Method Article

Fare Ortak Enfeksiyon Modelinde Bakteriyel Sayımı İçin Enfekte Dokuların İşlemi

March 31st, 2026

In This Article

Abstract

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Kaynak: Lenhard, A. ve diğerleri. Streptococcus pneumoniae'nin viral eş-enfeksiyon sonrası kolonizerden patojene geçişi için fare modeli, yaşa bağlı hastalığı özetliyor. J. Vis. Exp. (2022)

Bu video, patojenik bir bakteri ve bir virüsle birlikte enfekte olan bir farenin akciğerlerinin işlenmesini gösteriyor. Akciğer dokusunun doğranması, homojenleştirilmesi ve kaplaması, bakteri yükünün nicelendirilmesini sağlar; bu da bakterilerin akciğerlere yayılmasını ve hastalığın şiddetini gösterir.

Protocol

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Hayvan modelleriyle ilgili tüm prosedürler, yerel kurumsal hayvan bakım komitesi ve JoVE veteriner inceleme kurulu tarafından incelenmiştir.

1. Enfekte dokuların bakteriyel sayım için işlenmesi

  1. Akciğer koleksiyonu
    1. Diseksiyon makası kullanarak, açıkta kalan kaburga kafesinin yanlarını kesin ve kaburgaları farenin başına doğru nazikçe yukarı çekerek kalbi ortaya çıkarın. Fosfatla tamponlanmış salin (PBS) ile önceden doldurulmuş 10 mL'lik bir şırıngaya bağlı 25 G'lik bir iğneyi sağ ventriküle yerleştirin ve yavaşça perfüze etmeye başlayın. Akciğerlerin ağartılmasını başarılı perfüzyonun göstergesi olarak arayın. Akciğer dokusunu kırılmamak için yavaşça suyla çekin.
    2. Forsepsle kalbi kaldırın ve akciğerler ile kalbi ayıracak bir kesik açın. Ayrıldıktan sonra, akciğerin tüm loblarını forsepsle alıp steril PBS içeren bir kabta durulayın ki kalan kanı gidersin. Petri kabında akciğerleri küçük parçalara ayırın ve iyi karıştırın. Bakteriyel koloni oluşturan birimlerin (CFU) veya viral plak oluşum birimlerinin (PFU) belirlenmesi için akciğer karışımının yarısını çıkarın ve homojenleştirme için 0,5 mL PBS ile önceden doldurulmuş yuvarlak tabanlı 15 mL tüpte yerleştirin.
      NOT: Aynı akciğerin farklı loblarını çeşitli değerlendirmeler için almamak önemlidir. Bunun yerine, tüm loblar doğranmalı, iyi karıştırılmış ve farklı değerlendirmeler için eşit şekilde ayrıştırılmalıdır.
  2. Toplanan dokuyu homojenleştirmek için, önce homojenizer probunu %70 etanol içine koyup homojenizörü %60 güçte 30 saniye çalıştırarak temizleyin. Bu adımı steril suda 10 saniye tekrarlayın. Her dokuyu 1 dakika boyunca homojenize edin. Homojenizer probunu her örnek arasında steril suda ve her organ ile örnek grubu arasında taze bir tüpte temizleyin.
  3. Bakteri sayılarının sayımı
    1. Tüm organlar çıkarılıp homojenleştirildikten sonra, kan agar plakalarında seri seyreltmeler yapılır. Toplam CFU'yu hesaplamak için, her örnek için 10 μL ile plaka ve son hacmi mL cinsinden not edin. Gece boyunca 37 °C/%5CO2 sıcaklıkta kuluçka yapın.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
Luer-Lok uçlu BD tek kullanımlık şırıngalar (1 mL)Fisher14-823-30 
Fisherbrand hassas diseksiyon makasıFisher08-951-5Hasat için kullanılan aletler
Fisherbrand diseksiyon doku forsepsiFisher13-812-38Hasat için pensler
Fisherbrand tek kullanımlık steril şırıngalar (10 mL)Fisher14-955-459 

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Tags

Mouse Co Infection ModelLung Tissue ProcessingTissue HomogenizationBacterial EnumerationSerial Dilution PlatingCFU QuantificationLung PerfusionTissue MincingAgar Plate IncubationColony Counting

Related Articles