Yöntem makalesi

Sanal Gerçeklik Çevre gezinme Farelerde iki foton Kalsiyum Görüntüleme

DOI:

10.3791/50885

⸱

20 Şubat 2014

 ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Friedrich Miescher Institute for Biomedical Research, 2Max Planck Institute of Neurobiology, 3Department of Biosystems Science and Engineering, ETH Zurich

* These authors contributed equally

Bu makalede

Özet

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Burada bir sanal gerçeklik ortamında davranış sırasında fare korteksin iki foton görüntüleme katılan deneysel işlemleri.

Özet

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bu davranış 1-6 işlemleri sırasında genetik olarak tanımlanmış olan hücrelerin faaliyetinin kronik ölçümü için izin verdiği Son yıllarda, iki foton görüntüleme, nörolojik çok değerli bir araç haline gelmiştir. Burada hayvan bir sanal gerçeklik ortamı gider iken fare kortekste iki foton görüntüleme gerçekleştirmek için yöntemleri tarif. Biz bir aydınlık sanal ortamda bir davrandığını hayvan görüntüleme için anahtar deneysel prosedürlerin yönlerine odaklanmak. Burada adres vardır, bu deney düzeneği ortaya çıkan temel sorunları:, beyin hareket ilgili eserler minimize sanal gerçeklik projeksiyon sistemi ışık sızıntısı en aza indirmek, ve lazer kaynaklı doku hasarı en aza indirmek. Biz de sanal gerçeklik ortamı kontrol etmek ve öğrenci izleme yapmak için örnek yazılım sağlarlar. Bu işlemler ve kaynak ile bu fareler davranmak kullanılmak için geleneksel bir iki-fotonlu mikroskop dönüştürmek mümkün olmalıdır.

Giriş

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

(Genetik GCaMP5 7 ya da R-geco 8 ya da OGB veya Fluo4 gibi sentetik boyalar gibi kodlanmış) kalsiyum göstergeleri iki foton görüntüleme farelere 1-6 davranmak nöronal etkinliği ölçmek için bir güçlü bir yöntem olarak ortaya çıkmıştır. Yaklaşık 800 um beyin yüzeyinden 9,10 altına kadar yakın bir hareket potansiyeli çözünürlükte hücre yüzlerce aktivitesinin aynı anda ölçüm sağlar. Ayrıca, genetik olarak kodlanmış kalsiyum göstergeleri (GeCIS) kullanılarak nöron faaliyeti kronik 5,11,12 ölçülebilir ve genetik olarak tanımlanmış hücre tiplerinde 13. Hep birlikte, bu yöntem, in vivo nöronal hesaplama çalışmada yeni olanaklar bir çok açmak zamansal ve uzamsal çözünürlük derecesi sağlar.

Cerrahi müdahale görüntüleme için fare beyin ortaya çıkarmak ve etiketlemek için gereklidir. Hücreler tipik olarak, bir rekombinant adeno-ilişkili Vir kullanılarak transfekte edilir GECI teslimat ve bir kafatası pencere için bize (AAV) sistemi beyne optik erişmek için enjeksiyon sitesi üzerinden implante edilir. Bir kafa çubuğu daha sonra iki foton mikroskop altında kafa sabitleme için kafatasına bağlı. Uyanık görüntüleme ile sorunların çoğu hazırlanmasında istikrarsızlıklar kaynaklanır olarak bu adımların tasarım ve uygulama önemlidir. İdeal olarak burada tarif edilen ameliyat sonrası birkaç aya kadar kronik görüntüleme için izin vermelidir.

