Yöntem makalesi

Makrofaj hücre dışı tuzakların in vitro stimülasyonu ve görselleştirilmesi

8 Temmuz 2025

Bu makalede

Özet

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Kaynak: Zhang, Y., et al. Farklılaşmış İnsan Monosit Türetilmiş Makrofajlarda İn Vitro Stimülasyon ve Hücre Dışı Tuzak Salınımının Görselleştirilmesi. J. Vis. Uzm. (2019).

Bu video, TNF-alfa, PMA ve HOCL gibi farklı inflamatuar uyaranlar kullanılarak insan monosit türevi makrofajlarda makrofaj hücre dışı tuzaklarının (MET'ler) in vitro stimülasyonunu göstermektedir. Video ayrıca görselleştirme için MET'lerin SYTOX boya boyama yöntemini de göstermektedir.

Protokol

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. HMDM'nin polarizasyonu

  1. Steril koşullar altında, tam RPMI-1 kültür ortamına interferon γ (IFNγ; 20 ng/mL) ve lipopolisakkarit (LPS; 1 μg/mL) ekleyerek M1640 hazırlama ortamını hazırlayın. Tam RPMI-2 kültür ortamına interlökin 4 (IL-4; 20 ng/mL) ekleyerek M1640 hazırlama ortamını hazırlayın.
  2. Steril koşullar altında, bölüm 1'de tarif edildiği gibi tohumlanmış ve kültürlenmiş İnsan monositinden türetilmiş makrofajları, HMDM'yi içeren doku kültürü plakası kuyucuklarından aspire edin.
  3. Hücreleri 3x içeren kuyucukları steril PBS (önceden 37 ° C'ye ısıtılmış) ile 1 mL PBS alikotları kullanarak dikkatlice yıkayın.
  4. HMDM'yi içeren her bir oyuğa (deney için hangisi uygunsa) 1 mL M1 veya M2 hazırlama ortamı ekleyin.
  5. Hücreleri, bir hücre inkübatöründe% 5 CO2 varlığında 37 ° C'de 48 saat inkübe edin.

2. MET Salınımını indüklemek için HMDM'nin uyarılması

  1. Steril koşullar altında, makrofaj hücre dışı tuzaklar MET salınımının farklı uyarıcılarını içeren kültür ortamını (deney için hangisi uygunsa) tam RPMI-1640 ortamına hazırlayın: PMA (25 nM), insan rekombinant TNFa (25 ng / mL) veya insan rekombinant IL-8 (50 ng / mL).
  2. Hipokloröz asit, HOCl stimülasyonu ile yapılan deneyler için, hücrelere eklenmeden hemen önce HBSS'de (37 ° C'ye önceden ısıtılmış) HOCl'yi (200 μM) hazırlayın. HOCl'nin tam hücre ortamında hazırlanmadığından emin olun.
    not: HOCl'nin stok çözeltisinin konsantrasyonu, çözeltinin UV absorbansı 292 nm ve pH = 11:6'da ölçülerek ve 350 M-1 cm-1'lik bir sönme katsayısı kullanılarak ölçülür.
  3. Bölüm 2'de tarif edilen polarizasyon işleminden sonra, hücre ortamını her bir oyuktan aspire edin ve hücreleri 3x'i aşağıdakilerden birinin 1 mL'lik alikotlarıyla dikkatlice yıkayın: steril PBS (PMA, TNFa ve IL-8 için) veya HBSS (HOCl için), 37 ° C'ye önceden ısıtılmış.
  4. PMA, TNFa veya IL-8 ile yapılan deneyler için: son yıkama adımında PBS'yi çıkardıktan sonra PMA, TNFa veya IL-8 içeren tam ortamdan 1 mL ekleyin.
  5. TNFa ile yapılan deneyler için, hücreleri bir hücre inkübatöründe% 5 CO2 varlığında 37 ° C'de 6 saat inkübe edin. PMA ve IL-8 ile yapılan deneyler için, hücreleri bir hücre inkübatöründe% 5 CO2 varlığında 37 ° C'de 24 saat inkübe edin.
  6. HOCl ile yapılan deneyler için, son yıkama adımında HBSS'yi çıkardıktan sonra HBSS'ye 1 mL HOCl ekleyin. Daha sonra, hücreleri bir hücre inkübatöründe% 5 CO2 varlığında 37 ° C'de 15 dakika inkübe edin.
    1. Hücre süpernatanını dikkatlice aspire edin ve hücreleri 3x'i adım 2.3'te tarif edildiği gibi 1 mL HBSS alikotu ile yıkayın.
    2. HBSS'yi son yıkama adımından çıkardıktan sonra, 1 mL tam RPMI-1640 kültür ortamı ekleyin. Daha sonra, hücreleri bir hücre inkübatöründe% 5 CO2 varlığında 37 ° C'de 24 saat inkübe edin.

