İnsan katılımcıları içeren tüm prosedürler, insan refahı için kurumsal, ulusal ve uluslararası yönergelere uygun olarak gerçekleştirilmiş ve yerel kurumsal inceleme kurulu tarafından gözden geçirilmiştir.
1. DSM Dokularının Diseksiyonu ve Mukozasız DSM Parçalarının Hazırlanması
- Ameliyathaneden laboratuvara gelen tüm kalınlıktaki idrar kesesi örneğini, soğuk diseksiyon / sindirim solüsyonu ile doldurulmuş sıkıca kapatılmış bir kapta inceleyin (DS bileşimi için Şekil 1 ve Tablo 1).
not: Numune genellikle laboratuvara gelmeden önce birkaç saatten gece boyunca soğuk DS'de tutulur. Daha uzun depolama için, DS (Tablo 1) 1 mM CaCl2 ile desteklenir.
- Yapışmış kalıntıları ve kanı yıkamak için insan tüm kalınlıktaki DSM örneğini (mukoza, DSM ve seroza dahil tüm katmanları içeren) buz gibi soğuk DS ile çıkarın ve durulayın.
- İdrar kesesi örneğini, mukozası yukarı ve seroza aşağı bakacak şekilde, buz gibi soğuk DS ile doldurulmuş silikon enantiyomer kaplı (Malzeme Tablosu) 150 mm çapında yuvarlak bir tabağa sabitleyin (Şekil 1B).
- Komşu yağ dokusunu, kan damarlarını, epiteli (ürotelyum) ve muskularis mukozasını mikromakas ve forseps kullanarak keskin bir diseksiyon ile örnekten çıkarın.
- Birkaç mukoza içermeyen DSM parçası (~2–3 mm uzunluğunda ve 4–6 mm genişliğinde) kesin (Şekil 1C).
2. Yeni İzole Edilmiş Tek DSM Hücreleri Veren DSM Parçalarının Enzimatik Ayrışması
- 3 ila 6 DSM parçasını, papain ve ditiotreitol (DS-P, Tablo 1) içeren 1 ila 2 mL önceden ısıtılmış (~ 37 ° C) DS içeren bir tüpe yerleştirin ve DSM parçalarını DS-P'de ~ 37 ° C'de 30-45 dakika inkübe edin, tüpü ara sıra hafifçe sallayın (her 10-15 dakikada bir).
not: Enzimatik işlem için sıcaklığı en iyi şekilde kontrol etmek için, doku parçaları ve enzim çözeltileri içeren tüpler, ya dolaşımdaki ısıtılmış bir su banyosuna (Şekil 1D) ya da yüksek hassasiyetli sıcaklık kontrollü bir çalkalama suyu banyosuna (Şekil 1E) bağlı suyla dolu bir cam doku odasına yerleştirilir.
- DS-P'yi tüpten çıkarın, DSM parçalarını buz gibi soğuk DS ile kısa bir süre yıkayın, DSM parçalarını tüpün dibinde bırakarak soğuk DS'yi tüpten atın.
- DSM parçaları ile tüpe 1 ila 2 mL DS içeren kollajenaz tip II (DS-C, Tablo 1) ekleyin; hafifçe karıştırın ve ~ 37 ° C'de 25-40 dakika inkübe edin, tüpü ara sıra hafifçe sallayın (her 10-15 dakikada bir).
- DS-C'yi atın ve enzimle muamele edilmiş DSM parçalarını buz gibi soğuk DS ile 5-10 kez yıkayın.
- Son yıkamadan sonra, DS solüsyonunu tüpün içinde bırakın; tek DSM hücrelerini serbest bırakmak için ateşle parlatılmış bir Pasteur pipeti ile birkaç kez hafifçe ezin.
- Dağılmış DSM hücreleri içeren birkaç damla DS solüsyonunu cam tabanlı bir hazneye veya bir lamel üzerine yerleştirin ve hücrelerin tabana yapışmasını sağlamak için uygulamadan en az 5 dakika sonra mikroskop altında (20x veya 40x objektif kullanarak) kaliteyi görsel olarak inceleyin.
- Elektrofizyolojik deneyler için hemen yeni izole edilmiş DSM hücrelerini kullanın veya hücreleri DS içeren bir tüpte ~4 °C'de buz üzerinde veya buzdolabında kullanıma kadar saklayın (tipik olarak 8 saate kadar hazırlık için).
not: Aynı preparat içinde, hücrelerin kalitesi yüksek derecede canlıdan aşırı sindirilmiş, ölü DSM hücrelerine kadar değişir (Şekil 2). Sıralı papain-kollajenaz yöntemi çok yüksek sayıda cansız hücre verdiğinde, preparat atılır ve DSM parçalarının yeni bir sindirimi gerçekleştirilir, ancak inkübasyon aralıkları azalır. Prosedür çok az DSM hücresi ile sonuçlanırsa, DSM parçalarının müteakip sindirimi için inkübasyon aralıkları arttırılır. α-düz kas aktinine karşı pozitif immünoreaktivite, DSM hücrelerinin kimliğini doğrular (Şekil 3).
| Çözüm Türü | Kompozisyon (mM cinsinden) |
| DS (Diseksiyon / Sindirim Solüsyonu) | 80 Na-glutamat, 55 NaCl, 6 KCl, 10 HEPES, 2MgCl2 ve 11 glikoz, pH 7.4'e ayarlanmış (10 M NaOH ile) |
| DS-P (Papain içeren DS) | 1-2 mg/ml papain, 1 mg/ml ditiotreitol ve 1 mg/ml sığır serum albümini içeren DS |
| DS-C (Kollajenaz içeren DS) | 1-2 mg/ml kollajenaz tip II, 1 mg/ml sığır serum albümini, 0 veya 1 mg/ml tripsin inhibitörü ve 100-200 μM Ca2+ içeren DS çözeltisi |
| P (Pipet) | 110 CsOH, 110 aspartik asit, 10 NaCl, 1 MgCl2, 10 HEPES, 0.05 EGTA ve 30 CsCl, pH CsOH ile 7.2'ye ayarlanmış ve amfoterisin-B (300-500 μg / ml) ile desteklenmiştir |
| E (Hücre dışı) | 10 tetraetilamonyum klorür (TEA), 6 CsCl, 124 NaCl, 1 MgCl2, 2 CaCl2, 10 HEPES ve 10 glikoz, NaOH veya CsOH ile 7.3-7.4'e ayarlanmış pH ve 0.002-3 (2-3 mM) nifedipin |
Tablo 1: Delikli yama-kelepçe deneylerinde kullanılan diseksiyon/sindirim çözeltisi (DS) ve pipet ve hücre dışı çözeltilerin bileşimleri.