Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliğiniz gereklidir. Giriş yapın veya ücretsiz denemenizi bugün başlatın.

Yöntem makalesi

Miyokutanöz İskemi Reperfüzyon Hasarı Rat Modeli: in situ Enine Rektus abdominis kas deri Flap

13.1K görüntülenme

⸱

DOI:

10.3791/50473

⸱

8 Haziran 2013

 ,  , 
1Department of Surgery, Royal Infirmary of Edinburgh, 2Department of Nephrology, Royal Infirmary of Edinburgh

Bu makalede

Özet

Ücretsiz doku transferi yaygın olarak onkolojik rezeksiyon ve travma sonrası form ve fonksiyon geri rekonstrüktif cerrahide kullanılmaktadır. Ameliyat öncesi bu doku ön hazırlık sonucu iyileştirebilir. Bu makalede, bir açıklar In situ enine rektus abdominis kas deri flebi (TRAM).

Özet

Ücretsiz doku transferi yerel seçenekler ya da bu gerektiren kompozit doku için uygun olmayan karmaşık hataları onarmak için rekonstrüktif cerrahi altın standarttır. Iskemi reperfüzyon hasarı (IRI) kısmi serbest flep başarısızlık bilinen bir nedenidir ve etkili bir tedavi vardır. Bu yaralanma bir laboratuvar modeli kurulması pahalı kanıtlayabilirim hem maddi büyük memeliler geleneksel bu işlemlerin teknik zorluk genellikle deneyimli bir microsurgeon istihdam gerektirir tarafından kullanılan ve uzmanlık gereklidir gibi. Bu yayın ve video mikrocerrahi uzmanlık gerektirmez sıçanlarda IRI bir modelinin etkin kullanımını göstermektedir. Bu işlem atravmatik kelepçeler bu ameliyatı ile ilişkili iskemi-reperfüzyon hasarı üretmek için kullanılmaktadır enine abdominis kas deri (TRAM) flep in situ modelinde bir olduğunu. Bir lazer Doppler Görüntüleme (LDI) tarayıcı flep perfüzyon ve görüntü işleme softwa değerlendirmek için kullanılıryeniden, yaralanma birincil sonuç ölçütü olarak yüzde alanı cilt hayatta değerlendirmek için Resim J.

Giriş

Bu protokolün amacı girişimsel stratejiler araştırılması sağlamak için serbest doku transferi gözlenen iskemi-reperfüzyon hasarı bir güvenilir ve tekrarlanabilir bir model göstermektir.

Serbest doku transferi alıcı yerinde yerel damarlara kapağın nakledilmiş kapların anastomozunun otolog doku nakli takiben doku izole edilmiş bir bloğun vasküler kopma olarak tanımlanır. Prosedür FTT olarak bilinir ve bu dokudan serbest kanadı olarak adlandırılır transfer edilmektedir.

Ücretsiz doku transferi yerel seçenekler uygun olmayan veya kullanılamaz karmaşık, kompozit kusurların düzeltilmesi için altın standart yaklaşımdır. 1-4 iskemi reperfüzyon hasarı (IRI), serbest doku transferi kaçınılmaz başarısızlık 5,6 flap katkıda bulunmamakta, etkili bir tedavi. Serbest flep ameliyatları seçime dayalı yapısını farmakolojik yönetimi izin verirIRI karşı ön koşul için cal ajanlar.

Endotel aktivasyonu ve metabolik fonksiyon bozukluğu ile mikro ile engelli akışı IRI sonuçları, 7 kapiller geçirgenliği ve sonraki interstisyel ödem 7, inflamatuar hücrelerin akını, inflamatuvar mediatörlerin 8 sürümü, reaktif oksijen türleri 9 ve tamamlayıcı birikimi artmıştır. 10 hipoksi Bu karmaşık bir süreç ve takip eden reperfüzyon sonunda hücre ölümüne yol açar. Miyokutanöz IRI modeli değerlendirilmesi gereken klinik sonuçlar üzerine stratejiler ön koşullandırma etkisini sağlar. Son çalışmalar insan denekler ve mevcut hayvan veri gözlenen moleküler değişiklikler karşılaştırarak insan IRI için bir vekil olarak IRI çalışmaların hayvan modellerinin kullanımı teyit edilmiştir. 10,11