Iki foton görüntüleme sırasında görsel olarak yönlendirilen davranışını etkinleştirmek için, kafa sabit fare bir sanal gerçeklik ortamı gezinmek için kullanabileceğiniz bir hava destekli küresel koşu bandı, oturur. Yürüme bandı üzerinde fare hareket fare 14,15 çevreleyen toroidal bir ekran üzerinde görüntülenen sanal ortamda hareketine bağlıdır. Bu tür hareketlilik, görsel uyaran ve gözbebeği konumunda gibi davranışsal değişkenler 6 kaydedilebilir.

t "> bir sanal gerçeklik ortamı keşfetmek farelerde kronik iki foton görüntüleme dahil prosedürlerini açıklar hitaben önemli noktalar vardır:. hareket eserler azalma, hafif sızıntı azaltılması, eş zamanlı olarak kaydedilen hücrelerinin sayısının maksimizasyonu ve minimizasyonu fotoğraf hasar. Ayrıca hava destekli koşu bandı, öğrenci takibi, ve sanal gerçeklik ortamı kurma hakkında ayrıntılı bilgi vermektedir. Burada anlatılan prosedürler davranışsal paradigmalar bir potansiyel çeşitli kafa sabit farelerde floresan etiketli hücre popülasyonlarının görüntüleme için kullanılabilir .

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bütün hayvan prosedürleri onaylanmış ve Kanton Basel-Stadt Veteriner Bölümü kurallarına uygun olarak yürütülmüştür.

1.. Donanım ve Yazılım Kurulumu

  1. İki foton mikroskop tarama kurulumu:
    1. Bir aydınlatma kaynağı (darbe genişliği <120 FSEC) gibi darbeli bir kızılötesi lazer kullanın.
    2. . 8 veya 12 kHz rezonans tarayıcı ve standart bir galvanometre Not oluşan bir tarama kafa kullanın: Bu 750 x 400 piksel çözünürlükte 40 veya 60 Hz kare hızlarını mümkün kılar. Yüksek kare hızı, beyin hareketini kaynaklı görüntü bozulmaları en aza indirmek için önemlidir. Ayrıca, hızlı rezonans tarama daha yüksek bir sinyal verim sonuçları ve azaltır 16 ve fototoksisite photobleaching.
    3. Birden fazla derinliklerde acquire zaman serpiştirmeli görüntüleri sırayla bir Piezo-elektrik yüksek hız z-step kullanın Not:. Bu isteğe ve kare hızı pahasına veri verimi artırmak için kullanılır.
    4. Am kullanındokuya lazer maruziyeti azaltmak için ekanik blanker. Rezonant tarayıcının genliği bağlı olarak boşaltıcısı genişliğini ayarlamak Not:. Nedeniyle bir rezonant tarayıcının tarama yolunun sinüzoidal doğasına, lazer ışını tarama dönüş noktalarında nispeten yavaş hareket eder. Lazere maruz kalmanın büyük olduğu, bu dönüş noktalarında dokusunun hasar görmesini önlemek için, mekanik blanker lazer ışını tarama durur ve boru lens arasında odak düzlemi sokulur.
    5. . Veri toplama için bir alan programlanabilir geçit dizisi (FPGA) Not ile birlikte yüksek hızlı sayısallaştırıcıya (800 MHz) kullanın: FPGA yüksek geçiren filtreler ve piksel içine PMT sinyal kutuları. Bir band geçiren filtre PMT amplifikatör sonucu FPGA ve etkili low-pass filtre üzerinde yüksek geçiren filtre kombinasyonu kabaca lazer (80 MHz) ve tekrarlama oranı etrafında merkezli. Örnek FPGA kod, ek olarak sağlanır.
