Method Article

Fare Omurilik Dilimlerinde Nöronal Ağların Mikroelektrot Dizisi Tabanlı Değerlendirmesi

July 8th, 2025

In This Article

Abstract

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Kaynak: Iredale, J. A., et al. Mikroelektrot Dizileri Kullanarak Spinal Nosiseptif Devrelerde Ağ Aktivitesini Kaydetme. J. Vis. Uzm. (2022).

Bu video, fare omurilik bölümlerinde nöronal ağ aktivitesini incelemek için mikroelektrot dizisi tabanlı bir testi göstermektedir. İlk olarak, dilimin yüzeysel dorsal boynuzundan (SDH) gelen elektrofizyolojik aktivite kaydedilir. Daha sonra, depolarizasyonu uzatmak için bir potasyum kanal inhibitörü eklenir ve bu da nöronal ağ boyunca senkron ritmik aktivite ile sonuçlanır.

Protocol

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Numune toplama ile ilgili tüm prosedürler enstitünün IRB yönergelerine uygun olarak gerçekleştirilmiştir.

1. İn vitro elektrofizyoloji

  1. Omurilik dilimi hazırlanması ve kaydedilmesi için solüsyonların hazırlanması
    1. Yapay beyin omurilik sıvısı
      not: Yapay beyin omurilik sıvısı (aCSF), dilimlerin kayıt başlayana kadar ve deneyler sırasında ilaçlar için hem perfüze hem de seyreltici olarak saklandığı bir arayüz inkübasyon odasında kullanılır. Ayrıntılı kompozisyon için Tablo 1'e bakın.
  2. 118 NaCl, 25 NaHCO3, 10 glikoz, 2.5 KCl, 1 NaH2PO4, 1 MgCl2 ve 2.5 CaCl2 içeren aCSF'yi, CaCl2 hariç yukarıdakilerin gerekli miktarlarını 2 L damıtılmış suya ekleyerek hazırlayın.
  3. Yukarıdaki çözeltiyi 5 dakika boyunca karbojen (%95 O2,% 5 CO2) ile köpürtün ve CaCl2.
    ekleyin not: Bu adım CaCl2 çökelmesini önler, yani çözelti bulanıklaşmamalıdır. Deneyler sırasında ilaç uygulaması için, aCSF'deki ilaç stok çözeltilerini istenen nihai konsantrasyonlara seyreltin.

2. Sükroz ikameli yapay beyin omurilik sıvısı

>NOT: Sükroz ikameli aCSF, diseksiyon ve omurilik dilimleme sırasında kullanılır. Adından da anlaşılacağı gibi, ozmolariteyi korurken bu prosedürler sırasında nöronal uyarımı azaltmak için sükroz NaCl ile ikame edilir. Ayrıntılı kompozisyon için Tablo 1'e bakın.

  1. 250 sakaroz, 25 NaHCO3, 10 glikoz, 2.5 KCl, 1 NaH2PO4, 1 MgCl2 ve 2.5 CaCl2 içeren (mM cinsinden) sakaroz ikameli aCSF'yi, CaCl2 hariç yukarıdakilerin tümünün gerekli miktarlarını 300 mL damıtılmış suya ekleyerek hazırlayın.
  2. Çözeltiyi 5 dakika boyunca karbojen ile köpürtün ve ardından CaCl2 ekleyin.
  3. Çözeltiyi -80 ° C'lik bir dondurucuda yaklaşık 40 dakika veya çözelti bir bulamaç oluşturana kadar saklayın. Katı halde dondurmaktan kaçının ve bulamaç kıvamında kullanın.

3. Mikroelektrot dizisi hazırlama

NOT: MEA'nın temas yüzeyi, onu hidrofilik hale getirmek için bir ön işlem gerektirir.

  1. Deneyden önce, MEA'yı 30 dakika boyunca fetal sığır serumu (FBS) veya at serumu (HS) ile iyice doldurun.
  2. FBS veya HS'yi çıkarın ve damıtılmış su artık köpüklü olmayana kadar MEA'yı yaklaşık beş yıkama damıtılmış su ile iyice durulayın. Kuyuyu kullanıma hazır aCSF ile doldurun.