Sıçan enine rektus abdominis kas deri (TRAM) flep olanlar önce Almanca 12 ve 1993 yılında 1987 yılında tanımlanmıştırİngilizce 13. Bu model IRI serbest doku transferi ile ilgili azaltmak için farklı stratejiler araştırmak için ucuz, sağlam model olarak geniş popülerlik 13-25 kazandı. Bu çalışmaların 14,17-22 çoğunluğu, derin, alt dayalı unipedicled TRAM flep olarak tasarlanmıştır . ve postoperatif takip farklı uzunlukta (2 - 10 gün) - Bu çalışmalardan elde edilen verilerin epigastrik vasküler pedikül 15-18,20-22 Karşılaştırma farklı büyüklükte deri adaları (30 cm 2 10.5) kullanımı ile karmaşıktır. Bu çalışmaların kontrol kolundaki ortalama toplam yüzde alanı flep nekrozu 69 ± 6.2% (ortalama ± SEM) 'dir. Bu altı kağıtları tüm vasküler pedikül için bir taşıyıcı olarak rektus abdominis kas istihdam ama bölmek ve damarları microanastomose veya kelepçe, maruz bırakmayın unutulmamalıdır. Zhang ve arkadaşları. 23 üstün epigastrik damarları dayalı gerçek, ücretsiz sıçan TRAM flep tarif ettiğim hangi ftur, kaldırdı gemi bölünmüş ve miyokutanöz flep transfer ve kasık gemilere microanastomosed edildi. 0.5 mm çapında gemi - Bu zor bir teknik 0.45 microanastomosis gerekli. Sadece on beş yapılır ve bu% 67 hayatta. 23 Zhang ve ark modeli. Gerçekten FTT sırasında oluşan yaralanma aynalar gibi 23 insan ücretsiz TRAM flep için mükemmel bir modeldir. Edildi Bir sıçan TRAM flep diğer yayınlanmış modelleri daha doğru bir insan pediküllü TRAM sırasında oluşan yaralanmalar yansıtan ama doğru vasküler kelepçeli ya da bölünmüş asla pedikül ve gibi reperfüzyon ardından bir iskemik süre uğramayan bu flep olarak IRI yansıtmaz microanastomosis yapıldı. Bu protokol ve video IRI microclamps kullanılarak çoğaltılmış olduğu sıçan TRAMVAY kullanarak serbest doku transferi yeni bir model tarif. Bu daha sadık pedikül TRAMVAY öncekilerden daha IRI çoğaltır ama performi daha teknik olarak daha kolaydırng microanastomosis. Microclamps yaygın IRI solid organ nakli ile ilgili yeniden nakli araştırmacılar tarafından istihdam edilmiştir, 26-33 ancak, bu sıçan TRAM flep tarif edilmiştir ilk kez.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

Tüm cerrahi Birleşik Krallık'ın İçişleri Bakanlığı ve Edinburgh Veteriner Hizmetleri Dairesi Üniversitesi tarafından belirlenen esaslara uygun olarak yapılır.

1. Cerrahi Prosedür Kurulum Notları

  1. Temiz cerrahi scrubs, elbisesi, bodur kap ve maske içine değiştirin. % 70 izopropil alkol% 2 klorheksidin ile ekipmanları da dahil olmak üzere ameliyathane tüm yüzeylerini temizleyin.
  2. Ameliyat öncesinde, tüm cerrahi malzeme ve prosedüründe kullanılacak araçlar otoklav. Işletme başına steril paketleri içermelidir: 3 perdeler, gazlı bez, pamuk uçlu aplikatörler, silikon kaplama ve cerrahi aletler, Özel Cerrahi Malzemeler ve Araçlar ve Şekil 1 Tablo bakın. Sıçan tartılır ve işlem tamamlanmadan önce deri altından, 1 saat tatbik edilecek buprenorfinin uygun bir hacmi (0.04 mg / kg) ölçün. Yerleşimi; edici sırasında deri altı sıvı yönetimi için 3 x 1 ml şırıngaery, 2 x 6-0 Vicryl dikiş, 1 x 5-0 Ethilon sütür, cetvel ve bir 10-bıçak tek neşter, 4 ile steril bir işaretleyici - 5 steril eldiven çiftleri ve bir el koter ünitesi.
  3. Yer 4 x 10 ml steril, bir su banyosu içinde% 0.9 'luk tuzlu su şişeleri 37 ° C ye ısıtıldı Bu deri altı sıvı değiştirilmesi için kullanılacaktır (1 mL / kg / saat) ve cerrahi bölgenin durulayın. Homeothermic battaniye, rektal prob, ısı lambası, çalışma mikroskop ve anestezi teçhizat ayarlayın. Lazer ve yazılımı açın, başka bir anestezi teçhizat kurulum ve hayvan tarama sırasında koyacak üzerinde siyah mat altında bir ısı pedi yerleştirin.
  4. 250-300 g ağırlığında erkek Lewis fareleri kullanır. Herhangi bir cerrahi öncesi 12 saat ışık-karanlık çevrimi ile yiyecek ve su ad libitum ile 7 gün boyunca ev sıçan gerçekleştirilir.