  2. Dombeck ve meslektaşları tasarıma dayanan hava destekli koşu bandı kurulum 2
    1. En az 10 mm iç çapa sahip bir hava besleme tüpü kullanılarak bir hava besleme hattına topu tutucu bağlayın. Top tutucu hava besleme girişinin kesite üst düzeye çıkarmak ve ana hava kaynağı ve top tutucu Not arasında boru bol miktarda yer:. Artan kesiti ve hava besleme boru artan uzunlukta ses oluşumunu azaltır.
    2. Özel tasarlanmış ve 3D baskılı top tutucu bir polistiren köpük topu (20 cm çapında) yerleştirin.
    3. Davranışsal paradigma sadece ileri (ve geri) hareket gerektiriyorsa, topun tarafında bir iğne (örneğin 19 G derialtı iğne) ekleyerek yatay (pitch) ekseni topun hareketini kısıtlamak Not:. Genellikle hayvanlar uyum Bu azaltılmış dönme paradigmada çok daha hızlı kurulum.
    4. Bir veya iki optik bilgisayar fareleri kullanarak topu takip hareketisırasıyla, yaklaşık iki hareket veya her üç eksen tespit etmek Not:. bilgisayar fareleri ideal görüntüleme ile en az müdahale için bir kızılötesi diyot ile çalışmalıdır.
  3. Sanal gerçeklik ortamında kurulum
    1. Sanal gerçeklik ortamı hazırlayın Not:. Panda3D, serbestçe kullanılabilir bir oyun motoru dayalı bir örnek ortamı, ek olarak verilmiştir. Sanal ortamda nesneleri Wings3D, bir açık kaynak 3D modeler kullanılarak üretilir. Örnek program bir veri toplama kartı konum bilgilerini okur ve sanal ortamda hareketin içine bu çevirir. Kod aynı zamanda toroidal ekrana yansıtılan edilmesi için gerekli ortam doğrusal olmayan dönüşümü gerçekleştirir. Toroidal Ekranın ayrıntılı yapısı başka 14,17 tarif edilmiştir.
    2. Sanal ortam göstermek için LED projektörleri veya LED aydınlatmalı bilgisayar ekranları kullanın. Bir yolluk CIR entegre. görüntüleme Not sırasında LED'ler hızlı titremesi için CUIT: görsel uyarılma sırasında iki foton görüntüleme An doğasında sorun hedefi koruyucu azaltılabilir görsel uyarı sistemi kaynaklı ışık sızıntısı olduğunu. Görüntülemenin sırasında görsel uyarı için kullanılan LED arenalarda ile yapılır Ancak, görsel uyarı sistemi ışık sızıntısı tamamen, (veri alınan değil) rezonans tarayıcı dönüş noktalarına projektörün ışık çıkışını eşitleyerek kaldırılmış olabilir Drosophila 18. Bu görsel uyarı ve veri toplama bir etkili yüksek hızlı arda (bakınız Şekil 2) ile sonuçlanır. Titrek frekans (24 kHz) titreşen artık hayvan tarafından algılandığı yukarıda, titreme füzyon eşiğinin üzerinde büyüklükte emir. Ticari bir LED projektöre Bu modifikasyon bir elektronik devre diyagramıdır, Şekil 3 'de gösterilmiştir.
  4. Delikanlıil izleme
    1. Öğrenci konum takibi için bir CMOS tabanlı bir video kamera (30 fps) kullanın. Kamera kızılötesi bir engelleme filtresi içermediğinden emin olun Not:. Öğrenci nedeniyle gözünden çıkan iki foton uyarma lazer başıboş ışık kayıtları sırasında yüksek kontrast de görülebilir. Öğrenci konumu ve çapı Sakatani ve Isa 19 tasarıma dayanan özel programlanmış yazılımı kullanarak gerçek zamanlı olarak ayıklanır.

