Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliğiniz gereklidir. Giriş yapın veya ücretsiz denemenizi bugün başlatın.

Yöntem makalesi

DAPI Boyama Kullanılarak Hücre Ölümü Taraması: Kanserli Hücre Hatlarında IR ile İndüklenen Klonojenik Hücre Ölümünün Hızlı Taraması İçin Bir Yöntem

4.8K görüntülenme

30 Nisan 2023

Bu makalede

Özet

Kaynak: Kobayashi, D. et al. Floresan Mikroskobu ile Radyasyona Bağlı Klonojenik Hücre Ölümü Modunun Değerlendirilmesi için Tek Adımlı Protokol. J. Vis. Uzm. (2017)

Bu video, DAPI boyama testi kullanarak iyonlaştırıcı radyasyonun (IR) neden olduğu kanser hücre hatlarında ana hücre ölümü profillerini tarama metodolojisini göstermektedir. Hücre ölümü geçiren hedef hücrelerin DAPI ile boyanmış çekirdekleri farklı morfolojiler sergiler ve floresan mikroskobu ile kolayca tanımlanabilir.

Protokol

1. Malzemelerin Hazırlanması

  1. Otoklav lameller
    1. Lamelleri bir cam kabın içine yerleştirin.
    2. Cam kabı folyo ile örtün.
    3. 121 °C'de 15 psi'de 20 dakika otoklav.
    4. 50 °C'de kurutun. Oda sıcaklığında bir kültür davlumbazında saklayın.
  2. Fiksasyon Çözeltisini Hazırlayın: Fosfat tamponlu salin (PBS) içinde% 3 paraformaldehit +% 2 sükroz
    1. 1.000 mL'lik bir cam şişeye 700 mL PBS ve 30 g paraformaldehit ekleyin.
      Dikkat: Paraformaldehit aşındırıcıdır, uygun eldiven giyin.
    2. Paraformaldehiti bir mikrodalga kullanarak 80 °C'ye ısıtarak tamamen çözün.
      Dikkat: Paraformaldehit dumanları zehirlidir, maske takın.
    3. Gece boyunca oda sıcaklığında bırakın.
    4. 20 gr sükroz ekleyin.
    5. Toplam hacmi 1 L yapmak için PBS ekleyin.
    6. 50 mL'lik tüplerde alikot. Fiksasyon Çözeltisi -20 °C'de 3 yıl veya 4 °C'de 3 ay saklanabilir.

2. Işınlama

DİKKAT: X-ışını ışınlayıcıyı üreticinin talimatlarına göre dikkatli bir şekilde kullanın.

  1. Hücreleri ters faz mikroskobu altında inceleyin. Hücrelerin lamel üzerine bağlı ve canlı olduğunu onaylayın.
  2. Çanağı 6 Gy X-ışını (1,4 Gy/dk, 300 KVP, 20 mA) ile ışınlayın.
  3. % 5 CO2.
    içeren bir atmosferde 37 ° C'de 72 saat inkübe edin not: Kuluçka süresi deney tasarımına göre değiştirilebilir

3. Fiksasyon

  1. Çanaktan kültür ortamını aspire edin.
  2. Makas kullanarak 1.000 μL'lik bir mikropipet ucunun ucunu uçtan 5 mm kesin.
    not: Kesilen uç, Sabitleme Solüsyonunun düzgün bir şekilde uygulanmasına yardımcı olur.
  3. Kesilen ucu kullanarak, yemeğin yan duvarından yemeğe 1 mL Fiksasyon Solüsyonu (adım 1.2'de hazırlanmıştır) ekleyin.
    not: Bu adım zamana duyarlıdır ve bu nedenle birden fazla numuneyi tutarken mikropipet uçlarını değiştirmeden gerçekleştirilmelidir. Fiksasyon Solüsyonunun doğrudan tabağın dibine uygulanması hücrelere zarar verebilir.
  4. Çanağı kare bir kültür tabağına yerleştirin. Sabitleme Solüsyonunu lamel üzerine eşit şekilde dağıtmak için kare kültür kabını hafifçe sallayın.
  5. Oda sıcaklığında 10 dakika inkübe edin.
  6. Tabaktan aspire etme Fiksasyon Çözeltisi.
  7. Yemeğin yan duvarından yemeğe 2 mL PBS ekleyin.
    not: PBS'nin doğrudan yemeğin dibine uygulanması hücrelere zarar verebilir.
  8. PBS'yi çanaktan aspire edin.
  9. 3.7 ve 3.8 adımlarını iki kez tekrarlayın.
    not: Çanak, lameller 2 mL PBS'de yıkanarak 4 ° C'de 1 hafta boyunca saklanabilir.

4. DAPI Boyama

  1. Bir cam slayta 5 μL 1 μg/mL DAPI boyama reaktifi uygulayın.
    not: DAPI boyama reaktifi, -20 ° C'de veya altında ışıktan korunarak saklandığında 6 ay boyunca stabildir.
  2. Bir neşter kullanarak, lameli tabaktan çıkarın.
  3. Lamel üzerindeki fazla PBS'yi, lamel kenarına bir kağıt havluyla dokunarak çekin.
  4. Hücrelerin DAPI boyama reaktifine maruz kalması için lamel cam slayt üzerindeki DAPI boyama reaktifinin üzerine baş aşağı monte edin.
    not: Bu adım zamana duyarlıdır. DAPI boyama reaktifinin kurutulması, optimal olmayan lekelenmeye yol açabilir.
  5. Numuneler -20 °C'de 1 yıl saklanabilir.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

Herhangi bir çıkar çatışması beyan edilmedi.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
Kapak fişi MatsunamiC013001
Paraformaldehit Sigma-Aldrich P6148-1KG
Sakaroz Sigma-Aldrich84097-250G
Fosfat tamponlu tuzlu su Cosmo Biyografi16232000
neşter Kai MedikalNo.20, 520-A
35 mm hücre kültürü kabı doğan353001
Ters Faz Mikroskobu Şimazu114-909
X-ışını ışınlayıcı Faxitron BiyotikFaxitron RX-650
Kare Kültür Tabağı Corning431110
sürgülü cam MatsunamiPro-11 (İngilizce
DAPI boyama reaktifi Hücre Sinyalizasyonu 8961S
Floresan mikroskobu Nikon TUTULMA Ni
floresan mikroskobu DAPI filtresi NikonU-FUW, BP340-390, BA420IF, DM410
floresan mikroskop lensi (20×) NikonPlan Apo λ 20X/0.75
Floresan Mikroskop Lensi (60×, Yağ) NikonPlan Apo λ 60X/1.40 yağ
yağ OlympusN5218600
CCD kamera NikonDS-Qi2
Dijital Görüntü Elde Etme Yazılımı NikonNIS-Elements Belgesi
Lens temizleyici Olympus OT0552
kloroform Wako (Vahşi)035-02616
Gazetesi Serisi Gazetesi Serisi ) Serisi Serisi

Etiketler

İyonalize Edici RadyasyonFloresan MikroskopiApoptoz TespitiMitotik KatastrofSenesans AnaliziKanser Hücre HatlarıFiksasyon Protokolü