Yöntem makalesi

Koloni Oluşumu Testi için Giemsa Boyama: Mezenkimal Kök Hücrelerin Proliferatif Yeteneğini Değerlendirmek İçin İn Vitro Boyama Prosedürü

4.5K görüntüleme

8 Temmuz 2025

Bu makalede

Özet

Kaynak: Schlaefli, P. et al. Pıhtılaşmış Kemik İliği Örneklerinden Mezenkimal Kök Hücreleri Kurtarmak İçin Enzimatik Bir Yöntem. J. Vis. Uzm. (2015)

Bu videoda, mezenkimal kök hücrelerin canlı koloniler oluşturmak için proliferatif potansiyelini değerlendirmek için Giemsa boyama prosedürünü gösteriyoruz. Giemsa boyası, esas olarak masmavi ve eozin boyalarından oluşan ve yüklerine bağlı olarak hücresel bileşenler için seçici afinite taşıyan nötr bir boyadır.

Protokol

1. Genleşme Hücre Kültürü ve CFU Plakaları için Tohumlama

  1. Hücreleri (eritrositler ve mononükleer hücrelerden oluşan) 50 ml bazal ortamda yeniden süspanse edin:% 10 fetal sığır serumu (FBS), 100 U / ml penisilin, 100 mg / ml streptomisin ve 2.5 mg / ml amfoterisin B ile desteklenmiş Alfa-MEM. Bir Neubauer odası kullanarak Tripan Mavisi çözeltisinde 1:10 oranında seyreltilmiş hücreleri sayın.
  2. Hücreleri 5 x 10⁷ hücre/cm² yoğunlukta hücre kültürü şişelerine yerleştirin ve 37 °C'de nemlendirilmiş bir inkübatörde inkübe edin. Varsa, hipoksik (% 5 oksijen) koşulları kullanın. CFU tahlil kontrolü için, 10 cm çapında bir hücre kültürü kabında 10⁹ hücreleri plakalayın.
  3. 3 günlük kültürden sonra, mezenkimal kök hücreler hücre kültürü kabına bağlanırken diğer hücreler süspansiyon halinde kalır. Besiyerini 5 ng/ml bazik fibroblast büyüme faktörü (bFGF) ile desteklenmiş bazal besiyeri ile değiştirin. CFU tahlil kontrolü için, hücre kültürü kabına da aynı şekilde muamele edin.
  4. Hücre kültürüne toplam 2 hafta devam edin, haftada üç kez ortam alışverişi yapın. Hücreler% 80 birleşmeyi aşarsa, tripsinizasyon ile bölünür. CFU tahlil kontrolü için, ortamı aynı şekilde değiştirin, ancak iki hafta boyunca hücreleri bölmeyin.

2. CFU Testi için Giemsa Stain

  1. Tabak başına 10 ml Giemsa çözeltisi hazırlayın: stok çözeltisini (gliserol: metanol içinde 7.6 g / l Giemsa) steril suda 1:10 oranında seyreltin (her zaman taze bir çalışma seyreltmesi hazırlayın).
  2. Ortamı hücre kültürü kabından çıkarın ve hücreleri PBS ile yıkayın. Petri kabına sıvı uygularken çok dikkatli olun ve hücreleri yıkamaktan kaçının.
  3. Hücreleri RT'de 5 dakika boyunca saf Metanol içinde sabitleyin. Metanolü atın. Giemsa solüsyonunu ekleyin ve 37 ° C'de nemlendirilmiş bir inkübatörde 60 dakika inkübe edin.
  4. PBS ile iki kez yıkayın. Tabak kafasını önce bir kağıt havlu üzerinde havayla kurutun. Kolonileri manuel olarak sayın. Bu en iyi şekilde plakanın arkasındaki bir işaretleyici kalem kullanılarak elde edilir.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

Herhangi bir çıkar çatışması beyan edilmedi.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
Bazal Ortam Bileşenleri
PenStrep 100XGibco (Gibco)15140122
İnsan FGF-temelPeprotech teknolojisi100-18B
MEM Alpha, Nükleosit, kararlı Glutamin ileAmimed1-23S50-I
FBS Isı İnaktif Hale GetirildiAmimed2-01F36-I
Amfoterisin BUygulamaA1907
jenerik
PbsUygulama964,91
Giemsa lekesiUygulamaA0885
Sarf
Primaria hücre küpü kabıdoğan353803
Hücre kültürü şişesi - Şişe T300TPP (Cesaret Partisi90301
ekipman
Striptizler Serolojik Pipet 5mlCorning4487-200 adet
Nemlendirilmiş inkübatör Heracells 240Termo bilimsel51026331
Heraeus Multifuge 1S-RTermo bilimsel75004331
Serisi Serisi numaralı telefondan temin edilmiştir.

Yeniden basım ve izinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya şekillerini yeniden kullanmak için izin iste

İzin iste

Etiketler

Metanol FiksasyonuAzure B BoyamaEozin Y BoyamaKoloni Say mKemik li i T revli H crelerH cre K lt r

İlgili makaleler