2. Genetik Kalsiyum Göstergesi ve Pencere İmplant Enjeksiyon

Daha önce Aşağıdaki ilavelerle anlatıldığı gibi bir kalsiyum göstergesi 20 ve kafatası pencere 21'in implantasyonu enjeksiyonu gerçekleştirilir:

  1. Virüs çözeltisi ile geri dolduruldu ve bir basınç enjeksiyon sistemine bağlı bir cam enjeksiyon pipeti kullanarak, ilgi konusu virüs bölgesine enjekte edilir. Pipet bağlı basıncını ayarlamak iç-çapı, genellikle yakl. 70-140 mbar, 1-2 dakikalık bir süre boyunca virüs solüsyonu yaklaşık 100 nl enjekte etmek. Düşük frekanslı (2 Hz 0,05 saniye darbeler) iletilen düşük hacimli enjeksiyon darbeler enjeksiyon sırasında pipet boyunca virüsün taşmasını önlemek için kullanılmalıdır Not:. Enjeksiyon hacmi izlemek amacıyla, küçük bir pipet ile işaretlenebilir , stereo bir mikroskop altında eşit aralıklı, belli uzunlukta (örneğin 0.5 mm). Çizgiler arasında menisk hacmi daha sonra, enjekte edilen hacmin tahmin etmek için de kullanılabilir.
  2. Birkaç hafta sonra enjeksiyon araçlan, bu, yaklaşık 500 um bir çapa sahip yoğun işaretli hücrelerin bir bolus ile sonuçlanmalıdır. Ilgilenilen bölgesinde GECI ifade etkinliği Geci ve promoter kombinasyonunun seçimi, hem de bulaşıcı titresi ve kullanılan rekombinant AAV serotip bağlıdır Not:. Temsili bir örnek olarak, enjeksiyon ile AAV2/1-EF1α-GCaMP5 viral tittatmin edici ifadesinde bir fare sonuç primer görsel korteks içine 8 x 10 12 GC / ml er az iki hafta enjeksiyon (Şekil 1) sonrası.
  3. Kafa çubuğu fare görüş alanını engellememelidir, ama davranışı sırasında sabit görüntüleme için yetecek kadar sert olmalıdır. Bu genellikle Baş çubuğunun her iki tarafında iki noktadan bağlanmaktadır (Şekil 1 'e bakın). Sıkıca kafatası kafa çubuğunu takmak için, kafa çubuğu eklenecektir maruz kafatası alanını maksimize etmek ve kuru olduğundan emin olun. Buna ek olarak, bir neşter ya da bir şırınga kullanılarak, bu şekilde yapıştırılması için yüzey alanını artırmak yüzeysel olukları oluşturmak için kafatası çizik. Diş çimento ile baş bar takmadan önce siyanoakrilat doku yapıştırıcısı ile kemik örtün.

3. Deneysel Prosedür

  1. Virüs enjeksiyonunu takiben iki üç hafta, epi altında netlik ve ifade için kafa penceresi implant kontrolfloresan aydınlatma. Yüzeysel kan damarlarının açıkça görülebilir ve keskin tanımlanmış sınırlar pencere implant (bkz. Şekil 1) görüntüleme için uygun olduğunu iyi bir göstergesidir.
  2. Ölçün ve örnek 50 mW altındaki bir değere lazer gücü ayarlar.
  3. Küresel koşu bandı için hava akışına açın.
  4. Mikroskop altında kafası tespit için, kısaca stresi azaltmak için izofluran ile hayvan uyutmak. Izofluran anestezi kabın içine hayvan koyun ve hayvan durur (yaklaşık 10 sn) hareketli kadar bekleyin. Hayvan çıkarın ve hemen baş mikroskop altında bunu düzeltmek.
  5. Hala hayvana erişim sağlamak için, hayvana mümkün olduğu kadar yakın bir görsel görüntüleme sistemi yerleştirin. Daha az görsel iletişim hayvan deneyi ile, daha az hayvan Deneyin ilk aşamasında olacak vurgulamıştır.
  6. Kafa penceresi implant toz ve kir serbest olduğundan emin olun. Su ile temizleyinizGerekirse.
  7. Kranial pencere ve su daldırma hedefi arasında daldırma ortamı olarak açık ultrason jeli uygulayın. Bu durum, su buharlaşma veya sızıntı yavaş görüntü bozulması sorunlarını çözer ve suyu tutmak için kafa çubuğunda bir koni monte etmek ihtiyacını hafifletir Not:. Santrifüj jel önce tüm hava kabarcıklarını çıkarmak ve herhangi bir hava yaratmak için değil dikkat çekmek için kullanım Jelin uygulaması sırasında kabarcıklar. Hava kabarcıkları ciddi görüntü kalitesini düşürebilir.
  8. Işık koruma için objektif ve baş bar etrafında siyah bir parça bant sarın.
  9. Nihai konumuna sanal ortamda arenaya taşımak ve öğrenci takibi için video kamera ayarlayın.
  10. Deney sırasında kullanılan tarama genlik maç için lazer Blanker ayarlayın.
  11. Veri kayıt başlayın.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bir Geci ile etiketlenmiş, hücre popülasyonlarının iki foton kalsiyum görüntülemede görüntü kalitesi, büyük ölçüde kafa penceresi implantın kalitesine bağlıdır. Virüs enjeksiyondan kranial penceresini aşağıdaki iki hafta netlik için kontrol edilmelidir. Herhangi bir granülasyon dokusu veya kemik yeniden büyümesini görebilir (Şekil 1A) olmalıdır. Ayrıca, yüzeysel kan damarlarının model değişmeden kalmalıdır ve damar sınırlarının keskin tanımlanmalıdır. Aynı zamanda, GECI sentezleme de kontrol edilebilir....