2. Anestezi ve Cilt Hazırlık

  1. Anestezi teçhizat en indüksiyon odasında sıçan yerleştirin ve için 1L/min O 2 ile% 4 izofluran yönetmekAnestezi ikna etmek 2-3 dk. Odasından anestezi sıçan çıkarın ve temiz, ısıtmalı mat sırtüstü yerleştirin. Bir burun konisi kullanılarak% 1.5 izofluran koruyun. İşlem sırasında kornea aşınmaya önlemek için lacrilube veya benzeri madde uygulayın. Hayvan geçmeden önce yeterli anestezi sağlamak için bir ayak-pad tutam testi yapın. Prosedür her önemli bir adım önce bu son testi tekrarlayın ve buna göre inhalasyon anestezik konsantrasyonu ayarlayın.
  2. Tüm karın yüzeyi maruz kaldığı çok yakından bir elektrikli tıraş makinesi kullanarak karın ön tıraş. Tedarikçi tarafından önerilen süresince krem ​​depilating uygulayın. Krem çıkarın ve iyice krem ​​tüm izlerini silmek için ısıtılmış steril serum fizyolojik ile cilt durulayın. Cilde% 70 izopropil alkol% 2 klorheksidin uygulayın ve devam etmeden önce kurumasını bekleyin. Bu cerrahi alan enfeksiyonu için geçerli kanıtlara dayalı ünitemizde standart cilt hazırlıktır. 34 Lütfen dsizin Veteriner Bölümü ile iscuss bir cilt hazırlığı protokol seçilmesi önce ünitesinde standart prosedür budur.
  3. Place 2 perdeler ya da sıçan yan ve steril tutmak için özen. Steril eldiven giyin ve bir asistan yardımı ile steril paketleri açmak. Tek bir örtü üzerinde araçlar ve dikişler, gazlı bez, pamuk aplikatör, silikon kaplama ve diğer cetvel ile steril marker kalem yerleştirin.
  4. Referans noktaları olarak xiphisternum ve kuyruk kullanarak orta hat belirlemek. Orta hat işaretleyin. Xiphisternum altında 0.8 cm boyutlarında ve bu noktada işaretleyin. Bu noktadan orta hatta bir çizgi dik çizin. 1 cm ve 2 cm sola ve orta hat doğru dışarı kapağı işareti merkezi olarak orta hat almak. Noktalarından orta hatta paralel dikey çizgiler çizin. Orijinal yatay sınırının altında 4 cm ölçmek ve başka bir paralel çizin. Bu talimatları izleyerek 4 eşit şeritler halinde bölünmüş bir 4 x 4 cm flep tarif edilir(Bkz. Şekil 2).

3. Lazer Doppler Görüntüleme

  1. Dikkatlice LDI tarayıcı, ikinci anestezi teçhizat burun konisi için fare hareket ettirin. Izofluran% 1.5, 1L/min O 2 anestezi devam edin. Lazer açın ve taramayı başlatmak için üreticinin yönergelerini izleyin. Taranan dosyayı kaydettikten sonra ilk teçhizat geri sıçan dönmek ve bir yağ gibi yumuşak beyaz parafin kullanarak homeothermic battaniye rektal prob yeniden takın.