4. Akut omurilik dilimi hazırlığı

  1. Fareyi 100 mg / kg ketamin (ip) ile derinlemesine uyuşturun ve ardından büyük cerrahi makas kullanarak kafasını çıkarın.
  2. Kalça hizasındaki deride küçük bir kesi yaparak karın bölgesinin üzerindeki cildi çıkarın. Tüm deri çıkarılana kadar, yani göğüs kafesinin tepesinden pelvisin tepesine (hem ventral hem de dorsal) kadar kesilen her iki taraftaki cildi rostral olarak çekin.
  3. Vücudu buzun üzerine yerleştirin ve tüm iç organları çıkararak ve sternumun yanındaki kaburgaları keserek vertebral kolonu ortaya çıkarmak için ventral bir yaklaşım kullanın.
  4. Ventral göğüs kafesini, her iki kürek kemiğini (yaklaşık T2'de kesilmiş) ve alt ekstremiteleri ve pelvisi (yaklaşık olarak sakrumun tepesinde kesilmiş) çıkarın.
  5. Vertebra kolonu ve kaburga preparatını buz gibi soğuk sükroz aCSF içeren bir diseksiyon banyosuna aktarın. Hazırlığın dört köşesini de (ventral yüzey yukarı doğru) alt sırt kaslarından ve bağlı üst kaburgalardan pimler yerleştirerek sabitleyin.
  6. Omurların ventral yüzeyinin üzerindeki tüm kas ve bağ dokusunu rongeurlarla çıkarın ve yaklaşık olarak T12 ila L2 omur gövdelerinin altında yer alan lumbosakral genişleme üzerindeki vertebral bölgeyi belirleyin.
  7. Vertebra kanalında otururken omuriliğe erişim sağlamak için lumbosakral genişleme bölgesine kaudal olan bir omur gövdesini çıkarın.
  8. Kavisli yaylı makas kullanarak, omurların ventral ve dorsal yönlerini ayırmak ve omuriliği ortaya çıkarmak için omur gövdesini rostral olarak kaldırırken ve çekerken vertebral pedikülleri iki taraflı olarak kesin.
  9. Lumbosakral genişlemeyi ortaya çıkarmak için omur gövdeleri çıkarıldıktan sonra, omuriliği sabitleyen kalan kökleri, kordon serbest kalana kadar yaylı makasla dikkatlice temizleyin.
  10. Omuriliği, lumbosakral genişlemenin çok üstünde ve altında rostral ve kaudal kesiklerle izole edin, böylece kordun hedef bölgesinin 'serbestçe yüzmesine' izin verin.
    not: Tercih edilen dilim yönü, kablonun daha sonra kesit alma için nasıl monte edileceğini belirleyecektir (Şekil 1).
  11. Enine dilimler için, lumbosakral segmenti bağlı bir kökten kaldırın ve ortasında sığ bir kanal kesilmiş önceden kesilmiş bir polistiren (strafor) blok (1 cm x 1 cm x 1 cm) üzerine yerleştirin. Bloğu ve kordonu kesit platformuna takmak için siyanoakrilat yapıştırıcı kullanın (Malzeme Tablosuna bakın) ve buz gibi soğuk sükroz aCSF (bulamaç) içeren kesme banyosuna yerleştirin.
    not: Sığ kanal, sırt tarafı açıkta ve kordun torasik ucu bloğun altında olacak şekilde omuriliği sabitlemeye ve yönlendirmeye yardımcı olur.
  12. Sagital dilimler için, kesit platformuna ince bir siyanoakrilat yapıştırıcı çizgisi yerleştirin, lumbosakral genişlemeyi bağlı bir kökle kaldırın ve kordonu tutkal hattı boyunca yerleştirin, bir yan yüzeyin yapıştırıcının içinde ve diğerinin yukarı baktığından emin olun. Buz gibi soğuk sükroz aCSF (bulamaç) içeren kesme banyosuna yerleştirin.
  13. Yatay dilimler için, kesit platformuna ince bir çizgi siyanoakrilat yapıştırıcı koyun. Lumbosakral genişlemeyi bağlı bir kökle kaldırın ve lumbosakral genişlemeyi yapıştırıcı hattı boyunca yerleştirin, ventral yüzeyin yapıştırıcının içinde olduğundan ve sırt yüzeyinin yukarı baktığından emin olun. Kabloyu konumlandırmak için bağlı kökleri kullanın. Buz gibi soğuk sükroz aCSF (bulamaç) içeren kesme banyosuna yerleştirin.