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Davranış iki foton görüntüleme başarısı için en önemli iki yolla preparatın stabilitesi olan:

  1. Gün sonra pencere implantasyon boyunca, doku iltihaplı tepkiler granülasyon doku ve engel ya da görüntülemesi önleyecektir kıkırdak oluşumunun geliştirilmesi yol açabilir.
  2. Deney sırasında beyin sinirsel aktivite ile ilgili floresan sinyalini bozarak dan hareket eserler önlemek için yeterince kararlı olmak zorundadır.

Kranial pencere implantasyon cerrahisi çabuk beyne müm...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Yazarlar, hiçbir rakip mali çıkarlarını olmadığını beyan ederim.

Teşekkürler

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bu çalışma Biyomedikal Araştırma Friedrich Miescher Enstitüsü, Max Planck Derneği ve İnsan Frontiers Bilim Programı tarafından desteklenmiştir.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
Kapak kaymaları (çap = 3-5 mm)Menzelpencere implantı
InSight DeepSee lazerSpectra-Physicsmikroskobu
12 kHz Rezonans tarayıcıCambridge TechnologyG1-003-30026mikroskop
GalvometerCambridge TechnologyG6215Hmikroskop
SayısallaştırıcıNational InstrumentsNI 5772mikroskop
FPGAUlusal AletlerPXIe 7965Rmikroskop
Edinme kartıUlusal AletlerPCIe 6363mikroskop
Emisyon filtresi 525/50SemrockFF03-525/50-25mikroskop
Piezo-elektrik z-sürücüPhysikinstrumenteP-726.1CDmikroskop
Piezo-elektrik için Kontrol Cihazı sürücüPhysikinstrumenteE665 LVPZTmikroskop
Objektif 16X, 0.8NANikonCFI75mikroskop
Akım amplifikatörüFemtoDHPCA-100mikroskop
Fotoçoğaltıcı tüpHamamatsumikroskop
IR filtresiz USB KameraGörüntüleme KaynağıDMK22BUC03öğrenci takibi
Objektif 50 mmImagingSourceM5018-MPgöz bebeği takibi
Makro adaptör halkalarıImagingSourceLAexSetgöz bebeği takibi
Optik bilgisayar faresiLogitechG500hareket takibi
Strafor top 20 cmörneğin idee-shop.de08797.00.15sanal ortam
LED projektörSamsungSP-F10Msanal çevre
Edinme kartıNational InstrumentsNI 6009sanal ortam
Panda3D oyun motoruwww.panda3d.orgsanal ortam
Python için Numpywww.scipy.orgsanal ortam
Scipy Pythonwww.scipy.orgsanal ortam
NI-DAQmx sürücüsüNational Instrumentswww.ni.comsanal ortam
Ultrason jeliDahlhausen5701.0342.10görüntüleme
kitaplığı kitaplığı