. 4 in situ TRAM flep - IRI miyokutanöz Model

  1. Yeniden fırçalayın elleri ve taze steril eldiven koymak. Kalan steril örtü ortasında bir 5 cm çapında daire kesip ve bol dökümlü steril alan oluşturmak için maruz karın üzerinde bu yerleştirin.
  2. Sol lateral işaretlenmiş kenar (Şekil 3A ve B) aşağı bir kesi yapmak. Hemostaz sağlamak. Yatay çizgiler aşağı benzer kesiler olunorta hat solunda. Hemostaz sağlamak.
  3. Yağ örten sol alt rektus kılıf görünür olmalıdır. Dikkatli forseps ve ince iris makası kullanarak bu yağ altına almak. Sol, ön rektus kılıf üzerinden gelen deliciler zarar vermemeye dikkat edin. Bu diseksiyon tarafından açıldı uçak olduğunu hemen karın ön duvarı fasya üzerindedir. Sınırları çizilmiş kenar boşlukları etrafında bu düzlemde diseksiyon devam edin. Sol iliak fossada büyük, yüzeysel sirkumfleks iliak damarları-bu bağlı veya koterize edilebilir yatıyor. Daha sonra dikkatli medial diseksiyon genişletmek ve sadece kadar sol rektus kasının lateral kenar gibi. Pembe yakın beyaz (Şekil 3C) için bu noktada açık bir renk değişimi mevcuttur. Dikkatlice steril serum fizyolojik ile alanı sulamak ve hemostaz alana nemli gazlı bez koymadan önce elde edildiğini kontrol edin.
  4. Karşı tarafta aynı işlemi tekrarlayın ama bu kez t uzatmaklinea alba (orta hat) o. Sağ rektus abdominis kas (Şekil 3D) merkezinde ortaya çıkan tüm musculocutaneus deliciler belirlemek ve dağlamak için özen gösterin. Bu düzgün yapılmazsa değilse bir postoperatif hematom ve sahte sonuçları neden olabilir. Benzer şekilde, Hemostaz sağlamak sulamak ve yükseltilmiş flep üzerine nemli gazlı bez yerleştirin.
  5. Sol ön rektus en alt marjı (Şekil 3E ve F) geri dönün. Görülen en aşağı delme dağlamak. Microscissors kullanarak ön rektus kılıf küçük bir (yaklaşık 0,6 cm x 0,6 cm) pencere kesmek ve Graeffe forseps kavisli sivri devam edin. Arka kılıf ihlal önce kas incelir ama kadar kas lateral kenar yavaşça teşrih künt. Daha sonra forseps döndürmek ve kas karın forseps kavisli kenar üstünde ve ipuçları medial marjı ücretsiz kadar mediale teşrih künt. Yaklaşık Yemly 6 forseps pençesinden içine 5-0 Ethilon bir cm ve alt rektus kılıf kapalı kravat. Bu adımın tamamlanmasının ardından kaldırılan kas deri flebi bir baskın damar-derin üstün epigastrik damarlar üzerinde izole edilmiştir. Nemli bir gazlı bez ile örtün.
  6. Düzgün köşeleri, (Şekil 3G) ile oval içine silikon kaplama kesin. Bu flep fasyokutan bölümlerini altında açık kalan alanın çoğunu kapsayacak kadar büyük olmalıdır. Ancak, dikkatli cilt kenarı oval herhangi bir gerginlik ve medial eğrisi olmadan kapatılabilir sağlamak için alınması gereken kalan deliciler aracılığıyla bozarak akışını önlemek için geri eşleştirilmiş gerekebilir. Bunlar daha sonra 6-0 Vicryl (Şekil 3H) ile yerine dikilir. Nemli gazlı bez ile kaplayın.
  7. Basit kullanarak ısı ve su kaybı (Şekil 3I) azaltmak için flep dışarı rejimi '5-0 Ethilon sütür. Nemli bir gazlı bez ile örtün.
  8. Solundaki superior yara uzatınxiphisternum (Şekil 3I). Alan-of-görünümü geliştirmek için sol üst kadranda bu dikin.
  9. Üstün, sol, ön rektus kılıf ortaya çıkarmak için herhangi bir örten yağ kesip. Bu kılıf küçük (0.6 cm x 0.6 cm) penceresi (Şekil 3J) kesin. Dikey sıkı gevşek fibriller için dolu gelen eğik ve tutarlılık görülür kas lifi yörünge bir değişiklik kadar medial yara uzatın.
  10. Bu iki kas arasındaki dikkatle kavisli bir forseps yerleştirin ve künt diseksiyon ile bir uçak kadar açık. Sadece kadar altta yatan derin, üstün epigastrik arter ve ven (Şekil 3K) ortaya çıkarmak için sol rektus abdominis kas karın ile kesme bu kavisli bir forseps üstün yüzey olarak dikkatli bir şekilde azaltmak.
  11. , Işletim mikroskopta mikro araçlar ve yüksek güç kullanılarak dikkatlice arter ve ven ayrı ve herhangi bir çevre yağ kapalı şerit.
  12. Bir için atravmatik Acland kelepçeleri uygulayınrtery ve ven (B-1, "V" tipi) ve 30 dakika iskemik süre geri sayıma Sayacı başlatmak. Kenetli pedikül sulamak ve gazlı bez ile kapatın. Biz verapamil veya pabavarine gibi damar dilatörler istihdam yoktu ama gemi spazm bir sorun olmalı, bu ilaçlar düşünülmelidir.
  13. Buprenorfin (0.04 mg / kg) ve ısıtılmış, steril tuzlu su (1 mL / kg / saat) uygulayın.
  14. Sol üst köşeden başlayarak, 6-0 Vicryl subkütiküler sütür durdurma ve xiphisternum kapalı bağlama ile yerde flep sütür.
  15. 30 dakika iskemi süresi sona erdiğinde, dikkatle kelepçeleri çıkarın ve ılık tuzlu su ile pedikül sulamak. Bu akış yeniden kurulmuştur kontrol edin. Bu iskemik kez İngiltere İçişleri Bakanlığı yetkilisi tarafından öngörülen olduğunu lütfen unutmayın. Diğer yetkililer çalışan araştırmacılar bu süreyi uzatmak mümkün olabilir. Iskemi süresi uzatılması muhtemel daha kötü klinik sonuca yol açacaktır.
  16. 6-0 Vicryl ile yeniden rektus ve kesme kenarları dikin.Bu gemilerin bükülme yol gibi çok fazla gerginlik uygulamak için dikkat edin.
  17. (Şekil 3K) cilt altındaki tüm knot gömmek bakımı cilt altı dikiş tamamlayın.
  18. Yara alan temizleyin ve kurutun. Kapağı üzerindeki bölgeleri yeniden çizin.
  19. Bir ameliyat sonrası görüntü elde etmek için hayvan yeniden tarayın.
  20. Hayvancılık birim dönmeden önce kurtarmak için 1 saat için ısıtılmış bir inkübatör (37 ° C) olarak hayvanın gözleri ve yere lacrilube yeniden uygulayın.

