1. Ortamın ve Çözümlerin Hazırlanması
- Kültür ortamını hazırlayın:% 10 fetal sığır serumu (FBS) ile RPMI-1640, pH 7.4.
- Tahlil kültürü ortamını hazırlayın: fenol kırmızısı içermeyen ancak %1 FBS, pH 7.4 ile RPMI-1640.
- Hücre yıkama solüsyonu hazırlayın: Dulbecco'nun fosfat tamponlu tuzlu su (DPBS) %0.02 EDTA, pH 7.4 içeren Mg ve Ca içermeyen solüsyonu.
- Hücre ayırma çözeltisi hazırlayın: 1 mM etilendiamintetraasetik asit (EDTA) ile% 0.125 tripsin.
- 100 mL% 0.25'lik bir tripsin-EDTA çözeltisi çözülür ve steril 500 mL'lik bir şişeye aktarılır.
- 100 mL hücre yıkama solüsyonu ile karıştırın ve 15 mL alikotları 15 mL steril tüplere dağıtın. Kullanana kadar -70 ila -80 °C'de saklayın.
- Bu çözeltileri 0,22 μm'lik bir membrandan süzün ve kullanmadan önce en az 30 dakika boyunca 37 °C'ye kadar ısıtın.
- 3.3 μg / mL'de apoptoz-indüksiyon stok çözeltisi TNFα çözeltisi hazırlayın.
- 20 μg TNFα'yı 500 μL filtreyle sterilize edilmiş su ile birincil kabında çözün ve tamamen çözünene kadar karıştırın.
- 15 mL'lik steril bir tüpe aktarın ve bu tüpe 5.5 mL DPBS Mg ve Ca içermeyen solüsyon ekleyin. Bir girdap karıştırıcı kullanarak hafifçe karıştırın.
- Çözeltiyi 70 μL'lik porsiyonlara ayırın. Her bir alikotu 0,5 mL mikrotüplere dağıtın ve -80 ° C'de saklayın.
- Apoptoz indüksiyon çözeltisi hazırlayın: 40 ng / mL'de TNFa çözeltisi.
- Apoptoz indüksiyon stok çözeltisinin bir kısmını çözün, 25 ° C'de 10 dakika boyunca bir su banyosunda inkübe edin.
- 15 mL'lik steril bir tüpte 4.939 mL tahlil kültürü ortamına 61 μL 3.3 μg/mL TNFα çözeltisi ekleyerek apoptoz indüksiyon stok çözeltisini 40 ng/mL'ye seyreltin.
- Bir vorteks karıştırıcı ile 10 saniye karıştırın; Bu çözelti kullanımdan önce taze olarak hazırlanmalıdır.
- Nötralizasyon testinde kullanmadan önce çözeltiyi en az 30 dakika 37 ° C'ye ısıtın.
- Substrat çözeltisini hazırlayın: kaspaz 3/7 Glo çözeltisi.
- Kaspaz tampon çözeltisini (kaspaz 3/7 Glo tamponu) kullanmadan önce 12 saat boyunca çözdürün.
- Kaspaz tampon çözeltisini ve substratı (kaspaz 3/7 Glo substratı) karıştırmadan önce 25 ± 5 °C'de 30 dakika ayrı ayrı bekletin.
- 10 mL kaspaz tampon çözeltisini substrat şişesine aktarın ve ters çevirerek karıştırın.
- Kullanana kadar 25 ± 5 °C'de, ışığa karşı koruyun.
not: Çözelti, oda sıcaklığında 6 saat boyunca stabildir.
2. Hücre Kültürü ve Sayımı
- Hücre çözülmesi ve ilk alt kültür.
- WEHI 164 hücreli bir şişeyi -80 °C'deki bir dondurucudan çıkarın ve bir buz banyosuna aktarın.
- Donmuş hücreler tamamen çözülene kadar 1 mL önceden ısıtılmış kültür ortamı ile yukarı ve aşağı pipetleyin.
- 9 mL önceden ısıtılmış kültür ortamını 15 mL steril bir tüpe dağıtın.
- Hücre süspansiyonunu 15 mL'lik steril tüpe aktarın ve ters çevirerek beş kez hafifçe karıştırın.
- Hücre süspansiyonunu 3 dakika boyunca 125 x g'da santrifüjleyin. Süpernatanı atın ve hücre peletini ayrıştırın.
- Tüpe 5 mL kültür ortamı ekleyin. Hücreler tamamen yeniden süspanse olana kadar karıştırın.