Kaynaklar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Helmchen, F., Fee, M. S., Tank, D. W., Denk, W. A Miniature Head-Mounted Two-Photon MicroscopeHigh-Resolution Brain Imaging in Freely Moving Animals. Neuron. 31 (6), 903-912 (2001).
  2. Dombeck, D. A., Khabbaz, A. N., Collman, F., Adelman, T. L., Tank, D. W. Imaging large-scale neural activity with cellular resolution in awake, mobile mice. Neuron. 56, 43-57 (2007).
  3. Dombeck, D. A., Harvey, C. D., Tian, L., Looger, L. L., Tank, D. W. Functional imaging of hippocampal place cells at cellular resolution during virtual navigation. Nat. Neurosci. 13 (11), 1433-1440 (2010).
  4. Harvey, C. D., Coen, P., Tank, D. W. Choice-specific sequences in parietal cortex during a virtual-navigation decision task. Nature. 484 (7395), 62-68 (2012).
  5. Huber, D., Gutnisky, D. A. Multiple dynamic representations in the motor cortex during sensorimotor learning. Nature. 484 (7395), 473-478 (2012).
  6. Keller, G. B., Bonhoeffer, T., Hübener, M. Sensorimotor mismatch signals in primary visual cortex of the behaving mouse. Neuron. 74 (5), 809-815 (2012).
  7. Akerboom, J., Chen, T. -W. Optimization of a GCaMP Calcium Indicator for Neural Activity Imaging. J. Neurosci. 32 (40), 13819-13840 (2012).
  8. Zhao, Y., Araki, S. An expanded palette of genetically encoded Ca2+ indicators. Science. 333 (6051), 1888-1891 (2011).
  9. Mittmann, W., Wallace, D. J. Two-photon calcium imaging of evoked activity from L5 somatosensory neurons in vivo. Nat. Neurosci. 14 (8), 1089-1893 (2011).
  10. Katona, G., Szalay, G. Fast two-photon in vivo imaging with three-dimensional random-access scanning in large tissue volumes. Nat. Methods. 9 (2), 201-208 (2012).
  11. Mank, M., Santos, A. F. A genetically encoded calcium indicator for chronic in vivo two-photon imaging. Nat. Methods. 5 (9), 805-811 (2008).
  12. Margolis, D. J., Lütcke, H. Reorganization of cortical population activity imaged throughout long-term sensory deprivation. Nat. Neurosci. 15 (11), 1539-1546 (2012).
  13. Zariwala, H. A., Borghuis, B. G. A Cre-dependent GCaMP3 reporter mouse for neuronal imaging in vivo. J. Neurosci. 32 (9), 3131-3141 (2012).
  14. Harvey, C. D., Collman, F., Dombeck, D. A., Tank, D. W. Intracellular dynamics of hippocampal place cells during virtual navigation. Nature. 461 (7266), 941-946 (2009).
  15. Hölscher, C., Schnee, A., Dahmen, H., Setia, L., Mallot, H. A. Rats are able to navigate in virtual environments. J. Exp. Biol. 208, 561-5519 (2005).
  16. Borlinghaus, R. T. MRT letter: high speed scanning has the potential to increase fluorescence yield and to reduce photobleaching). Microsc. Res. Tech. 69 (9), 689-692 (2006).
  17. Reiff, D. F., Plett, J., Mank, M., Griesbeck, O., Borst, A. Virtual Reality for Mice, mousevr.blogspot.com. Nat. Neurosci. 13, 973-978 (2010).
  18. Sakatani, T., Isa, T. Quantitative analysis of spontaneous saccade-like rapid eye movements in C57BL/6 mice. Neurosci. Res. 58, 324-331 (2007).
  19. Golshani, P., Portera-Cailliau, C. In vivo 2-photon calcium imaging in layer 2/3 of mice. J. Vis. Exp. (13), (2008).
  20. Holtmaat, A., Bonhoeffer, T. Long-term, high-resolution imaging in the mouse neocortex through a chronic cranial window. Nat. Protoc. 4 (8), 1128-1144 (2009).
  21. Schmidt-Hieber, C., Häusser, M. Cellular mechanisms of spatial navigation in the medial entorhinal cortex. Nat. Neurosci. 16 (3), 325-331 (2013).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya şekillerini yeniden kullanmak için izin iste

İzin iste

Etiketler

ki Fotonlu G r nt lemeFare KorteksiKraniyal PencereHava Destekli Ko u BandLED Projekt rPupil zlemeLazer EngelleyiciRezonans Taray c

İlgili makaleler