Protokol içinde kritik adımlar

Prosedürün dönüm noktası derin, üstün epigastrik damarları tespit bulunmaktadır. Bu ekli filmde açıkça gösterilmiştir. Kısacası, bir pencere boyuna yayınlanmaya başlayacak temel kas lifleri ortaya çıkarmak için ön rektus kılıf kesilir. Medial kas lifi yörünge bir değişiklik ön rektus kılıf yüzeysel diseksiyonu uzatarak f görülmektedireğik için boyuna rom. Kas liflerinin bu iki demetleri kesiştiği sona erdi, kavisli, Graeffe forseps (veya benzeri) künt takın. Yanal teşrih künt. Kas lif demetleri arasındaki bu düzlemde düzenlenen kavisli bir forseps üst yüzeyi üzerine, mikro makas kullanılarak, kes. Graeffe çıkarılması üzerine derin, üstün epigastrik arter forseps ve ven rektus abdominis kas vücudun orta noktasında gözlenecektir. Yağ örten mikro araçlar kullanarak damarları kapalı şerit ve kelepçeler geçerlidir.

Sıçan TRAM flep fasyokutan bölümlerini kapağı tam kalınlıkta deri grefti olarak almaya izin verecek kadar ince. Bunu önlemek için ve bu IRI ince, esnek bir silikon sac kapağının fasyokutan bölümlerini altına yerleştirilir. 35 Bu adım kabul edilmiştir sıçan TRAMVAY modelleri üstlenerek diğer araştırmacılar tarafından. 17,21,25 gerçek bir model olmasını sağlamak için

Sıçanlar throu çiğnemekgh knot böylece tüm dikişler subkütiküler olduğundan emin olun ve tüm knot gömülüdür. Diğer araştırmacılar tarafından bildirilen kapakları titiz dikiş autocannabilism yürüten önlenebilir. 24

Buprenorfin ardından yönetim İsofluranın 1% (1L/min O 2) bakım anestezi azaltır.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

Sıçan modelleri büyük hayvanların modellere göre daha ekonomiktir, 36 doğada hastalığa dayanıklı ve genetik olarak manipüle edilebilir. Kemirgenler gibi gevşek derili hayvan, böyle insan ve domuz gibi sabit tenli hayvanlara kıyasla deri kan akımı farklı bir düzenleme var düşünüldü. Gevşek derili Hayvanlarda, deri aksine örten deri (Şekil 4) deri altı yağ geçerek doğrudan deri kan damarları tarafından öncelikle verilir, sabit derili hayvan altta yatan kasları ile ders örten kabuklarıyla tedari...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

Değişiklikler ve sorun giderme

Burada sunulan protokol bu sürecin daha iyi anlaşılmasını sağlayan deneysel sistemde serbest doku transferi görülen IRI üretir ve IRI iyileştirmede ve sonuç geliştirme araçları araştırmak için bir araç sağlar. Bu baskın olmayan, derin, aşağı pedikül epigastrik veya iskemik zaman artış olsaydı dayanmaktadır, bu kolayca daha ağır yaralanma üretmek için değiştirilebilir.

Teknik sınırlamaları

Sıçan karın ön duvarı...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

Biz hiçbir açıklama yok.

Teşekkürler

Bu çalışma Tıbbi Araştırma Konseyi hibe G1000299 tarafından finanse edildi.

İlgili yazar ameliyat sırasında yardım için Gary Borthwick, University of Edinburgh, teşekkür etmek istiyorum.

Yazarlar Helen Douglas ve Iain Mackay tavsiye kabul etmek gibi ve bize Derin İnferior Epigastrik (DIEP) flep prosedürü (Canniesburn Plastik Cerrahi Ünitesi, Glasgow Kraliyet Hastanesi, 84 Castle Street, Glasgow G4 0SF, UK) gözlemlemek için izin istiyorum.