- Hücre sayımı için, 50 μL hücre süspansiyonunu 500 μL'lik bir mikrotüpe aktarın ve 50 μL% 0.4 tripan mavisi ile karıştırın. Hücreleri sayın ve 0,5 x 106 hücre/mL olarak ayarlayın. Aşağıdaki adım 2.2'ye bakın.
- 75 mL'lik bir hücre kültürü şişesine 13 mL önceden ısıtılmış kültür ortamı ekleyin.
- Hücre kültürü şişesinde 0.5 x 106 hücre / mL elde etmek için adım 2.1.6'dan yeterli hücre süspansiyon hacmini dağıtın ve gece boyunca 37 ° C ve% 5 CO2'de inkübe edin.
- Hücre sayımı.
- Adım 2.1.6'daki çözeltiyi kullanarak, 0.05 mL'yi bir hemositometreye aktarın ve tripan mavisi dışlamasını kullanarak mikroskop altında hücre yoğunluğunu belirleyin.
- Toplam hücre ve canlı hücre sayısını ölçün.
- Hücre süspansiyonlarını 0,5 x 106 hücre/mL.
olarak ayarlayın
Vkültür ortamı(mL) = 
Vkültür ortamı (mL) = (5 mL - Vhücre süspansiyonu)
Vkültür ortamı (mL) = Düzeltilmiş WEHI 164 hücre süspansiyonu hacmi
NVC = Canlı WEHI sayısı 164 hücre/mL
Vkültür ortamı (mL) = 0.5 x 106 hücre / mL / br / > elde etmek için hücre süspansiyonuna eklenen tahlil kültürü ortamı hacmi <
0,5 x 106 = Hedef hücre yoğunluğu
- Hücre dekolmanı ve ikinci ve üçüncü alt kültürler.
not: Çözeltileri şişelerden çıkarmak için bir vakum sistemi kullanılabilir. Tek kullanımlık veya cam steril pipetler kullanılabilir. Pipetin üst kısmında pamuk tıkanıklığı varsa, kullanmadan önce çıkarılmalıdır.
- 1 mL steril pipet ve vakum kullanarak kültür ortamını hücre kültürü T-şişesinden çıkarın.
- 5 mL hücre yıkama solüsyonunu kültür T-şişesine dağıtın, hafifçe karıştırın ve solüsyonu atın. Bu adımı iki kez tekrarlayın.
not: Kültür ortamının tamamen çıkarılması, verimli hücre ayrılması için kritik öneme sahiptir.
- T-şişesine 15 mL hücre ayırma çözeltisi ekleyin ve 37 ° C ve% 5 CO2'de bir inkübatörde 3 dakika bekletin.
- Mikroskop altında şişenin iç duvarında bağlı hücrelerin olmadığını doğrulayın. 20 mL'lik steril bir pipet kullanarak hücreleri kültür T-şişesinden çıkarın ve bunları 50 mL'lik steril bir tüpe dağıtın.
- Hücre süspansiyonunu 3 dakika boyunca 125 x g'da santrifüjleyin. Süpernatanı atın ve peleti başka bir 5 mL kültür ortamı ile yeniden süspanse edin.
- Hücreleri sayın ve Denklem 1'e göre istenen hücre konsantrasyonuna ulaşmak için yeterli kültür ortamı ekleyin.
- Bu süspansiyonu 72cm2'lik bir T-şişeye ekleyin ve gece boyunca 37 °C ve% 5 CO2'de inkübe edin.
- Nötralizasyon tahlilinde kullanmadan önce hücreleri en az iki kez alt kültüre alın. Sonraki iki gün boyunca 2.3.1-2.3.8 adımlarını tekrarlayın.
- Tahlil hücresi süspansiyonu.
- En az üç geçişi olan bir WEHI 164 alt kültürü seçin. Adım 2.1'e bakın.
- Hücreleri bu protokolün 2.2 ve 2.3 adımlarına göre ayırın ve sayın.
- Hücre süspansiyonunu Denklem 1'e göre 0.5 x 106 hücre / mL'ye göre seyreltin.
- Nötralizasyon testi için bu hücresel süspansiyonu kullanın. Kullanmadan önce tüm hücre süspansiyonlarını bir vorteks karıştırıcı ile karıştırın.
3. Antikor Hazırlama ve Dilüsyonlar
- mAb'lerin nicelikçiliği.
- Kütle sönme katsayılarını (1,39) kullanarak 280 nm'de UV absorpsiyonu yoluyla referans maddenin, kontrol numunesinin ve analitik numunenin konsantrasyonunu belirleyin.
not: Orijinal konsantrasyonlar ilaç ürün etiketlerinden alınabilir. Bununla birlikte, bu UV absorpsiyonu ile doğrulanmalıdır.
