Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliğiniz gereklidir. Giriş yapın veya ücretsiz denemenizi bugün başlatın.

Yöntem makalesi

Hücre heterojenliğini belirlemek için tek hücreli western blotlama

1.2K görüntüleme

8 Temmuz 2025

Bu makalede

Özet

Kaynak: Wang, L., et al., Monosit Kemotaktik Aktivitesinin İn Vivo Olarak Ölçülmesi ve Kan Monosit Türetilmiş Makrofajların Karakterizasyonu. J. Vis. Uzm. (2019).

Video, heterojen bir süspansiyonda tek hücreli bir western blotlama çipi üzerinde yakalanan tek tek hücrelerin bileşimini tanımlayan tek hücreli bir western blotlama tekniğini açıklar. Teknik, hedef hücreye özgü bir protein markörüne etiketlenmiş floroforun floresan yoğunluğunu tespit eder.

Protokol

1. Tek Hücreli Western Blot (scWB) Analizi Kullanılarak Hücre Süspansiyonunda Hücre Kompozisyonunun Belirlenmesi

  1. RT'de en az 10 dakika boyunca bir Petri kabında 15 mL 1x süspansiyon tamponunda kullanmadan önce scWB çipini yeniden sulandırın.
  2. Yeniden sulandırılmış çipe 1 mL seyreltilmiş tek hücreli süspansiyon (10.000-100.000 hücre / mL) ekleyin. Yüzeyi 10 cm'lik bir Petri kabının dibine yerleştirin. Yüzeyin düz ayarlandığından emin olun.
  3. Kurumasını önlemek için Petri kabını bir kapakla örtün ve hücrelerin bir gradyan ile 5-15 dakika oturmasına izin verin.
  4. Çipi parlak alan mikroskobu altına yerleştirin ve kuyuları 10x büyütmede inceleyin.
    not: Mikro kuyuların yaklaşık% 15-20'si tek bir hücre tarafından işgal edilmeli ve kuyuların% 2'sinden azı 2 veya daha fazla hücre içermelidir.
  5. Çipi içeren 10 cm'lik Petri kabını 45 derece eğin.
  6. Çipin üstünden altına nazikçe pipetleme yaparak yakalanmamış hücreleri çipin yüzeyinden çıkarmak için çipi 1x süspansiyon tamponu ile yıkayın. 3 kez tekrarlayın.
  7. Tek hücreli Batı enstrümanını hazırlayın.
  8. Lizis süresini, elektroforez süresini ve UV yakalama süresini ayarlayın. Bazal membrandan türetilmiş jel tıkacından geri kazanılan işe alınmış makrofajları analiz etmek için aşağıdaki ayarları kullanın: lizis süresi: 0 s; elektroforez süresi: 160 s; UV yakalama süresi 240 sn.
  9. Çipi, jel tarafına bakan tek hücreli Western cihazının elektroforez hücresine dikkatlice yükleyin. Çipin jel tarafına zarar vermemek için dikkatli olun.
  10. Lizis / çalışma tamponunu hazneye dökün ve tüm tek hücreli Western çipini tamamen kaplayın. Hücre lizizini başlatın.
  11. 1.8'de listelenen ayarı kullanarak scWB cihazını çalıştırın.
  12. Çalışma tamamlandıktan sonra, çipi 10 cm'lik bir Petri kabına aktarın ve çipi RT'de 10 dakika boyunca 1x yıkama tamponu ile iki kez yıkayın.
  13. Toplam 80 μL antikor seyreltici hacminde birincil antikor dilüsyonlarını (anti-vinkülin: 1:10; anti-CD45: 1:15, anti-CD11b: 1:20, anti-F4/80: 1:10) hazırlayın (8 μL antikor 1 artı 8 μL antikor 2 artı 64 μL seyreltici karıştırın).
  14. Antikor problama odasına 80 μL birincil antikor çözeltisi ekleyin ve antikor çözeltisi çip boyunca fitil olacak şekilde çip jel tarafını aşağı indirin.
  15. RT'de 2 saat boyunca birincil antikor çözeltisi ile inkübe edin.
  16. Çipi, çalkalayıcı üzerindeki 1x yıkama tamponunda 10 dakika boyunca üç kez yıkayın.
  17. Jeli tuzdan arındırmak için çipi çalkalayıcıdaki suda 10 dakika boyunca bir kez yıkayın.
  18. Toplam 80 μL hacimde 1:20 oranında ikincil antikor seyreltmesi hazırlayın (2 μL ikincil antikor artı 78 μL seyreltici karıştırın).
  19. Çipi, ışıktan korunan RT'de 1 saat boyunca ikincil bir antikor ile inkübe edin.
  20. Çalkalayıcı üzerinde 1x yıkama tamponu ile çipi 10 dakika boyunca üç kez yıkayın.
  21. Kalan yıkama tamponunu çıkarmak için bir sürgülü döndürücü kullanarak çipi döndürün.
  22. Çipi, ikincil antikorlara bağlı floroforun spektral kanalında 5 μm çözünürlükte çift lazerli bir mikrodizi tarayıcıda tarayın.
  23. ScWB'ye özel yazılım kullanarak verileri analiz edin.

