da vücuttan uzakta açılı olarak.

2. Bağırsak yolunun açığa çıkması

1. Balığın ventral yüzeyini tüy içermeyen bir mendil ile %70 etanole batırarak temizleyin.

2. Bir neşteri ve Vannas makaslarını %70 etanole batırıp alevle kısırlaştırın.

3. Pulları delip skarpel kullanarak karnında derinin hemen altında uzununa küçük bir kesi yapın. Bağırsak sistemi derinin hemen altında yer aldığı için çok derin kesmemeye dikkat edin.

4. Makasla kesiyi vücut boyunca dikkatlice uzatın, cilt seviyesinden derin kesin ve anüsün önüne geçin.

5. Kesiyi açmak için makasla balığın başına doğru iki yan kesik yapın.

6. Yan kesiklerin her iki tarafındaki deriyi disseksiyon yüzeyine sabitleyin, iğneleri vücuttan uzaklaştırarak dışarı doğru eğin.

NOT: Pimlerin uçları daha önce alkolle ateşlenerek sterilize ediliyordu.

3. Bağırsak yolunun alınması

NOT: Bağırsak yolu, diğer organların üstünde soluk ve çok ince bir tüp olarak görünür olmalıdır.

1. Pensepsleri alevle sterilize edin ve ardından tüm bağırsak traktını (genellikle 12–15 mm uzunluğunda) çıkarmak için kullanın. Bağırsağı, cam boncuklar (bkz. 1.3.1–1.3.2) ve 1 mL 1x PBS veya LB içeren bir homojenizasyon tüpüne yerleştirin; buzun üzerinde.

3. Homojenleşme

1. Homojenizasyon tüplerini önceden hazırlayın; ~1,5 g 1 mm cam boncukları 2 mL'lik vida kapaklı tüplere dökün (yaklaşık yarısına kadar doldurun) ve ardından otoklavlama ile sterilize edin.

2. 1 ml steril LB veya 1x PBS ekleyin.

3. Zebrafish bağırsakları tüplere eklendikten sonra ( adım 1.2.3.1), kapakları çok sıkı vidalın ve ardından tüpleri vortex homojenizatoruna sabitleyin.

4. Örnekleri maksimum ayarda 1 dakika homojenleştirin, ardından 1–2 dakika buzda soğutun. Tam homojenleşme için bu homojenleşme döngüsünü bir kez daha tekrarlayın. Not: Homojenleştirme için birkaç alternatif yöntem de işe yarar.

4. Bağırsak kolonizasyon seviyelerinin nicelendirilmesi

1. Her tüpeye 900 μL LB veya 1x PBS ekleyerek homojenatın seri seyreltilmesi için tüpler (küçük cam test tüpleri veya 1,5 mL mikrosantrifüj tüpleri) hazırlanır. Her balık için, 5–6 tüp hazırlayın ve bağırsak homojenatını 10 kat seri seyreltme yaparak birinci tüpe 100 μL homojenat ekleyerek, onu karıştırmak için vortex ile yaparak ve ardından birinci tüpten ikinci tüpe 100 μL ekleyerek yapın.

2. Tüm seyreltmeler hazırlanana kadar bu işlemi tekrarlayın.

3. LB agar plakalarında her seyreltmeden 100–200 μL levha (Streptomycin dirençli suşlar kullanılıyorsa) 100 μg/mL streptomisin ve 40 μg/mL X-gal (5-bromo-4-kloro-3-indolil-β-D-galaktopiranosid) içeren levha. Plakaları 30 °C'de 16–18 saat boyunca kuluçka edin.

4. Gece kuluçkasından sonra, V. cholerae kolonilerini plakalarda sayın; ya otomatik bir koloni sayacı kullanarak ya da kolonileri manuel olarak sayarak; Sayılan kolonileri işaretleme ucu ile işaretlemek faydalıdır.

5. Plaka sayısını, süspansiyonun seyrelme faktörüyle çarparak balık bağırsağına başına CFU'yu belirleyin; bu hacmi dikkate alarak alın.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
Enstrüman   
Shaker kuluçka makinesiNew Brunswick Scientific, Edison, NJExcella E25 
Kuluçka makinesiNUAIRE, Plymouth, MNOtomatik Akış 
SpektrofotometreThermo, Waltham, MAGeaesys 6 
Vortex homojenizatörüMinibeadbeater24112011 
Tartı MakinesiOhaus, Columbia, MDAdventurer Pro 
Isı KarıştırıcıCorning, Corning, NYPC-420D 
Burner   
Otomatik koloni sayacıREVSCI120417B 
Malzemeler   
400 ml cam beakerlerPyrex  
Delikli kapaklarUç kutusundan delikli mikrotip tutucu  
Tek kullanımlık plastik kaşıklarOffice Depot, Boca Raton, FLD15-25-7008 
Akvaryum SistemiAquaneering, San Diego, CA  
RO Su TemizleyiciAqua FXTK001 
Balık ağıMarina  
Balık yemiTetra yüzgeç  
Tuzlu KaridesKırmızı orman markasıO.S.I. pro 80 
Strafor levha   
Pimler   
SkarpellerFine Scientific araçları, Foster City, CA10000-10 
ForsepsFine Scientific araçları, Foster City, CA11223-20 
Vannas makasıFine Scientific araçları, Foster City, CA15000-11 
2 ml vida kapaklı tüplerFisher Scientific, Hampton, NH02-681-375 
1 mm cam boncuklarBiyografi Spesifikasyonu11079110 
Yaymak için cam boncuklarSigma, St. Louis, MO18406-500G 
Petri plakasıFisher Brand, Hampton, NHFB0875713 
1,5 ml santrifüj tüpüMidsci, Valley Park, MOAVSS1700 
50 ml santrifüj tüpüCorning Falcon, Corning, NY352098 
Test tüpleriPyrex9820 
Cam PipetFisher Brand, Hampton, NH13675K 
Mikro pipetlerSartorius Biohit, Göttingen, AlmanyaM1000/M200/M20 
İpuçlarıGenesee Scientific, San Diego, CA24-150RS/24-412 
Kimyasallar   
Ani Okyanus tuzları   
Fosfat tamponlu tuzlu suVWR Yaşam Bilimleri, Radnor, PAK813-500ml 
Trikain (etil 3-aminobenzoat metansülfonat tuzuSigma, St. Louis, MOA5040 
LB ortamı   
NaClFisher Scientific, Hampton, NHBP358-212 
AgarBD Biosciences, San Jose, CA214010 
TCBS AgarBD Biosciences, San Jose, CA265020 
DCLS AgarSigma, St. Louis, MO70135-500gm 
Yazılım   
Microsoft Office   
Prizma 5   

Yeniden basım ve izinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya şekillerini yeniden kullanmak için izin iste

İzin iste

Etiketler

Zebrafish ModeliDoku HomojenizasyonuSeri Dil syonKoloni Say mX gal EkimlemeSe ici BesiyeriCam Boncukla Par alamaBakteriyel Kolonizasyon

İlgili makaleler