Yöntem makalesi

Sineklerde Sistemik Bakteriyel Enfeksiyonu Tanıtmak İçin Septik Bir İğne Ucu Tekniği

1.3K görüntüleme

8 Temmuz 2025

Bu makalede

Özet

Kaynak: Khalil, S., et al. Drosophila melanogaster'de Sistemik Bakteriyel Enfeksiyon ve İmmün Savunma Fenotipleri. J. Vis. Uzm. (2015)

Bu video, patojenik bir bakteriyi doğrudan vücut boşluğuna sokarak Drosophila'yı enfekte etme tekniğini göstermektedir. Bu yöntem, epitel bariyerlerini ve diğer pasif savunma mekanizmalarını atlayarak sistemik enfeksiyonun indüksiyonuna izin verir. Enfeksiyon üzerine, ortaya çıkan bağışıklık tepkisi, sinek ölümlerinin izlenmesi ve aşağı akış tahlillerinin yapılması ile değerlendirilir.

Protokol

>1. Sinekleri toplayın ve hazırlayın

  1. İstenilen deneysel koşullar altında arka D. melanogaster. Yetiştirme sırasında sinekleri aşırı kalabalıklaştırmamaya dikkat edin ve larva yoğunluğunun tedaviler arasında tutarlı olduğundan emin olun, çünkü larva aşamasındaki çevresel koşullar yetişkin aşamasında bağışıklık savunma fenotiplerini derinden etkileyebilir.
  2. Pupa vakasından eklosiyondan 0 - 3 gün sonra deneysel sinekleri toplayın ve taze ortama aktarın.
  3. Toplanan sinekleri, eklosiyondan 5 - 7 gün sonra yaşlanana kadar istenen bir sıcaklıkta (genellikle 22 °C ile 28 °C arasındaki sıcaklıklar uygundur) barındırın.
    not: Bu, sineklerin metamorfozu tamamlaması ve olgun yetişkinler haline gelmesi için yeterli zaman sağlar, ancak yaşlanma başlamadan çok öncedir.
  4. Enfeksiyondan önce istenen sayıda sineği ayrı bir şişeye ayırın ve yine aşırı kalabalıktan kaçınmaya dikkat edin.
    not: Bu gösteride sadece erkekler enfekte olur, ancak açıklanan prosedürü kullanarak kadınları enfekte etmek de aynı derecede mümkündür.

2. Bakterileri Kültür Yapın ve Hazırlayın

  1. Enfeksiyondan en az 2 gün önce seçilen bakterinin bir ana plakasını hazırlayın. Bakterileri -80 °C'de süresiz olarak saklanan %15'lik bir gliserol stoğundan çıkarın. Ana plakayı 4 °C'de 2 haftaya kadar saklayın. Ana plakaları her zaman doğrudan donmuş gliserol stoğundan çizin. Bakterilerin plakadan plakaya seri geçişinden kaçının, çünkü kültürde tekrarlanan geçiş bakterilerin zayıflatılmış virülans geliştirmesine neden olabilir.
    not: Bu örnekte Providencia rettgeri ve Escherichia coli kullanılmıştır.
  2. Enjeksiyon için bakteriyel bir süspansiyon hazırlamak için aşağıdaki prosedürü kullanın.
    1. Ana plakadan izole edilmiş tek bir koloni ile steril bir ortamı aşılayarak 2 ml'lik bir bakteri kültürü büyütün. Bakterileri durağan faza kadar büyütün (örneğin, 37 ° C'de O/N büyümesi).
      not: Hem P. rettgeri hem de E. coli, Luria Broth'ta 20 - 37 ° C arasındaki sıcaklıklarda hafif çalkalama ile iyi büyür.
    2. Kültür durağan faza ulaştığında, bir masa üstü santrifüjde (5.000 x g'da 3 dakika) kültürün yaklaşık 600 μl'sinden hücreleri nazikçe peletleyin, süpernatanı atın ve bakterileri yaklaşık 1.000 μl steril fosfat tamponlu salin (PBS; 137 mM NaCl, 2.7 mM KCl, 10 mM Na2PO4, 1.8 mM KH2PO4, pH = 7.4).
    3. 600 nm'de absorbans olarak bir spektrofotometre ile ölçülen, kullanılan bakteri için uygun bir optik yoğunluk (OD) elde etmek için yeniden süspanse edilmiş hücreleri steril PBS'de seyreltin. Sinekleri enfekte etmek için bu süspansiyonu kullanın.
      not: A600 = 0.1 veya 1.0, sırasıyla yaklaşık 10,8 ve 10,9, Providencia, rettgeri veya E. coli'ye karşılık gelir. Hem canlı hem de ölü bakteriler optik yoğunluğa katkıda bulunduğundan, bakteri cesetleri birikmeden ve optik yoğunluk ile enfeksiyon sırasında ortaya çıkan canlı bakteri sayısı arasındaki ilişkiyi bozmadan önce kültürlerin durağan fazda erken hasat edilmesi önemlidir.

