Yöntem makalesi

Mantar Hifleri Üzerinde Biyofilm Oluşturan Bakterileri Görselleştirmek için Numune Hazırlama Yöntemi

8 Temmuz 2025

Bu makalede

Özet

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Kaynak: Guennoc, Cora Miquel, et al, Konfokal ve Elektron Mikroskobu Kullanarak Filamentli Mantar Kolonilerinde Bakteriyel Biyofilmlerin Kalitatif Çok Ölçekli Analizi İçin Yeni Bir Yöntem. J. Vis. Uzm. (2017).

Bu videoda, mikroskopi kullanarak mantar hifleri üzerinde bakteriyel biyofilmleri büyütmek ve kalitatif olarak analiz etmek için bir yöntem açıklanmaktadır. Bakteriyel biyofilmler sıklıkla mantar yüzeylerinde oluşur ve metabolik işbirliği, rekabet veya avlanma gibi çok sayıda bakteri-mantar etkileşim sürecini içerir.

Protokol

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Mantar Kolonisi Üzerinde İn Vitro Bakteri Biyofilminin Hazırlanması

  1. Bakteri kültürünü 3 dakika boyunca 5.000 x g'da santrifüjleyin ve peleti 25 ml steril 0.1 M potasyum fosfat tamponunda (25 g / L KH2PO4 ve 2.78 g / L K2HPO4, pH 5.8) süspanse edin. Bu adımı bir kez tekrarlayın ve son bakteri konsantrasyonunu aynı tamponla 109 hücre / ml'ye ayarlayın.
  2. 6 oyuklu bir mikroplakayı 5 ml bakteri süspansiyonu (veya negatif kontrol için steril 0.1 M potasyum fosfat tamponu) ile doldurun.
  3. Her zar üzerinde tek bir mantar kolonisi bulunan selofan kareleri elde etmek için mantar kültürünün selofan zarını steril bir tıraş bıçağıyla kesin. Hif içeren selofan karelerini forseps kullanarak katı ortamdan dikkatlice çıkarın ve hif içeren selofan karesini bakteri süspansiyonu içeren mikroplakanın bir kuyusuna aktarın.
  4. Mantar kolonileri hala selofana bağlıyken mikroplakayı hafifçe sallayın; Ardından, mantar kolonilerini plakada bırakarak selofan tabakalarını çıkarın.
  5. Mikroplakayı, incelenen mikroorganizmalara uyarlanmış bir sıcaklıkta hafif çalkalama (~ 60 rpm) ile inkübe edin.
    not: Kuluçka süresi, biyofilmin kurulma hızına ve analiz edilecek aşamaya bağlıdır. P. fluorescens BBc6/L. bicolor için, erken evre biyofilmler elde etmek için 20 ° C'de 30 dakika ve olgun biyofilmler elde etmek için 16 saate kadar inkübe edin.