Yazarlar ayrıca bu yazı için video üretiminde yaptığı yardım için Edinburgh Üniversitesi'nde Gary Blackie teşekkür etmek istiyorum.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
Moor LD12 lazer doppler görüntüleme tarayıcısıhttp://gb.moor.co.uk/product/moorldi2-laser-doppler-imager/8
Esnek problu komple homeotermik battaniye sistemi. Küçük. 230 VAC, 50 Hz507221Fwww.harvardapparatus.com
Graeffe forseps 0,8 mm uçlar kavisli11052-102, http://www.finescience.de
Acland kelepçeleri00398 VB-1 ve #8217; V’ Hem atardamar hem de toplardamarda kullanılan desen klempleri. http://www.merciansurgical.com/acland-clamps.pdf
Kelepçe aplikatörüCAF-4http://www.merciansurgical.com/acland-clamps.pdf
İkizler koter ünitesi726067www.harvardapparatus.com
Mikro damar genişleticiler 11 cm 0,3 mm uçlar 00124D-5a.2http://www.merciansurgical.com
Mikro Kuyumcular Forseps 11cm açılı 00109JFA-5bhttp://www.merciansurgical.com
Mikro Kuyumcular Forseps 11 cm düz 00108JF-5http://www.merciansurgical.com
Acland Tekli Kelepçeler B-1V (Çift)396http://www.merciansurgical.com
Mikro Makas Yuvarlak Saplar 15 cm Düz67http://www.merciansurgical.com
İris Makası 11,5 cm Eğriler KOLAY KESİMEA7613-11http://www.merciansurgical.com
Mayo Makas 14 cm Düz Pahlı Bıçaklar EASY-CUTEA7652-14http://www.merciansurgical.com
Derf İğne Tutucular 12 cm TC703DE12http://www.merciansurgical.com
Ethilon 5-0W1618http://www.farlamedical.co.uk/
Vicryl rapide 6-0W9913http://www.millermedicalsupplies.com/
Instrapac - Adson Dişli Forseps (Ekstra İnce)7973http://www.millermedicalsupplies.com/
Castroviejo iğne tutucular12565-14http://s-and-t.ne
Isı Lambasıhttp://www.chicken-house.co.uk
Silikon kaplama 0,3 mm yarı saydamhttp://www.silex.co.uk/
Image J softwarehttp://rsbweb.nih.gov/ij/
Zeiss OPMI picohttp://www.zeiss.co.uk/
Ameliyat mikroskobu
Veteriner teknolojisi çözümü izofloran teçhizatıhttp://www.vet-tech.co.uk/
Vet teknoloji çözümü isofluorane righttp://www.vet-tech.co.uk/

