Numune toplama ile ilgili tüm prosedürler enstitünün IRB yönergelerine uygun olarak gerçekleştirilmiştir.
1. Glikoçip Üretimi
- Mikrodizi hazırlama
- Glikanları (50 mM) ve polisakkaritleri (10 μg/mL) 300 mM fosfat tamponlu salin (PBS, pH 8.5) içinde 6 kopyada N-hidroksisüksinamid türevli cam slaytlar üzerine temassız robotik arrayer (damla hacmi ~ 900 pL) kullanarak yazdırın. Her slayt, 6 kez tekrarlanan 4 farklı alt dizi bloğu (Şekil 1A, renkli) içerir. Her bir alt dizi, kontroller (8 satır × 14 sütun) dahil olmak üzere 112 farklı glikan noktasından oluşur (Şekil 1B).
not: Glikan ile ilgili bilgiler Tablo 1'de verilmiştir. Mikroçipleri basmak için kullanılan glikan kütüphanesi, IBCh ekibinin uzun vadeli sentetik bir çabasının sonucudur; Sentez örnekleri ilgili yayınlarda açıklanmıştır. Glikan kütüphanesi, kan grubu antijenleri ve en sık görülen terminal oligosakkaritlerin yanı sıra memeli N ve O'ya bağlı glikoproteinlerin ve glikolipidlerin, tümörle ilişkili karbonhidrat antijenlerinin ve patojenik bakterilerden elde edilen polisakkaritlerin çekirdek motiflerini içeriyordu.
- Slaytları bir nem kutusunda (bağıl nem ~% 70) oda sıcaklığında (25 ° C) 1 saat inkübe edin.
- Mikrodizilerin bloke edilmesi: slaytları oda sıcaklığında bloke edici tampon ile 1,5 saat inkübe edin (100 mM borik asit, 25 mM etanolamin, ultra saf suda %0,2 (h/h) Tween-20).
- Glikobiti ultra saf suyla yıkayın ve hava ile kurulayın.
- Glikoçip kalite kontrolü
- 1 mg / mL kompleks immünoglobulin preparatı çözeltisi (immünoglobulin içeren CIP: IgG, IgM ve IgA), ikincil bir antikor olarak 10 μg / mL biyotinile keçi anti-insan immünoglobulin çözeltisi (IgM + IgG + IgA), ardından karşılık gelen floresan streptavidin konjugatının 1 μg / mL çözeltisi (aşağıda açıklanan protokol aracılığıyla, bkz. adım 2).
- Glikoçipleri tarayın ve analiz edin (bkz. adım 3, glikan dizisinin analizi).
- Çip içi ve çipler arası korelasyonu 0,9'dan yüksek olan mikrodizi grupları kullanın.
2. Glikan Dizi Tekniği
- Aşağıdaki sulu çözeltileri (ultra saf suda) hazırlayın ve oda sıcaklığında (25 °C) saklayın:
- Tampon-1: Fosfat tamponlu salin (PBS) içinde %1 (a/h) sığır serum albümini (BSA), %1 (h/h) Tween-20 ve %0.01 (a/h) sodyum azid (NaN3).
- Tampon-2: PBS'de %1 (a/h) BSA, %0,1 (h/h) Ara-20 ve %0,01 (a/h) NaN3.
- Tampon-3: PBS'de %0.1 (h/h) Ara-20.
- Tampon-4: PBS'de %0.001 (h/h) Ara-20.
- Glikoçip ve numune hazırlama
- Slaytlarla birlikte saklama kutusunu oda sıcaklığına (25 °C) ulaşana kadar masanın üzerine koyun.
not: Pudrasız lateks eldiven kullanın. Glikoçip, barkodun bulunduğu cam sürgünün alt kısmı tarafından manipüle edilmelidir. Barkod, glikanların basıldığı yüzeyle temasını önleyerek sağ tarafı tanımlamanıza yardımcı olacaktır.
- Kutuyu açın, glikoçipi alın ve hazne içindeki nemi sabit tutmak için ıslak filtre kağıdı ile şartlandırılmış inkübasyon odasına (25 °C) yerleştirin.
