Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliğiniz gereklidir. Giriş yapın veya ücretsiz denemenizi bugün başlatın.

Yöntem makalesi

Bitki dokusunda Arabinogalaktan proteinlerinin ve pektinlerin immünolokalizasyonu

978 görüntüleme

8 Temmuz 2025

Bu makalede

Özet

Kaynak: Costa, M., et al. Bitki Dokularının Hücre Duvarındaki Arabinogalaktan Proteinlerinin ve Pektinlerin Floresan İmmünolokalizasyonu. J. Vis. Uzm. (2021).

Bu video, bitki dokularındaki arabinogalaktan proteinlerini (AGP'ler) ve pektinleri lokalize etmek için bir immün boyama tekniğini göstermektedir. Sabit ve reçineye gömülü bitki doku kesitleri, hücre duvarındaki dokuya özgü kolokalizasyonlarını ortaya çıkarmak için AGP ve pektin spesifik birincil ve floresan ikincil antikorlar ve selüloz bağlayıcı bir floresan boya ile boyanır.

Protokol

1. İmmünolokalizasyon

NOT: Floresan immünolokalizasyon prosedürü, iki antikorun ardışık kullanımına dayanır. Primer antikor, spesifik bir hedef antijene karşı yükseltilir. İkincil antikor, spesifik olarak birincil antikora karşı yükseltilir ve floresan teknikler için bir florofora konjuge edilir (bu spesifik protokolde FITC [floresein izotiyosiyanat]). Birincil antikor, numunedeki hedef antijeni tespit etmek için kullanılacak ve ikincil antikor, birincil antikorun fazlalığını yıkadıktan sonra birincil antikorun numuneye bağlandığı yeri işaretlemek için kullanılacaktır. Kontroller bu testin önemli bir parçasıdır ve gözlemlerin doğruluğunu sağlamak için her zaman yapılmalıdır. Slayttaki bir kuyucuk, birincil antikor tedavisinin atlanacağı negatif kontrol olarak kullanılmak üzere ayrılmalı ve bu nedenle deneyin sonunda herhangi bir sinyal gözlenmemelidir. Pozitif bir kontrol, etiketlemesi zaten bilinen ve kesin olan bir antikorla iyi bir şekilde muamele edilerek deneye dahil edilmelidir. Pozitif kontrol, ikincil antikor etiketleme etkinliğini ve reaksiyon koşullarını doğrulamak için kullanılırken, negatif kontrol ikincil antikor özgüllüğünü test eder.

  1. Bir pipet ucu kutusunun altına biraz nemli kağıt havlu koyarak ve kalay folyo ile sararak bir kuluçka odası hazırlayın (Şekil 1B-1E). Slaytları inkübasyon odasına yerleştirin.
  2. 8 mm'lik blokaj çözeltisi kuyucuğu başına 50 μL'lik bir damla pipetleyin (1 M fosfat tamponlu salin [PBS] içinde% 5 yağsız kuru süt (a/h)) ve 10 dakika inkübe edin. Blokaj solüsyonunu çıkarın ve tüm kuyucukları PBS ile iki kez 10 dakika boyunca yıkayın.
  3. Primer antikor solüsyonlarını hazırlayın (bakınız Tablo 1), bloke edici solüsyonda 1: 5 (v / v) antikor; 8 mm'lik kuyu başına yaklaşık 40 μL'lik bir tahminde bulunun.
    not: Antikorun konsantrasyonu, üreticinin protokolüne göre ayarlanmalıdır.
  4. 5 dakika boyunca çift damıtılmış su (ddH2O) ile son bir yıkama yapın, kuyuların tamamen kurumasına asla izin vermeyin.
  5. Birincil antikor çözeltisini reaksiyon kuyucuklarına pipetleyin. Kontrol kuyularına pipet engelleme solüsyonu.
  6. İnkübasyon odasını kapatın ve oda sıcaklığında 2 saat bekletin, ardından gece boyunca 4 °C'de bekletin. İkincil antikor solüsyonunu, kuyucuk başına yaklaşık 40 μL bloke edici solüsyonda (h/h) %1 olacak şekilde hazırlayın. Kalay folyo ile kapalı tutun.
  7. Tüm kuyucukları PBS ile 10 dakika boyunca iki kez yıkayın, ardından ddH2O ile 10 dakika daha yıkayın. Kuyucuklarda blokaj çözeltisinin veya tortuların izinin görünmediğinden emin olun.
  8. İkincil antikor solüsyonunu tüm kuyucuklara pipetleyin. Şu andan itibaren slaytları ışıktan koruyun.
  9. Karanlıkta oda sıcaklığında 3-4 saat inkübe edin.
  10. Tüm kuyucukları PBS ile 10 dakika boyunca iki kez yıkayın, ardından ddH2O ile 10 dakika daha yıkayın.
  11. Her oyuğa bir damla kalkoflor (1: 10.000 (a/h) floresan daha parlak 28 PBS) uygulayın. Yıkamadan, her bir oyuğa bir damla montaj ortamı (Malzeme Tablosuna bakınız) uygulayın ve bir lamel yerleştirin (Şekil 2H).
  12. 10x/0.45, 20x/0.75, 40x/0.95 ve 100x/1.40 lens ile donatılmış bir floresan mikroskobu ile gözlemleyin, sırasıyla hücre duvarını ve immünolokalizasyonu tespit etmek için UV (kalkoflor lekesi için) ve FITC filtreleri kullanın (Şekil 2I). Aşağıdaki dalga boylarını kullanın: UV için uyarma/emisyon (nm) 358/461 ve FITC için 485/530.
  13. Sonuçların daha iyi görselleştirilmesi için, her iki görüntüyü de ImageJ veya benzeri bir şeyle örtüştürün.