Kaynaklar

  1. Wang, X., et al. Free anterolateral thigh adipofascial flap for hemifacial atrophy. Ann. Plast. Surg. 55 (6), 617-622 (2005).
  2. Eckardt, A., Fokas, K. Microsurgical reconstruction in the head and neck region: An 18-year experience with 500 consecutive cases. J. Cranio. Maxill. Surg. 31 (4), 197-201 (2003).
  3. Yazar, S., et al. Safety and reliability of microsurgical free tissue transfers in paediatric head and neck reconstruction - a report of 72 cases. J. Plast. Reconstr. Aes. 61 (7), 767-771 (2008).
  4. Blondeel, P. N., Landuyt, K. H. V., Monstrey, S. J. Surgical-technical aspects of the free diep flap for breast reconstruction. Operat. Tech. Plast. Reconstr. Surg. 6 (1), 27-37 (1999).
  5. Siemonow, M., Arslan, E. Ischaemia/reperfusion injury: A review in relation to free tissue transfers. Microsurgery. 24, 468-475 (2004).
  6. Wang, W. Z. Investigation of reperfusion injury and ischaemic preconditioning in microsurgery. Microsurgery. 29, 72-79 (2009).
  7. Rucker, M., et al. Reduction of inflammatory response in composite flap transfer by local stress conditioning-induced heat-shock protein 32. Surgery. 129 (3), 292-301 (2001).
  8. Cetinkale, O., et al. Involvement of neutrophils in ischemia-reperfusion injury of inguinal island skin flaps in rats. Plast. Reconstr. Surg. 102 (1), 153-160 (1998).
  9. Korthuis, R. J., Granger, D. N., Townsley, M. I., Taylor, A. E. The role of oxygen-derived free radicals in ischemia-induced increases in canine skeletal muscle vascular permeability. Circ. Res. 57 (4), 599-609 (1985).
  10. Eisenhardt, S. U., et al. Monitoring molecular changes induced by ischemia/reperfusion in human free muscle flap tissue samples. Ann. Plast. Surg. 68 (2), 202-208 (2012).
  11. Dragu, A., et al. Gene expression analysis of ischaemia and reperfusion in human microsurgical free muscle tissue transfer. J. Cell. Mol. Med. 15 (4), 983-993 (2011).
  12. Tilgner, A., Herrberger, U. [myocutaneous flap models in the rat. Anatomy, histology and preparation technic of the myocutaneous rectus abdominis flap]. Z. Versuchstierkd. 29 (5-6), 231-236 (1987).
  13. Dunn, R. M., Huff, W., Mancoll, J. The rat rectus abdominis myocutaneous flap: A true myocutaneous flap model. Ann. Plast. Surg. 31 (4), 352-357 (1993).
  14. Clugston, P. A., Perry, L. C., Fisher, J., Maxwell, G. P. A rat transverse rectus abdominis musculocutaneous flap model: Effects of pharmacological manipulation. Ann. Plast. Surg. 34 (2), 154-161 (1995).
  15. Ozgentas, H. E., Shenaq, S., Spira, M. Development of a tram flap model in the rat and study of vascular dominance. Plast. Reconstr. Surg. 94 (7), 1012-1017 (1994).
  16. Doncatto, L. F., da Silva, J. B., da Silva, V. D., Martins, P. D. Cutaneous viability in a rat pedicled tram flap model. Plast. Reconstr. Surg. 119 (5), 1425-1430 (2007).
  17. Lineaweaver, W. C., et al. Vascular endothelium growth factor, surgical delay, and skin flap survival. Ann. Surg. 239 (6), 866-873 (2004).
  18. Rezende, F. C., et al. Electroporation of vascular endothelial growth factor gene in a unipedicle transverse rectus abdominis myocutaneous flap reduces necrosis. Ann. Plast. Surg. 64 (2), 242-246 (2010).
  19. Zacchigna, S., et al. Improved survival of ischemic cutaneous and musculocutaneous flaps after vascular endothelial growth factor gene transfer using adeno-associated virus vectors. Am. J. Pathol. 167 (4), 981-991 (2005).
  20. Zhang, F., et al. Improvement of skin paddle survival by application of vascular endothelial growth factor in a rat tram flap model. Ann. Plast. Surg. 46, 314-319 (2010).
  21. Hijjawi, J., et al. Platelet-derived growth factor β, but not fibroblast growth factor 2, plasmid DNA improves survival of ischemic myocutaneous flaps. Arch. Surg. 139 (2), 142-147 (2004).
  22. Wong, M. S., et al. Basic fibroblast growth factor expression following surgical delay of rat transverse rectus abdominis myocutaneous flaps. Plast. Reconstr. Surg. 113 (7), 2030-2036 (2004).
  23. Zhang, F., et al. Microvascular transfer of the rectus abdominis muscle and myocutaneous flap in rats. Microsurgery. 14 (6), 420-423 (1993).
  24. Hallock, G. G., Rice, D. C. Comparison of tram and diep flap physiology in a rat model. Plast Reconstr Surg. 114 (5), 1179-1184 (2004).
  25. Qiao, Q., et al. Patterns of flap loss related to arterial and venous insufficiency in the rat pedicled tram flap. Annals of Plastic Surgery. 43 (2), 171(1999).
  26. Persy, V. P., Verhulst, A., Ysebaert, D. K., De Greef, K. E., De Broe, M. E. Reduced postischemic macrophage infiltration and interstitial fibrosis in osteopontin knockout mice. Kidney Int. 63 (2), 543-553 (2003).
  27. Li, Y., et al. Overexpression of cgmp-dependent protein kinase i (pkg-i) attenuates ischemia-reperfusion-induced kidney injury. Am. J. Physiol. Ren. Physiol. 302 (5), 561-570 (2012).
  28. Hunter, J. P., et al. Effects of hydrogen sulphide in an experimental model of renal ischaemia-reperfusion injury. Brit. J. Surg. 99 (12), 1665-1671 (2012).