5. Mikroelektrot dizisi kayıtları

>NOT: Aşağıdaki adımlar, omurilik dilimleri üzerinde MEA tabanlı deneylerden elde edilen kayıt verilerinin nasıl kullanılacağını ayrıntılarıyla açıklar. Deneye bağlı olarak birkaç MEA tasarımı kullanılabilir. Bu deneylerde kullanılan MEA'lar için tasarım detayları Tablo 2 ve Şekil 2'de gösterilmiştir. Ayrıntılı tasarım bilgileri Egert ve ark. ve Thiebaud ve ark. tarafından düzlemsel ve 3 boyutlu (3D) MEA'lar için yayınlanmıştır. Her iki MEA tipi de silikon nitrür yalıtım tabakası ve titanyum nitrür izleri ve temas pedleri ile 60 titanyum nitrür elektrottan oluşur.

  1. Deney düzeneği
    1. Bilgisayarı ve arayüz kartını açın ve kayıt yazılımını başlatın.
    2. Önceden monte edilmiş kayıt şablonunu yükleyin (Şekil 3A). Kaydedici sekmesinde günün dosyalarını adlandırın.
    3. Deney süresince aCSF'yi sürekli olarak karbojen (%5 CO2,% 95 O2) ile köpürtün.
    4. Peristaltik bir pompa tarafından kontrol edilen perfüzyon sistemini açın. Giriş hattını aCSF'ye yerleştirin ve giriş ucunu bir atık kabına yerleştirin. Perfüzyon hatlarını aCSF ile astarlayın.
    5. 50 mL aCSF'deki stokları gerekli nihai konsantrasyona seyrelterek 4-AP ve diğer ilaç çözeltilerini hazırlayın (ör., 4-AP için 200 μM).
  2. 4-aminopiridin (4-AP) aktivitesi
    1. İnkübasyonun ardından, aCSF ile doldurulmuş geniş uçlu bir Pasteur pipeti kullanarak inkübatörden tek bir dilim aktarın.
    2. Dilimi MEA kuyucuğuna yerleştirin ve ilave aCSF ekleyin.
    3. İnce kısa bir saç boya fırçası kullanarak dilimi 60 elektrotlu kayıt dizisinin üzerine yerleştirin. Özellikle 3D diziler kullanıyorsanız, elektrotları boya fırçasıyla temas ettirmekten veya dokuyu elektrotlar boyunca sürüklemekten kaçının.
      not: MEA düzenine bağlı olarak, bu, doğru konumlandırma için bir mikroskop yardımı ile veya mikroskop yardımı olmadan yapılabilir.
    4. Dilimi yerleştirdikten sonra, yerinde tutmak ve MEA elektrotlarıyla iyi bir temas sağlamak için dokunun üzerine ağırlıklı bir ağ yerleştirin.
      not: Net yerleşimin ardından dilimin yeniden konumlandırılması gerekebilir.
    5. MEA'yı kayıt başlığına yerleştirintage (Şekil 2A, B).
    6. Yüzeysel dorsal boynuzun (SDH) altında mümkün olduğunca çok elektrotun olduğunu doğrulamak için ters çevrilmiş bir mikroskop (2x büyütme) kullanarak dokunun elektrotlar üzerindeki konumunu kontrol edin. En az 2-6 elektrotun dilime temas etmediğinden emin olun, çünkü bu elektrotlar analiz sırasında gürültüyü çıkarmak ve artefaktları kaydetmek için önemlidir (Şekil 2E).
    7. Kamerayı açın, cihaza bağlayın ve analiz sırasında kullanmak için MEA'ya göre dilimin referans görüntüsünü alın.
    8. Kayıt yazılımında Start DAQ (veri toplama) düğmesine basın ve tüm elektrotların net bir sinyal aldığını onaylayın.
      not: Sinyal gürültülüyse, başlığın klipsini açıntage ve hem MEA temas pedlerini hem de altın yaylı temas noktalarını %70 etanol ile temizleyin (temizlikten sonra pedlerin ve temas noktalarının kuru olduğundan emin olmak için bir laboratuvar mendili kullanın). Sinyal hala gürültülüyse, kayıt yazılımındaki arızalı elektrotları kapatın veya analiz sırasında daha sonra hariç tutmak için not edin.
    9. Perfüzyon giriş ve çıkış hatlarını MEA kuyusuna (önceden aCSF ile doldurulmuş) takın ve perfüzyon sistemini açın. Akış hızını, ideal olarak dakikada 4-6 banyo hacmini kontrol edin ve süper füzatın taşmasını önlemek için çıkış akışının yeterli olduğundan emin olun.
    10. Dokunun 5 dakika boyunca dengelenmesine izin verin ve ardından 5 dakikalık ham, filtrelenmemiş temel verileri kaydedin.
    11. Perfüzyon giriş hattını aCSF'den 4-AP çözeltisine taşıyın ve 4-AP ile indüklenen ritmik aktivitenin kararlı duruma ulaşması için 12 dakika bekleyin (ilaçların banyoya ulaşması için 2 dakika ve aktivitenin zirveye ulaşması için 10 dakika ve ardından plato).
    12. 5 dakikalık 4-AP kaynaklı aktiviteyi kaydedin. İlaçları test etmek veya 4-AP'nin stabilitesini kontrol etmek için sonraki kayıtlara hazırlıklı olun.