2. scWB Çipinin Sıyrılması

  1. Taranan çipi sıyırmaya hazır olana kadar bir yıkama tamponunda saklayın.
  2. Su banyosunu bir davlumbazın içine yerleştirin.
  3. Su rafın sadece 1 cm üzerinde olacak şekilde su banyosuna 50 mL'lik bir tüp rafı yerleştirin ve su sıcaklığını 60 °C'ye ayarlayın.
  4. Sıyırma tamponunu hazırlayın. 1 L sıyırma tamponu çözeltisi için, 9.85 g Tris-HCl (pH 6.8) ve 20 g SDS'yi 900 mL damıtılmış suda çözün ve pH'ı ayarlayın. Daha sonra damıtılmış su ile 1L'ye kadar doldurun. Her kullanımdan hemen önce% 0.8 (h / h) β-merkaptoetanol (β-ME; 14.3 M) ekleyin.
  5. İlk taramadan sonra, sıyırmadan önce çipi 10 cm'lik bir Petri kabına yerleştirin.
  6. Her çip için 40 mL sıyırma tamponu alın ve 320 μl β-ME.
    ekleyin DİKKAT: β-ME toksiktir ve insanlar ve çevre için tehlikelidir. Çeker ocakta aşağıdaki işlem yapılmalıdır.
  7. Çipi teneke kutuya yerleştirin ve teneke kutuya su sızmasını önlemek için teneke kutuyu parafilm ile kapatın
  8. Teneke kutuyu önceden ısıtılmış su banyosundaki tüp rafının içine yerleştirin.
  9. 90 dakika inkübe edin.
  10. Çipi teneke kutudan dikkatlice çıkarın ve taze bir Petri kabına yerleştirin.
  11. Çipi 1x yıkama tamponu ile bir kez kısaca yıkayın. Daha sonra Petri kabına 15 mL 1x yıkama tamponu ekleyin.
  12. Çipi bir çalkalayıcıda 15 dakika yıkayın. Yıkama adımını dört kez tekrarlayın.
    not: Chip bir sonraki primer antikor için hazırdır (bkz. adım 1.12 - 1.21)

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

Herhangi bir çıkar çatışması beyan edilmedi.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
10 cm Petri kabıGriner Bio-Bir664 160
10x süspansiyon tamponuProteinler BasitR101
15 cm Petri kabıdoğan353025
2-MerkaptoetanolMP BIYOMEDIKAL2194705
% 5 yıkama tamponuProteinler BasitR252
Antikor seyrelticiProteinler Basit042-203
Tezgah Üstü SantrifüjBeckman Coulter'ın fotoğrafı.Mikrofüj 22R Santrifüj
Sığır Serumu AlbüminiSigma-AldrichA7906-100G
CalceinThermoFisher (Termo Balıkçı)C30991 mL
CD11bNovus BiyolojikleriNB110-89474
CD45 (D4H7K) tavşan mAbHücre Sinyal Teknolojileri727987S
CD68/SR-D1 (FA-11)Novus BiyolojikleriNBP2-33337SS
Cellometer VizyonuNexcelom
DağıtmaBd354235100 mL
Diseksiyon makası
Eşek anti-Tavşan IgG ikincil antikoru [NL557]Novus BiyolojikleriNL004NL 557 eşlenik
Eşek anti-sıçan IgG (H + L) ikincil antikoru [DyLight 650]Novus BiyolojikleriNBP1-75655DyLight 650 eşlenik
F4/80 (CI-A3-1)Novus BiyolojikleriNB600-404SS
Isı BloğuEfendi22331Termo karıştırıcı
Lizis/Çalışan arabellekProteinler BasitR200
Matrigel Matrisi (Büyüme Faktörü Azaltılmış)Bd35423010 ml
Mikrodizi tarayıcıPerkinElmerTarama Dizisi Gx
Mikrosantrifüj tüpüBalıkçı Bilimsel05-408-129
mikroskopThermoFisher (Termo Balıkçı)Evos fl
MiloProteinler BasitTek hücreli batı
iğneBd30511126 gr
Parafilm Filmi
Prob odasıProteinler Basit035-020
Rekombinant fare CCL2 / JE / MCP-1 proteiniAR-GE479-JE-050
scWEST çipProteinler BasitC300
ShakerBiyoekspresGen eşi orbital çalkalayıcı
Tek hücreli batı çip teneke kutuProteinler Basit035-118
Slayt döndürücüLabnet AğıC1303-T
Sodyum Dodesil Sülfat (SDS)Balıkçı BilimselBP 166-500
şırıngaBd3096021 mL
Tris-HidroklorürBalıkçı BilimselBP 153-500
cımbızProteinler Basit035-020
Su banyosuThermoFisher (Termo Balıkçı)
Serisi Serisi Gazetesi Serisi Serisi Serisi Serisi Serisi Serisi Serisi

Etiketler

H cre Heterojenite AnaliziProtein Mark r TespitiFloresans iddeti l mMikrokuyu ipi Y klemeElektroforez K veti KurulumuAntikor Prob Protokolip S y rma Y ntemiMonosit Makrofaj Tan mlamamm n H cre Karakterizasyonu