Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliğiniz gereklidir. Giriş yapın veya ücretsiz denemenizi bugün başlatın.

Yöntem makalesi

Protein lizat ekstraksiyonu: hücresel proteinleri toplamak için organoidleri parçalamak için bir teknik

6.9K görüntülenme

⸱

30 Nisan 2023

Bu makalede

Özet

Kaynak: Crowell, P. D. et al. Organoid Kültür Kullanılarak Fare Prostat Epitel Hücrelerinin Farklılaşma Kapasitesinin Değerlendirilmesi. J. Vis. Uzm. (2019)

Bu videoda, bir bazal membran matris halkasında kültürlenen prostat organoidlerinden protein lizatlarının ekstraksiyonunu gösteriyoruz. Ekstrakte edilen protein fraksiyonlarının analizi, organoidlerdeki soy işaretleyici ekspresyonunun incelenmesine yardımcı olabilir.

Protokol

1. Western Blot Analizi için Prostat Organoidlerinden Protein Lizatının Çıkarılması — ZAMANLAMA: 2.5-4 H

NOT: Protein lizat ekstraksiyonu için organoidleri toplamadan önce, dispas içeren ortamları hazırlayın ve önceden ısıtın (Tablo 1).

  1. 24 oyuklu plakayı 45°'lik bir açıyla eğerek ve matris jel halkasından kaçınırken bir P1000 pipeti kullanarak mevcut ortamı her bir oyuğun ortasından nazikçe çıkararak ortamı her bir kuyucuktan çıkarın.
  2. Organoidleri toplamak için, 1 mL dispas içeren ortamı tüm halka yerinden çıkana kadar doğrudan matris jel halkasına pipetleyerek matris jeli tekrar tekrar püskürtün ve 1.5 mL'lik bir mikrosantrifüj tüpüne aktarın.
    NOT: Poly-HEMA kaplı kuyucuklarla doğrudan temastan kaçınmak çok önemlidir. Doğrudan temas, toplanan materyalin Poly-HEMA ile kontaminasyonuna neden olabilir ve bu da hücre sağkalımını olumsuz etkileyebilir.
  3. 1.5 mL mikrosantrifüj tüplerini 37 ° C% 5 CO2 inkübatörüne 30 dakika ila 1 saat boyunca yerleştirin, böylece matris jelinin dispas yoluyla tamamen sindirilmesini sağlayın.
  4. RT'de 5 dakika boyunca 800 x g'da santrifüjleme yoluyla organoidleri peletleyin ve süpernatanı bir mikropipet kullanarak çıkarın.
  5. Organoid peletine fosfat tamponlu salin (PBS) ekleyin ve hafifçe hafifçe vurarak yeniden süspanse edin.
    NOT: Organoid peletin yeterince yeniden süspanse edilmemesi, organoid materyalin artık dispas veya matris jeli ile kontaminasyonuna neden olabilir.
  6. Organoidleri RT'de 5 dakika boyunca 800 x g'da santrifüjleme ile peletleyin ve süpernatanı bir mikropipet kullanarak çıkarın.
  7. Her bir tüpü kuru buz ve metanol içeren bir çözeltiye yerleştirerek organoid peletleri hızlı bir şekilde dondurun. Tüp(ler)i -80 °C'de ileride kullanılana kadar saklayın. Alternatif olarak, adım 1.6'dan hemen sonra protein lizatını çıkarın.
  8. Organoid peletleri, 10 μL paketlenmiş hücre hacmi başına 100 μL protein lizis tamponunda (Tablo 1) yeniden süspanse edin. Yeniden askıya almak için hafifçe vurun.
    NOT: Hızlı dondurmadan sonra devam ediyorsa, numuneleri -80 °C'den çıkarmadan önce protein lizis tamponunun çözüldüğünden emin olun, çünkü fosfataz ve proteaz aktivitesini önlemek için numunelere hemen lizis tamponu eklenmelidir.
  9. Numuneleri buz üzerinde protein lizis tamponunda en az 45 dakika inkübe edin.
    NOT: Nükleer protein geri kazanımının verimliliğini artırmak için buz üzerinde inkübasyondan önce sonikasyon yapılması önerilir; Ancak, sonikasyon gerekli değildir. Sonikasyon yapılmazsa, adım 1.10'a geçin.
    1. Sonikasyon yapmak için, tüpleri ıslak buza batırın ve sonik çözücünün ucunu mikrosantrifüj tüpüne nazikçe uygulayın. 20 kHz'de 40 saniye boyunca sonikate.
  10. Yerleşik protokolleri takip ederek Western blot'a ilerleyin.

Tablo 1: Anahtar çözümlerin hazırlanması için talimatlar

Tarifler
Dispase içeren medyaİleri DMEM F12'de 1 mg / mL dispas + 10 μM ROCK inhibitörü. Filtre, 0.22 μm filtre kullanarak sterilize edilir.
Ayrışma ortamıRPMI 1640'ta% 10 FBS + 1x Penisilin-Streptomisin. Filtre, 0.22 μm filtre kullanarak sterilize edilir.
Protein lizis tamponuRIPA tamponu + fosfataz inhibitörleri + proteaz inhibitörleri
Engelleme çözümü%0.2 Triton X-100 ile PBS'de %10 FBS

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

Herhangi bir çıkar çatışması beyan edilmedi.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
A83-01 Tocris (Türkçe) 2939
Gelişmiş DMEM/F-12 Thermo Fisher Bilimsel 12634010
B-27 takviyesi (50x), serumsuzThermo Fisher Bilimsel17504044
Dispase II, Toz Thermo Fisher Bilimsel 17-105-041
Fetal Sığır Serumu (FBS) Sigma F8667 Serisi
GlutaMAX Termo Balıkçı Bilimsel 35050061
Fosfataz İnhibitörünü Durdur Thermo Fisher Bilimsel 78428
Matrigel GFR Membran MatrisiCorning CB-40230C
N-asetil-L-sistein SigmaA9165
Normosin Thermo Fisher Bilimselkarınca-NR-1
Penisilin-Streptomisin (10.000 U/
mL)
Thermo Fisher Bilimsel 15-140-122
Poli (2-hidroksietil metakrilat)
(Poli-HEMA)
Sigma P3932-25G
Radyoimmünopresipitasyon testi
(RIPA)
Thermo Fisher Bilimsel PI89901
Rekombinant İnsan EGF, AnimalFreePeproTech Teknolojisi AF-100-15
Rekombinant İnsan Noggin PeproTech Teknolojisi 120-10C
RPMI 1640 Orta, HEPES (cs of
10)
Thermo Fisher Bilimsel 22400105
Sonik Çözücü Thermo Fisher BilimselFB120
Triton X-100SigmaX100-5ML
Y-27632 dihidroklorür (ROCK inhibitörü) Selleck KimyasalS1049-50MG
Serisi Serisi Serisi Serisi Serisi Serisi

Daha fazla makale keşfet

Organoid LizisiProtein Liziz TamponuSantrifüjlemeSonikasyonWestern BlotlamaProteaz İnhibitörleriBazal Membran MatrisiOrganoid KültürüFosfat Tamponlu Salin