Tablo 1: Yapay Beyin Omurilik Sıvısı bileşimleri.

adet
kimyasalaCSF (mM)aCSF (g/100 mL)Sükroz ikameli aCSF (mM)Sükroz ikameli aCSF (g/100 mL)Yüksek potasyumlu aCSF (mM)Yüksek potasyumlu aCSF (g/100 mL)
Sodyum klorür (NaCl)1180,690--1180,690
Sodyum hidrojen karbonat (NaHCO3)250,210250,210250,210
glikoz100,180100,180100,180
Potasyum klorür (KCl)2,50,0192,50,0194.50,034
Sodyum dihidrojen fosfat (NaH2PO4)10,01210,01210,012
Magnezyum klorid (MgCl2)10,0110,0110,01
Kalsiyum klorür (CaCl2)2,50,0282,50,0282,50,028
Sakaroz--2508.558--

Tablo 2: Mikroelektrot dizisi düzenleri.

Mikroelektrot Dizi Düzenleri
Mikroelektrot Dizi Modeli60MEA 200/30iR-Ti60-3DMEA 100/12 / 40iR-Ti60-3DMEA 200/12/50iR-Ti60MEA 500/30iR-Ti
Düzlemsel veya 3 Boyutlu (3D)Düzlemsel3d3dDüzlemsel
Elektrot Izgarası8 x 88 x 88 x 86 × 10
Elektrot Aralığı200 μm100 μm200 μm500 μm
Elektrot Çapı30 μm12 μm12 μm30 μm
Elektrot Yüksekliği (3D)Yok40 μm50 μmYok
DeneyEnine dilimEnine dilimSagital + YataySagital + Yatay

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Results

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

figure-results-1
Şekil 1: Omurilik dilimi oryantasyonları, montaj ve kesme yöntemleri. (A) Enine dilimler, içine bir destek oluğu kesilmiş bir Strafor kesme bloğu gerektirir. Omurilik, destek oluğundaki bloğa dayandırılır, kordonun sırt tarafı bloktan uzağa bakar. Blok ve kordon, siyanoakrilat yapıştırıcı ile bir kesme aşamasına yapıştırılır. (B) Sagital dilimler, kesme aşamasına ince...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Disclosures