3. Canlı Hücre Kültüründe MET'in Görselleştirilmesi

  1. SYTOX yeşil boyayı HBSS'de 40 μM konsantrasyonda hazırlayın.
  2. MET salınımını indüklemek için bölüm 2'de açıklanan işlemlerin sonunda, HMDM içeren her bir oyuğa doğrudan 25 μL 40 μM boya ekleyin.
  3. Hücreleri karanlıkta 5 dakika oda sıcaklığında (RT) inkübe edin.
  4. HMDM'yi, görüntüleme için ters çevrilmiş bir floresan mikroskobun mikroskop aşamasındaki doku kültürü kuyularına yerleştirin.
  5. Mikroskop prosedürleri
    1. Geniş spektrumlu bir floresan ışık kaynağını, parlak alan ışık kaynağını ve yüksek çözünürlüklü renkli dijital kamerayla donatılmış ters çevrilmiş mikroskobu açın (Malzeme Tablosuna bakın).
    2. Doku kültürü kuyucuklarında bulunan yeşil lekeli numunelerin görüntülenmesi için yeşil floresan (uyarma = 504 nm, emisyon = 523 nm) için filtre çarkını "2 numara" konumuna çevirin.
    3. 5x objektifi kullanarak, mikroskop merceğinden bakıldığında görüntü keskin, net ve odaklanmış görünene kadar görüntüyü kaba odakla, ardından ince odak düğmeleriyle mikroskop üzerinde odaklayın.
    4. Mikroskobu kamera moduna geçirin.
    5. İlgili yazılımı başlatın.
    6. seçin Ele geçirmek yazılımdaki sekme.
    7. Görüntüyü önizlemek için Oynat düğmesine tıklayın ve görüntü yazılım önizleme penceresinde keskin, net ve odaklanmış görünene kadar mikroskop üzerindeki ince odak düğmesini ayarlayın.
    8. Yakala düğmesini tıklayın.
      not: Yakalanan görüntü, beraberindeki yazılımda otomatik olarak görüntülenecektir.
    9. Yazılım içinde, tıklayın Dosya | Gerekli görüntü dosyası türü olarak kaydedin.
    10. Mikroskopta, parlak alan görüntüleme için filtre çarkını "5 numara" konumuna çevirin ve karşılık gelen parlak alan görüntüsünü elde etmek için 3.5.2–3.5.9 adımlarını tekrarlayın.
    11. Sonraki görüntü alımı için 3.5.2–3.5.10 adımlarını gerektiği kadar tekrarlayın.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
Herhangi bir çıkar çatışması beyan edilmedi.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
120Q geniş spektrumlu floresan ışık kaynağıEXFO Fotonik Çözümler, Toronto, KanadaX-CITE serisi
Corning CellBIND Çok Kuyulu Plaka (12 kuyulu)Sigma-AldrichCLS3336Hücre kültürü için
Hipokloröz asit (HOCl)Sigma-Aldrich320331MET stimülasyonu için
İnterferon gamaTermo-BalıkçıPMC4031M1 astarlama için
İnterlökin 4Entegre BilimlerRHIL-4M2 astarlama için
İnterlökin 8Miltenil Biyotec130-093-943MET stimülasyonu için
L-GlutaminSigma-Aldrich59202CKültür medyasına eklendi
Olympus IX71 ters mikroskopOlimpos, Tokyo, Japonya
Phorbol 12- miristat 13-asetat (PMA)Sigma-AldrichP8139 SerisiMET stimülasyonu için
Fosfat tamponlu salin (PBS)Sigma-AldrichD5652Yıkama adımları için
RPMI-1640 ortamıSigma-AldrichR8758 SerisiHücre kültürü için
SYTOX yeşiliYaşam TeknolojileriS7020 SerisiMET görselleştirmesi için
TH4-200 parlak alan ışık kaynağıOlimpos, Tokyo, JaponyaX-CITE serisi
Tümör nekroz faktörü alfaFransa300-01A-50MET stimülasyonu için
Gazetesi Gazetesi Serisi Gazetesi Gazetesi Gazetesi Serisi Gazetesi

Yeniden basım ve izinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya şekillerini yeniden kullanmak için izin iste

İzin iste

Etiketler

MET VisualizationSYTOX Green StainingFluorescence MicroscopyInflammatory StimuliTNF alpha TreatmentPMA StimulationHypochlorous AcidCell Culture PreparationChromatin Decondensation

İlgili makaleler