3. Sinekleri Enfekte Edin

NOT: Drosophila bağışıklığı sirkadiyen ritimden etkilendiğinden, deneysel kopyalar arasında enfeksiyonları günün benzer bir saatinde gerçekleştirmek önemlidir.

  1. Septik iğne batması ile
    1. İğneyi iğneleme için hazırlayın.
      1. 200 μl'lik bir mikropipet ucunun ucunu eritin ve erimiş plastiğe 0,15 mm'lik bir böcek minutien pimi yerleştirin. Plastiğin, pimin yaklaşık 0,5 cm'si plastikten uzanacak şekilde pim yerinde tutulacak şekilde katılaşmasına izin verin.
    2. Yaralama kontrolleri oluşturun.
      1. Hafif bir CO2 akışı altında istenen sayıda sineği uyuşturun.
      2. Göğüs kafesinin sternoplevral plakasındaki sinekleri iğne ile delin, kanatların ve bacakların bağlantı yerlerinden kaçının. Gerekirse, yumuşak forseps kullanarak minutien pimindeki sinekleri nazikçe çıkarın.
        not: Sinekleri ventrolateral yüzeydeki ön karın gibi diğer bölgelere delmek de mümkündür, ancak enjeksiyon bölgesini her deneyde tutarlı tutmak önemlidir. Karnın kütikülünden delinmek, göğüs kafesi delinmesinden daha zor olma eğilimindedir ve bu nedenle daha az yaygındır.
      3. Delinmiş sinekleri yeni bir sinek ortamı ile taze bir şişeye yerleştirin ve sineklerin yiyeceğe yapışmasını önlemek için tüm sinekler anesteziden kurtulana kadar şişeyi yan yatırın.
    3. Bakteriyel enfeksiyonu tanıtın.
      1. Hafif bir CO2 akışı altında istenen sayıda sineği uyuşturun.
      2. Her bir sineği medya kontrolleriyle aynı yere delin, her bir sineği delmeden önce pimin ucunu prosedür 2.2'de hazırlanan bakteri süspansiyonuna daldırın.
      3. Delinmiş sinekleri yeni bir sinek ortamı ile taze bir şişeye yerleştirin ve sineklerin yiyeceğe yapışmasını önlemek için tüm sinekler anesteziden kurtulana kadar şişeyi yan yatırın.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

Herhangi bir çıkar çatışması beyan edilmedi.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
kuvözGüçler Bilimsel, IncDROS52SD
Paintbrush
CO2 FlypadsUçan Şeyler59-114
CO2 Hava gazıCD FG50
Drosophila yetiştirme karışımı
6 oz Kare Tabanlı Şişeler, polipropilenGenesee Bilimsel32-130
Steril Ekstra Büyük Pamuk ToplarıFisher markası22-456-882
mikroskopOlimpos ŞirketiSZ51
Drosophila Şişeleri polistirenVWR uluslararası89092-720
Steril Büyük Pamuk ToplarıFisher markası22-456-883
2 litrelik şişeVWR uluslararası89000-370
Şeffaf Kapaklı Petri Kapları, Yükseltilmiş Sırt; 100 . x 15 mm;VWR uluslararası25384-302
LB Ağar, DeğirmenciDifco Bilişim244520
Aşılama DöngüsüVWR uluslararası80094-488
Çeşitli boyutlarda Rainin Klasik Pipetler
0,1 μl ila 2 μl,
2 μl ila 20 μl,
20 μl ila 200 μl,
100 μl ila 1000
YağmurPR-2
PR-20
PR-200
PR-1000
Mikropipet uçları (çeşitli boyutlarda)VWR uluslararası30128-376
53503-810
16466-008
Luria Suyu Tabanı, DeğirmenciDifco Bilişim241420
Tek Kullanımlık Kültür Tüpleri Borosilikat CamVWR uluslararası47729-576
S-500 Orbital ÇalkalayıcıVWR uluslararası14005-830
merkezkaçVWR uluslararası37001-300
PBS pH 7.4 10xCanlandırıcı70011044
SmartSpec 3000 SpektrofotometreBiyo-Rad170-2501
Yarı Mikro Hacimli KüvetlerBiyo-Rad223-9955
ForsepsGüzel Bilim Araçları11255-20
Mineral Yağ, Beyaz, hafifMacron İnce Kimyasallar6358-10
Dakika cinsinden pimlerGüzel Bilim Araçları26002-10
1.5 mL Mikrosantrifüj tüpleri; Mühür AyiniABD Bilimsel A.Ş.1615-5500
Serisi arası Serisi arası Teknolojileri Serisi Teknolojileri arası arası arası

Yeniden basım ve izinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya şekillerini yeniden kullanmak için izin iste

İzin iste

Etiketler

Drosophila EnfeksiyonuHemolenf AnaliziSinek Mortalite zlemeAntimikrobiyal Peptid AnaliziFagositoz AnaliziDiseksiyon MikroskobuB cek Sabitleme nesiKarbondioksit Anestezisi

İlgili makaleler