  29. Hamada, T., Fondevila, C., Busuttil, R. W., Coito, A. J. Metalloproteinase-9 deficiency protects against hepatic ischemia/reperfusion injury. Hepatology. 47 (1), 186-198 (2008).
  30. Duarte, S., Hamada, T., Kuriyama, N., Busuttil, R. W., Coito, A. J. Timp-1 deficiency leads to lethal partial hepatic ischemia and reperfusion injury. Hepatology. 56 (3), 1074-1085 (2012).
  31. Shen, X. D., et al. Cd154-cd40 t-cell costimulation pathway is required in the mechanism of hepatic ischemia/reperfusion injury, and its blockade facilitates and depends on heme oxygenase-1 mediated cytoprotection. Transplantation. 74 (3), 315-319 (2002).
  32. Liu, J., et al. Endoplasmic reticulum stress modulates liver inflammatory immune response in the pathogenesis of liver ischemia and reperfusion injury. Transplantation. 94 (3), 211-217 (2012).
  33. Pan, G. Z., et al. Bone marrow mesenchymal stem cells ameliorate hepatic ischemia/reperfusion injuries via inactivation of the mek/erk signaling pathway in rats. J. Surg. Res. 178 (2), 935-948 (2012).
  34. Darouiche, R. O., et al. Chlorhexidine-alcohol versus povidone-iodine for surgical-site antisepsis. New. Engl. J. Med. 362 (1), 18-26 (2010).
  35. Fukui, A., Inada, Y., Murata, K., Tamai, S. Plasmatic imbibition" in the rabbit flow-through venus flap, using horseradish peroxidase and fluoroscein. J. Reconstr. Mirosurg. 11, 255-264 (1995).
  36. Dunn, R. M., Mancoll, J. Flap models in the rat: A review and and reappraisal. Plast. Reconstr. Surg. 90 (2), 319-328 (1992).
  37. Taylor, G., Minabe, T. The angiosomes of the mammals and other vertebrates. Plast. Reconstr. Surg. 89 (2), 181-215 (1992).
  38. Taylor, G., Corlett, R., Boyd, J. The versatile deep inferior epigastric (inferior rectus abdominis) flap. Brit. J. Plast. Surg. 37 (3), 330-350 (1984).
  39. Taylor, G., Corlett, R., Boyd, J. The extended deep inferior epigastric flap: A clinical technique. Plast. Reconstr. Surg. 72 (6), 751-765 (1983).
  40. Tai, Y., Hasegawa, H. A tranverse abdominal flap for reconstruction after radical operations for recurrent breast cancer. Plast. Reconstr. Surg. 53 (1), 52-54 (1974).
  41. Scheflan, M., Dinner, M. I. The transverse abdominal island flap: Part i. Indications, contraindications, results, and complications. Ann. Plast. Surg. 10, 24-35 (1983).
  42. Tindholdt, T. T., Saidian, S., Pripp, A. H., Tonseth, K. A. Monitoring microcirculatory changes in the deep inferior epigastric artery perforator flap with laser doppler perfusion imaging. Ann. Plast. Surg. 67 (2), 139-142 (2011).
  43. Tindholdt, T. T., Saidian, S., Tonseth, K. A. Microcirculatory evaluation of deep inferior epigastric artery perforator flaps with laser doppler perfusion imaging in breast reconstruction. J. Plast. Surg. Hand. Surg. 45 (3), 143-147 (2011).
  44. Booi, D. I., Debats, I. B. J. G., Boeckx, W. D., van der Hulsi, R. R. W. J. A study of perfusion of the distal free-tram flap using laser doppler flowmetry. J. Plast. Reconstr. Aes. 61, 282-288 (2008).
  45. Hallock, G. G. Physiological studies using laser doppler flowmetry to compare blood flow to the zones of the free tram flap. Ann. Plast .Surg. 47 (3), 229-233 (2001).
  46. Collin, T. Image j for microscopy. Biotechniques. Suppl. 43 (1), 25-30 (2007).
  47. Hallock, G., Rice, D. Physiologic superiority of the anatomic dominant pedicle of the tram flap in a rat model. Plast. Reconstr. Surg. 96, 111-118 (1995).
  48. Ozmen, S., Ayhan, S., Demir, Y., Siemionow, M., Atabay, K. Impact of gradual blood flow increase on ischaemia-reperfusion injury in the rat cremaster microcirculation model. J. Plast. Reconstr. Aes. 61 (8), 939-948 (2008).
  49. Rucker, M., Vollmar, B., Roesken, F., Spitzer, W. J., Menger, M. D. Microvascular transfer-related abrogation of capillary flow motion in critically reperfused composite flaps. Brit. J. Plast Surg. 55 (2), 129-135 (2002).
  50. Rucker, M., Kadirogullari, B., Vollmar, B., Spitzer, W. J., Menger, M. D. Improvement of nutritive perfusion after free tissue transfer by local heat shock-priming-induced preservation of capillary flowmotion. J. Surg. Res. 123, 102-108 (2005).
  51. Rucker, M., et al. New model for in vivo quantification of microvascular embolization, thrombus formation, and recanalization in composite flaps. J. Surg. Res. 108 (1), 129-137 (2002).
  52. Wang, W. Z., Baynosa, R. C., Zamboni, W. A. Update on ischemia-reperfusion injury for the plastic surgeon. Plast. Reconstr. Surg. 128 (6), 685e-692e (2011).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Etiketler

Lazer Doppler GörüntülemeImage J AnaliziTravmasız KlemplerFlap Perfüzyon DeğerlendirmesiCilt Sağkalım ÖlçümüCerrahi Prosedür
Miyokutanöz İskemi Reperfüzyon Hasarı Rat Modeli: in situ Enine Rektus abdominis kas deri Flap
Bize Ulaşın
Kütüphaneye Öner

Gizlilik

Kullanım Koşulları

Politikalar

Telif Hakkı © 2026 MyJoVE Corporation. Tüm hakları saklıdır.