Tablo 1: Yararlı monoklonal antikorların listesi. Yukarıdaki tablo, hedefleri ve nereden satın alınabilecekleri hakkında bilgilerle birlikte mevcut antikorların bir örneğini temsil etmektedir.

Serisi Serisi Serisi Serisi Serisi Serisi Serisi Serisi Serisi Serisi Serisi Serisi Serisi
adilgiŞu adresten ulaşılabilir:
LM2Arabinogalaktan proteiniBitki probları (Leeds, İngiltere)
LM5Pektinler
LM6Arabinan
LM7Homogalakturonan
LM8Ksilogalakturonan
LM13(1-5)-a-L-ARABINAN
LM14Arabinogalaktan proteini
LM16İşlenmiş Arabinan - RG-I
LM18Homogalakturonan
LM19Homogalakturonan
LM20Homogalakturonan
LM26DALLI-GALAKTAN
LM30Arabinogalaktan proteini
JIM5Düşük metil-esterlenmiş homogalakturonanCCRC (Gürcistan, ABD)
JIM7Yüksek derecede metil-esterlenmiş homogalakturonan
JIM4Arabinogalaktan proteini
JIM8Arabinogalaktan proteini
JIM13Arabinogalaktan proteini
JIM15Arabinogalaktan proteini
JIM16Arabinogalaktan proteini
JIM20Genişletme
MAC207 Tezli Yüksek LisansArabinogalaktan proteini

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

figure-results-1
Şekil 1. (A) Ultramikrotom ile kesit almak üzere numuneyi (Sarı blok) hazırlamak için blok kırpma sırasının şematik gösterimi. İlk olarak, jelatin kapsül çıkarılır (1). Daha sonra önce kapsülün kenarlarına numuneye (2) teğet olarak 40° ila 45° açıyla kesilirler, birincinin (3) 90°'sinde ikinci bir kesim yapılır, ardından aynı kuralı (5) izleyerek üçüncü (4) ve dördüncü. Kırpmanın bu ilk aşamasından, z...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

Herhangi bir çıkar çatışması beyan edilmedi.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
8 kuyu Cam reaksiyon slaytlarıMarinfeldMARI1216750Diğer markalar kullanılabilir
KEÇİDE Anti-Sıçan IgG (wole molekülü)-FITC antikoru üretilirSigma-AldrichF6258
Kapak kaymaları, 24 mm x 50 mmMarinfeldMARI0100222Kapak fişi tüm kuyuları kapsamalıdır. Diğer markalar kullanılabilir
ddH2ONaNa
Etanol mutlakNaNa
Floresan parlatıcı 28Sigma-AldrichF-6259 Zırhlı Uçak
Yağsız kuru sütNestlé BelediyesiNaHerhangi bir yağsız kuru süt yeterlidir
fırınNaNaJenerik laboratuvar fırını
Sıçan tarafından üretilen Monoklonal Anti-KorBitki problarıNaHücre duvarı bileşenlerini tanıyan çeşitli antikorlar hem Kompleks Karbonhidrat araştırma merkezinde (CCRC, Georgia Üniversitesi ABD) hem de Bitki Problarında (Paul Knox Hücre Duvarı Laboratuvarı, Leeds Üniversitesi İngiltere) mevcuttur. Yaygın olarak kullanılan bazı MABS'lerin kısa bir listesi ve nereden satın alınabilecekleri Ek Tablo 1'de sunulmuştur
UV ve FITC floresan filtreli dik epifloresan mikroskobuLeica MycrosistemsDMLb (Türkçe)
Vakum odasıNaNa
vakum pompasıNaNa
Vectashield (Kalkanvecta LaboratuvarlarıT-1000Diğer solma önleyici kullanılabilir. Lütfen FITC ve Floresan parlatıcı 28 ile uyumluluğu kontrol edin. (Not: ticari olmayan bir alternatif için, (bakınız Jonhson ve ark. 198218) 25 mg / mL 1,4-Diazobisiklo-(2,2,2) oktan (DABCO) içinde 9: 1 (h / h) gliserol içinde 1xPBS'ye karıştırılarak bir antifade ortamı yapılabilir. Seyreltilmiş HCl ile pH'ı 8.6'ya ayarlayın.)
Belediyesi Gazetesi Serisi Belediyesi Gazetesi Bileti ) Uçağı

Etiketler

Pektin Lokalizasyonummunboyama Tekni iFloresan AntikorlarH cre eperi BoyamaBitki Dokusu KesitleriCalcofluor WhiteFloresan MikroskobuImageJ AnaliziDokuya zg Kolokalizasyon