Yöntem makalesi

Tam Montajlı İmmünofloresan Görüntüleme: Sağlam Organoidleri Değerlendirmek İçin Bir Sabitleme ve Boyama Tekniği

30 Nisan 2023

Bu makalede

Özet

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Kaynak: Crowell, P. D. et al. Organoid Kültür Kullanılarak Fare Prostat Epitel Hücrelerinin Farklılaşma Kapasitesinin Değerlendirilmesi. J. Vis. Uzm. (2019)

Bu videoda, sağlam prostat kanseri organoidlerinin immünofloresan boyama tekniği ve bunların tam montajlı konfokal mikroskopi ile görüntülenmesi açıklanmaktadır. Bu teknik, bazal ve luminal prostat epitel hücrelerinin ex vivo farklılaşma kapasitesini değerlendirmeyi amaçlar.

Protokol

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Tam Montajlı Konfokal Mikroskopi ile İmmünohistokimyasal Analiz için Prostat Organoidlerinin Sabitlenmesi ve Boyanması

  1. 24 oyuklu plakalardan prostat organoidlerinin toplanması — ZAMANLAMA: 45-60 dk
    NOT: Konfokal mikroskopi için işlem yapmak üzere prostat organoidlerini toplarken, yapılarını korumak için bunları dikkatli bir şekilde kullanmak çok önemlidir. Aşağıdaki toplama protokolü, izolasyon sırasında organoid yapının bozulmasını azaltmak için tasarlanmıştır.
    1. Plakayı 45°'lik bir açıyla eğerek organoidler içeren plakanın her bir oyuğundan ortamı çıkarın.
    2. Matris jeli, 37 ° C% 5 CO2 inkübatörde 30 dakika boyunca 500 μL dispas içeren ortam (Tablo 1) ile inkübe ederek sindirin.
    3. Sindirilmiş organoid süspansiyonu bir mikrosantrifüj tüpünde toplayın ve organoidleri RT'de 3 dakika boyunca 800 x g'da santrifüjleme ile peletleyin.
  2. Prostat organoidlerinin tam montajlı immünofloresan boyaması — ZAMANLAMA: 3-4 gün (1-5 saat / gün)
    1. PBS'ye 500 μL% 4 paraformaldehit ekleyin ve hafifçe çalkalayarak RT'de 2 saat inkübe edin.
    2. Organoidleri RT'de 3 dakika boyunca 800 x g'da santrifüjleme ile peletleyin, süpernatanı çıkarın ve peleti 1 mL PBS ile 15 dakika boyunca hafifçe çalkalayarak yıkayın.
    3. Peleti adım 1.2.2'deki gibi iki kez daha yıkayın.
    4. Organoidleri RT'de 3 dakika boyunca 800 x g'da santrifüjleme ile peletleyin ve süpernatanı çıkarın. Bloke edici çözeltiye 1 μg / mL DAPI ekleyin (Tablo 1). RT'de 2 saat veya alternatif olarak gece boyunca 4 °C'de hafifçe çalkalayarak inkübe edin.
    5. Organoidleri RT'de 3 dakika boyunca 800 x g'da santrifüjleme ile peletleyin ve süpernatanı çıkarın. Bloke edici solüsyona birincil antikor (tavşan anti-p63, fare anti-sitokeratin 8) ekleyin ve hafifçe çalkalama ile gece boyunca 4 ° C'de inkübe edin.
    6. Organoidleri RT'de 3 dakika boyunca 800 x g'da santrifüjleme ile peletleyin ve süpernatanı çıkarın. Peletleri 1 mL PBS ile 15 dakika boyunca hafifçe çalkalayarak yıkayın.
    7. Peleti adım 1.2.6'daki gibi iki kez daha yıkayın.
    8. Organoidleri RT'de 3 dakika boyunca 800 x g'da santrifüjleme ile peletleyin ve süpernatanı çıkarın. Bloke edici çözeltiye ikincil antikor (keçi tavşan önleyici IgG-Alexa Fluor 594, keçi anti-fare IgG-Alexa Fluor 488) ekleyin ve hafifçe çalkalama ile gece boyunca 4 ° C'de inkübe edin.
    9. Organoidleri RT'de 3 dakika boyunca 800 x g'da santrifüjleme ile peletleyin, süpernatanı çıkarın ve peleti 1 mL PBS ile 15 dakika boyunca hafifçe çalkalayarak yıkayın.
    10. Peletleri adım 1.2.9'daki gibi iki kez daha yıkayın.