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
Herhangi bir çıkar çatışması beyan edilmedi.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
4-aminopiridinSigma-Aldrich275875-5G
% 100 etanolTermo BalıkçıAJA214-2.5LPL
CaCl2 1MBanksia Bilimsel0430/1L
Carbonox (Karbojen -% 95 O2,% 5 CO2)Çekirdek gaz219122
Kavisli uzun saplı yaylı makasGüzel Bilim Araçları15015-11
Özel yapım hava arayüzü inkübasyon odası
Fetal sığır serumuTermo Balıkçı10091130
Forseps Dumont #5Güzel Bilim Araçları11251-30
glikozTermo BalıkçıAJA783-500G
At serumuTermo Balıkçı16050130
Ters mikroskopZeissEksen 10
KartalTermo BalıkçıAJA383-500G
KetaminCeva BelediyesiKETALAB04
Büyük cerrahi makasGüzel Bilim Araçları14007-14
Loctite 454 Anında YapıştırıcıCıvata ve Endüstriyel MalzemelerL4543G
MATLAB (MATEMAT)Matematik ÇalışmalarıR2018b
MEA'lar, 3 BoyutluÇok Kanallı Sistemler60-3DMEA100 / 12 / 40iR-Ti, 60-3DMEA200 / 12 / 50iR-ti60 titanyum nitrür (TiN) elektrot ve 1 dahili referans elektrot, 8x8 kare ızgara şeklinde düzenlenmiş. Elektrotlar 12 μm çapında, 40 μm (100/12/40) veya 50 μm (200/12/50) yüksekliğinde ve eşit uzaklıkta 100 μm (100/12/40) veya 200 μm (200/12/50) aralıklıdır.
MEA baş sahnesiÇok Kanallı SistemlerMEA2100-HS60
MEA arayüz kartıÇok Kanallı SistemlerMCS-IFB 3.0 Çoklu Önyükleme
MEA ağıÇok Kanallı SistemlerALA HSG-MEA-5BD
MEA perfüzyon sistemiÇok Kanallı SistemlerPPS2
MEA'lar, DüzlemselÇok Kanallı Sistemler60MEA200/30iR-TI, 60MEA500/30iR-TI60 titanyum nitrür (TiN) elektrot ve 1 dahili referans elektrot, 8x8 kare ızgara (200/30) veya 6x10 dikdörtgen ızgara (500/30) şeklinde düzenlenmiştir. Elektrotlar 30 μm çapındadır ve 200 μm (200/30) veya 500 μm (500/30) aralıklarla eşit aralıklarla yerleştirilmiştir.
MgCl2Termo BalıkçıAJA296-500G
Mikroskop kamerasıMotic (Hareketli Müzik)Moticam X Kablosuz Bağlantısı
Çok Kanallı Analiz YazılımıÇok Kanallı SistemlerV 2.17.4
Çok Kanallı Deneyci yazılımıÇok Kanallı SistemlerV 2.17.4
NaCl (Doğal)Termo BalıkçıAJA465-500G
NaHCO3Termo BalıkçıAJA475-500G
NaH2PO4Termo BalıkçıACR207805000
Rongeurs BelediyesiGüzel Bilim Araçları16021-14
Küçük yaylı makasGüzel Bilim Araçları91500-09
Küçük cerrahi makasGüzel Bilim Araçları14060-09
SakarozTermo BalıkçıAJA530-500G
Süper yapıştırıcısiyanoakrilat yapıştırıcı
TetrodotoksinAbcam BelediyesiAB120055
Titreşim izolasyon tablosuNewportVH3048W-OPT
Titreşimli mikrotomLeica BelediyesiVT1200 S Serisi
Gazetesi Serisi

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Tags

Microelectrode ArrayNeuronal NetworkMouse Spinal CordSuperficial Dorsal HornPotassium Channel Inhibitor4 AminopyridineAction Potential RecordingElectrophysiological ActivitySynchronous Rhythmic ActivityArtificial CSF Perfusion

Related Articles