2. Lazer Taramalı Konfokal Mikroskopi Biyofilm Oluşumunun Analizi

  1. Numune hazırlama
    1. Planktonik bakterileri ve hiflere elektrostatik olarak bağlı bakterileri uzaklaştırmak için, mantarı 5 ml güçlü bir tuz çözeltisi (NaCl, 17 g / L) ile doldurulmuş 6 oyuklu yeni bir mikroplakaya aktararak durulayın; 1 dakika boyunca hafifçe çalkalayın.
    2. Mantarı 5 ml steril 0.1 M potasyum fosfat tamponu içeren 6 oyuklu yeni bir mikroplakaya aktarın, 2 dakika hafifçe çalkalayın ve mantarı taze potasyum fosfat tamponuna aktarın.
    3. Mantar kolonisinin görüntülenecek kısmını bir neşter ile kesin, böylece elde edilen bölüm mantar kolonisinin yaklaşık yarısını içerecek şekilde potasyum fosfat tamponunda tutun.
    4. Numuneyi lekelemek için, uygun bir floresan boya (analizin amacına bağlı olarak) içeren steril suyla doldurulmuş bir Petri kabına aktarın ve karanlıkta inkübe edin.
      1. Mantar ağını görselleştirmek için, örneğin, Kongo Kırmızısı (% 0.1 nihai konsantrasyon, 5 dakikalık inkübasyon), Alexa Fluor 633 (10 μg / ml nihai konsantrasyon, 10 dakikalık inkübasyon) veya FUN1 (10 μM nihai konsantrasyon, 10 dakikalık inkübasyon) ile konjuge buğday tohumu aglütinini (WGA) kullanın.
      2. Floresan etiketli olmayan bir bakteri kullanılıyorsa, bakteri hücrelerini, ticari olarak temin edilebilen çok sayıda hücre bazlı DNA boyası arasından DNA'ya özgü bir floresan probu ile boyayın. Örneğin, DAPI kullanın (0.25 μg / ml nihai konsantrasyon, 10 dakikalık inkübasyon).
      3. Matris proteinlerini görselleştirmek için bir protein boyası kullanın.
    5. Boyamadan sonra, numuneyi 10 ml steril 0.1 M potasyum fosfat içeren bir Petri kabı kapağına aktararak durulayın ve 1 dakika hafifçe çalkalayın.
    6. Petri kabı kapağına bir sürgüyü yarıya batırın ve kesilen bölümü nazikçe sürgünün üzerinde yüzecek şekilde getirin. Ardından, slaytı tampon çözeltisinden yavaşça çıkarın ve numunenin slayta nazikçe yerleşmesine izin verin.
      not: Bu adımda, biyofilm rahatsızlığını önlemek için nazikçe ilerlemek çok önemlidir.
    7. Son olarak, numuneye 10 μl solma önleyici montaj ortamı ekleyin ve üzerini bir cam lamel ile kapatın.
      not: Slayt hazırlandıktan sonra, biyofilm yapısında değişiklik olmasını önlemek için mikroskobik analiz mümkün olan en kısa sürede (en fazla 30 dakika içinde) yapılmalıdır.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
Herhangi bir çıkar çatışması beyan edilmedi.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
6 kuyulu Falcon Doku Kültürü Plakaları Balıkçı Bilimsel08-772-332.2 ve 3.1'de kullanılır
Kongo KırmızısıBalıkçı BilimselC580-253.1.4.1'de kullanılır
FUN 1 Hücre LekesiThermo Fisher BilimselF70303.1.4.1'de kullanılır
Buğday tohumu aglütinini, Alexa Fluor 633 eşlenikThermo Fisher BilimselW214043.1.4.1'de kullanılır
DAPI çözümüThermo Fisher Bilimsel622483.1.4.2'de kullanılır
Propidyum iyodürThermo Fisher BilimselP3566 Serisi3.1.4.3'te kullanılır
FilmTracer SYPRO Yakut Biyofilm Matrisi protein BoyasıThermo Fisher BilimselF103183.1.4.4'te kullanılır
Fluoromount-G Sürgülü Montaj OrtamıBalıkçı BilimselOB100-013.1.7'de kullanılır
LSM780 Axio Gözlemci Z1Zeiss3.2.1'de kullanılır
ZEN 2.1 lite siyah yazılımıZeiss3.2.1'de kullanılır
Yüksek Vakumlu Kaplayıcı Leica EM ACE600Leica Belediyesi4 yılında kullanılır
İkizler Burcu (GeminiSEM-FEG)Zeiss4 yılında kullanılır
Serisi Serisi Serisi Serisi Serisi

Yeniden basım ve izinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya şekillerini yeniden kullanmak için izin iste

İzin iste

Etiketler

Biyofilm Olu umuBakteriyel AdhezyonKonfokal MikroskopiFloresan BoyamaBu day Germi Agl tininiPotasyum Fosfat TamponuSelofan MembranMikroskobik Analiz

İlgili makaleler