- mAb seyreltmeleri.
- Tüm numuneleri bağımsız olarak üç kopya halinde, DPBS Mg ve Ca içermeyen çözelti ile 2 mL mikrotüplerde 2 mg / mL'ye kadar seyreltin. Bu konsantrasyonu, boşluk olarak DPBS Mg ve Ca içermeyen çözelti kullanarak üç kopya halinde UV absorpsiyonu ile onaylayın.
- Stok protein çözeltilerini bir girdap karıştırıcı kullanarak 5 saniye karıştırın.
- Her 2 mg / mL mAb çözeltisinin 100 μL'sini 0.9 mL tahlil kültürü ortamı ile seyreltin.
- Bir vorteks karıştırıcı ile 5 saniye karıştırın.
not: Bu çözeltiler 200 μg/mL'lik bir konsantrasyona sahiptir. Her üçlü kopya için seyreltme yapılmalıdır.
- Her 200 μg / mL mAb çözeltisinin 10 μL'sini 0.99 mL tahlil kültürü ortamı ile seyreltin. Bir vorteks karıştırıcı kullanarak 5 saniye karıştırın. Bu çözeltiler 2 μg/mL'lik bir konsantrasyona sahiptir. Nötralizasyon tahlilinde kullanmadan önce her üçlü için seri seyreltmeler gerçekleştirin.
- Üç bağımsız mikroplakada anti-TNFα mAb seyreltmeleri yapın. Her bağımsız üçlüden bir kopya yapın ve bunları Tablo 1'de gösterildiği gibi bir mikroplaka içinde dağıtın. Referans Madde
- Tablo 2.
'da gösterildiği gibi her referans, numune veya kontrolün mAb seyreltmelerini gerçekleştirin
not: Bu tabloda tarif edilen anti-TNFα mAb konsantrasyonları, nötralizasyon testindeki nihai konsantrasyonlar değildir.
- Plakaları kullanana kadar 25 ± 5 °C'de tutun.
4. WEHI 164 Hücreleri ile Nötralizasyon Testi
- Bu protokolün herhangi bir adımında dağıtmadan önce tüm hücre süspansiyonlarını (0.5 x 106 hücre / mL) girdaplayarak karıştırın.
not: Bu bölümde, kullanmadan önce her bir çözeltiyi 30 dakika boyunca 37 °C'ye ısıtın.
- 50 μL hücre süspansiyonunu, mikroplakaların 60 kuyucuğunun her birine aktarın, sütun 2'den 11'e ve B hattından G'ye hareket edin.
- 50 μL mAb referansı, numune ve kontrol seyreltmelerini mikroplakalara aktarın. Şekil 1'de gösterilen modeli takip edin.
- Her oyuğa 50 μL apoptoz indüksiyon çözeltisi ekleyin.
- Üç oyukta dağıtılan 50 μL WEHI 164 hücresinin hücresel kontrollerini kullanın. Her bir oyuğu bir tahlil kültürü ortamı ile 150 μL'lik bir son hacme getirin.
- 50 μL WEHI 164 hücresi artı 50 μL apoptoz indüksiyon çözeltisi karışımının sitotoksisite kontrolünü kullanın. Her bir oyuğu bir tahlil kültürü ortamı ile 150 μL'lik bir son hacme getirin.
- TNFα kontrolü için 50 μL apoptoz indüksiyon solüsyonu kullanın ve tahlil kültürü ortamı ile 150 μL'ye getirin.
- Boşluk için, tek başına 150 μL tahlil kültürü ortamı kullanın.
- Plaka buharlaşma etkilerini önlemek için kalan kuyucukları 150 μL kültür ortamı ile doldurun.
- 4.1.1-4.1.9 adımlarını diğer iki mikroplakada iki kez tekrarlayın.
not: Mikroplakadaki mAb nihai konsantrasyonları şunlardır: 0.666, 0.333, 0.167, 0.111, 0.083, 0.056, 0.042, 0.028, 0.014 ve 0.004 μg / mL.
- Numuneleri Şekil 1'de gösterildiği gibi mikroplakalara yükleyin
- Üç plakayı 37 ° C ve% 5 CO2'de 16 ± 2 saat inkübe edin.
- Kaspaz 3/7 Glo reaktifini kullanmadan önce 25 ± 5 °C'de 30 dakika bekletin.
- Numuneler ve kontroller dahil olmak üzere tüm kuyucuklara bu reaktiften 100 μL ekleyin.