2. Tam Montajlı Konfokal Mikroskopi için Lekeli Prostat Organoidlerinin Doku Temizleme ve Montajı — ZAMANLAMA: 7 SAAT

  1. Organoidleri RT'de 3 dakika boyunca 800 x g'da santrifüjleme ile peletleyin ve süpernatanı çıkarın.
  2. % 1 Triton X-100 ile PBS'ye 1 mL% 30 sükroz ekleyin ve hafifçe çalkalama ile RT'de 2 saat inkübe edin.
  3. Organoidleri RT'de 3 dakika boyunca 800 x g'da santrifüjleme ile peletleyin ve süpernatanı çıkarın.
  4. % 1 Triton X-100 ile PBS'ye 1 mL% 45 sükroz ekleyin ve hafifçe çalkalayarak RT'de 2 saat inkübe edin.
  5. Organoidleri RT'de 3 dakika boyunca 800 x g'da santrifüjleme ile peletleyin ve süpernatanı çıkarın.
  6. % 1 Triton X-100 ile PBS'ye 1 mL% 60 sükroz ekleyin ve hafifçe çalkalayarak RT'de 2 saat inkübe edin.
  7. Organoidleri RT'de 3 dakika boyunca 800 x g'da santrifüjleme ile peletleyin ve süpernatantın %95'ini çıkarın.
    NOT: Sükroz konsantrasyonu arttıkça pelet gevşer. Süpernatantın çıkarılması sırasında kaybolmadıklarını doğrulamak için DAPI lekeli organoidlerin UV ışığı altında gözlemlenmesi önerilir.
  8. Kalan süspansiyonun 10-20 μL'lik bir damlacığını odacıklı bir lamel üzerine aktarın ve konfokal mikroskobuğa devam edin.
    NOT: Lamel parçaları, ara parça olarak kullanılmak üzere damlalığın her iki tarafına da yerleştirilebilir (Şekil 1C). Bunlar, damlacık üzerine bir lamel yerleştirildiğinde organoidlerin çökmesini önler.

Tablo 1: Anahtar çözümlerin hazırlanması için talimatlar

Serisi
parçakonsantrasyon
B-27 Uzay Aracı1x (50x konsantreden seyreltin)
GlutaMAX1x (100x konsantreden seyreltin)
N-asetil-L-sistein1,25 milyon
Normosin50 μg/mL
Rekombinant İnsan EGF, Hayvansız50 ng/mL
Rekombinant İnsan Noggin100 ng/mL
R-spondin 1 şartlandırılmış ortam%10 şartlandırılmış medya
A83-01200 deniz mili
DHT (DHT)1 milyon
Y-27632 dihidroklorür (ROCK inhibitörü)10 μM
Gelişmiş DMEM/F-12Temel medya
R-spondin 1 koşullu ortam, Drost, et al.'de tarif edildiği gibi üretilir. Tüm bileşenlerin eklenmesinden sonra, filtre 0.22 μm filtre kullanarak fare organoid ortamını sterilize eder. ROCK inhibitörü sadece kültürün kurulması ve organoidlerin geçirilmesi sırasında eklenir.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

figure-results-1
Şekil 1: Prostat organoidlerinde soy belirteç ekspresyonunun Western blot ve tam montajlı konfokal mikroskopi ile analizi.(A) 7 günlük kültürden sonra bazal kaynaklı (üstte) ve luminal türevli (altta) organoidlerin temsili faz kontrast görüntüleri. Ölçek çubuğu = 100 μm. (B) 5 günlük kültürden sonra bazal kaynaklı (Bas) ve luminal kaynaklı (Lum) organoidlerin Western ...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
Herhangi bir çıkar çatışması beyan edilmedi.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
% 16 Paraformaldehit Thermo Fisher Bilimsel50-980-487
4',6-diamidino-2-fenilindol (DAPI) Thermo Fisher Bilimsel D1306
Gelişmiş DMEM/F-12 Thermo Fisher Bilimsel12634010
Dispase II, Toz Thermo Fisher Bilimsel17-105-041
Fetal Sığır Serumu (FBS) SigmaF8667 Serisi
Keçi anti-fare IgG-Alexa Fluor 488 CanlandırıcıA28175
Keçi anti-tavşan IgG-Alexa Fluor 594 CanlandırıcıA11012
Fare anti-sitokeratin 8 Biyo Efsane904804
Penisilin-Streptomisin (10.000 U / mL) Thermo Fisher Bilimsel15-140-122
Tavşan anti-p63 Biyo Efsane619002
RPMI 1640 Orta, HEPES (10 cs) Thermo Fisher Bilimsel22400105
Sakaroz SigmaS0389-500G
Triton X-100 Sigma X100-5ML
Serisi Serisi Serisi Serisi

Yeniden basım ve izinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya şekillerini yeniden kullanmak için izin iste

İzin iste

Etiketler

Prostat OrganoidleriKonfokal MikroskopiOrganoid BoyamaBazal Epitel H creleriL menal Epitel H creleriDoku effaflSakkaroz GradyanAntikor nk basyonuDAPI Boyama

İlgili makaleler