- Bu arada, fare serumunu 1.5 mL'lik tüplerde Buffer-1 (1:20) ile seyreltin. Serum çözeltisini (5 s) bir vorteks karıştırıcı ile homojenize edin.
not: Tek bir glikofit yüzeyini tamamen kaplamak için gereken hacim yaklaşık 1 mL'dir.
- Homojenizasyondan sonra, immünoglobulin agregasyonunu önlemek için seyreltilmiş serumu 37 ° C'de 10 dakika boyunca bir su banyosunda inkübe edin. Tüpleri 10.000 x g ve 25 ° C'de 3 dakika santrifüjleyin, süpernatanı toplayın ve çökelen malzemeleri atın.
- Glikoçipi dikkatlice inkübasyon odasına yerleştirin. Glikoçipin yüzeyindeki kalıntı materyali ortadan kaldırmak için 1 mL Tampon-3 ile 25 ° C'de 15 dakika inkübe edin.
- Glikoçipi dikey konumda tutun ve plastik bir Pasteur pipeti kullanarak birkaç damla Buffer-3 ile tekrar yıkayın. Filtre kağıdı kullanarak tamponu glikoçip yüzeyinden dikkatlice çıkarın.
3. Reaksiyon: antikorların bağlanması
- Glikoçipi inkübasyon odasına yerleştirin. Seyreltilmiş serum örneğini bir mikropipet kullanarak glikokip yüzeyine yayın. 37 ° C'de 1,5 saat orbital çalkalama (30 rpm) ile inkübe edin. Glikofit yüzeyinin tüm kuru alanının, pipetin ucunu kullanarak seyreltilmiş serum numunesi ile kaplandığından emin olun.
- Fazla numuneyi çıkarın ve glikobiti 5 dakika boyunca 25 ° C'de Tampon-3'e daldırın. Ardından, glikoçipi Buffer-4 (5 dakika) içeren bir kaba alın ve son olarak glikozi, ultra saf suyla yıkayın (5 dakika). Sıvıyı çıkarmak için glikoçipi 175 x g ve 25 °C'de 1 dakika santrifüjleyin.
4. Tespit: ikincil antikor
- Glikoçipi inkübasyon odasına yerleştirin. Glikoçip yüzeyine Tampon-2'de biyotin ile konjuge edilmiş bir keçi anti-fare (IgG + IgM) çözeltisi (5 μg/mL) yayın. 37 ° C'de 1 saat boyunca orbital çalkalama (30 rpm) ile inkübe edin.
- Bağlanmamış fraksiyonu çıkarın ve yıkama adımlarını tekrarlayın.
- Santrifüjlemeden sonra, glikobiti karanlıkta 25 °C'de 45 dakika (30 rpm) 2 μg/mL karşılık gelen florokrom etiketli streptavidin çözeltisi (Tampon-2'de) ile inkübe edin.
- Karanlıkta, bağlanmamış fraksiyonu çıkarın ve yıkama adımlarını tekrarlayın.
- Glikokiti hava ile kurutun.
not: Glikoçip mümkün olan en kısa sürede taranmalıdır. Ancak boyamadan hemen sonra tarama yapmak mümkün değilse, glikoçipler karanlıkta serin ve kuru bir yerde saklanabilir.
3. Glikan Dizisinin Analizi
- Diziyi tarayın
- Glikoçipi karanlıkta oda sıcaklığına ulaşana kadar masanın üzerinde bırakın. Aynı zamanda, slayt tarayıcıyı ve lazeri açın (633 nm uyarma dalga boyu).
- Mikrodiziyi tutarak, glikoçipi arkaya değene kadar yuvaya kaydırın.
- Glikoçipi tarayın ("kolay taramayı çalıştır") ve taramayı bir " olarak kaydedin. TIFF" dosyası.
Tablo 1: Glikanların listesi, bunların BALB/c farelerinin (n = 20) doğal dolaşımdaki antikorlarına (IgM + IgG) bağlanmaları, bağıl floresan birimlerinde (RFU) medyan ± MAD olarak ifade edilir ve kesilmeyi aşan hayvan sayısı (≥4000 RFU). Bu tablo Bello-Gil, D. et al. Bu Tabloyu indirmek için lütfen buraya tıklayın.