- Kuyucuklara dağıttıktan hemen sonra plakaları bir mikroplaka girdap karıştırıcısı kullanarak 25 ± 5 ° C'de 3 dakika çalkalayın.
- Plakaları ışıktan koruyarak 25 ± 5 ° C'de 2,5 ± 0,5 saat inkübe edin.
- Mikroplakaları luminometreye yerleştirin ve sonraki bölümü tamamlayın.
5. Sonuçların Analizi
- Lüminesans algılama için yazılımı kullanarak, lüminesans modunu ve uç nokta işlevini seçin.
- Sütun 1 ve 12 hariç olmak üzere 96 oyuklu bir açık tabanlı plaka ve 80 iç kuyusu seçin.
- Okumadan önce mikroplakayı karıştırmak için 1.250 ms ve 10 s'lik bir entegrasyon süresi seçin.
- Referans maddenin, analitik maddenin ve kontrol numunesinin yerleştirileceği kuyucukları seçin ve bunları karşılık gelen konsantrasyonları ile tanımlayın.
- Mikroplakalara yerleştirilen numuneleri luminometre ile okuyunuz.
- Sonuçların analizi için dördüncü bir parametre denklemi kullanın. Şekil 2.
'da gösterildiği gibi bir doz-yanıt eğrisinin grafiğini çizin
NOT: Dördüncü parametre denkleminde C, etkin konsantrasyon 50'dir (EC50). Bu değer, efektör fonksiyonu aracılığıyla referans maddeyi, analitik numuneyi ve kontrol numunesini karşılaştırmak için kullanılacaktır.
- Bağıl potansları hesaplamak için referans maddeyi 0'e sabitleyin, numunenin potanslarını hesaplayın ve buna göre kontrol edin.
not: Bu değerler Şekil 3'te gösterilmiştir.
Tablo 1: Mikroplaka örnek dizileri. Tam bir nötralizasyon testi, B2 ila G11 koordinatları içindeki üç mikroplakada çalıştırılmalıdır. Referans, analitik ve kontrol örneklerinin rastgele dağıtılması, araştırmacıların tahlildeki herhangi bir yanlılığı doğrulamasına olanak tanır.
| Plaka 1 | Plaka 2 | Plaka 3 |
| Wells | örnek | Wells | örnek | Wells | örnek |
| B2: B11 | Referans Madde | B2: B11 | Kontrol Örneği | B2: B11 | Analitik Örnek |
| C2:C11 | C2:C11 | C2:C11 |
| D2:D11 | Analitik Örnek | D2:D11 | Referans Madde | D2:D11 | Kontrol Örneği |
| E2:E11 | E2:E11 | E2:E11 |
| F2:F11 | Kontrol Örneği | F2:F11 | Analitik Örnek | F2:F11 | Referans Madde |
| G2:G11 | G2:G11 | G2:G11 |
Tablo 2: Anti-TNFα mAb dilüsyonları. Anti-TNFα mAb'lerin seri dilüsyonları bu tabloda gösterilmiştir. Bu tabloda açıklanan nihai konsantrasyonlar, anti-TNFα mAbs'nin 3 faktör (mAb seyreltme + kültür ortamı + hücre süspansiyonu) ile seyreltildiği tahlildeki konsantrasyonlar değildir. Kalın yazılan satırlar, 3, 5, 7, 9 ve 10. satırlardan gelen seyreltmeleri temsil eder; Kalın olmayan çizgiler, 3, 4 ve 6. satırlardaki seyreltmeyi temsil eder. Bu seri seyreltmeler, nötralizasyon testi yapılmadan hemen önce yapılır. Seyreltmeleri dağıtmadan önce üç kez yukarı ve aşağı pipetleyerek karıştırmaya özen gösterilmelidir.
Yılı
| Plaka Sütunu | Tahlil kültürü ortamının hacmi (μL) | Referans Madde, Analitik Numune veya Kontrol Numunesi Hacmi (uL) | Test Plakasındaki Konsantrasyon (ng / mL) |
| 2 | 0 | 230 | 2000 |
| 3 | 150 | 2. satırdan 150 | 1000 |
| 4 | 75 | 3. satırdan 75 | 500 |
| 5 | 100 | 3. satırdan 50 | 333 |
| 6 | 75 | 4. satırdan 75 | 250 |
| 7 | 75 | 75. satırdan 5 | 166 |
| 8 | 75 | 75 satırdan 6 | 125 |
| 9 | 75 | 75. satırdan 7 | 83 |
| 10 | 75 | 9. satırdan 75 | 41 |
| 11 | 150 | 75 numaralı satırdan 10 | 13 |