Yöntem makalesi

Sinir Kayıt Elekrtotların Sistematik Elektrokimyasal ve Elektrofizyolojik Değerlendirme için Bir Yöntem

DOI:

10.3791/51084

⸱

3 Mart 2014

 ,  ,  , 
1School of Psychological Science, La Trobe University, 2Intelligent Polymer Research Institute, University of Wollongong, 3ARC Centre of Excellence for Electromaterials Science, 4Health Innovations Research Institute, College of Science, Engineering, and Health, RMIT University

Bu makalede

Özet

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Farklı elektrot kaplamalar elektrokimyasal, kimyasal ve mekanik özellikleri değişiklikler yoluyla sinir kayıt performansını etkileyebilir. In vitro elektrot karşılaştırması, ancak in vivo yanıt karşılaştırılması tipik olarak elektrot / nöron mesafede ve hayvanlar arasında farklılıklar ile komplike nispeten basittir. Bu makalede, nöral kayıt elektrotları karşılaştırmak için sağlam bir yöntem sağlar.

Özet

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Yeni malzemeler ve nöral implantlar için tasarımlar genellikle performansı bir gösteri ile ancak diğer implant özelliklerine değinmeden, ayrı ayrı test edilir. Bu, özel bir uygulama için optimum ve en önemli performans parametreleri dayalı yeni malzemelerin geliştirilmesi gibi belirli bir implant rasyonel bir seçim engellemektedir. Bu makalede, in vitro ve nöral kayıt elektrot vivo test için bir protokol geliştirir. Elektrokimyasal ve elektrofizyolojik test için önerilen parametreler tartışılan önemli adımlar ve olası sorunlar ile belgelenmiştir. Bu yöntem ortadan kaldırır ya da basit in vivo test paradigmaların, elektrot / nöron mesafe ve hayvan modelleri arasında özellikle varyasyonları mevcut birçok sistematik hataların etkisini azaltır. Sonuç, in vitro ve bu empedansına si olarak vivo tepkiler, kritik arasında güçlü bir korelasyongnal-gürültü oranı. Bu protokol, kolayca diğer elektrot malzeme ve tasarımları test etmek için uyarlanabilir. In vitro teknikleri daha önemli performans göstergelerini belirlemek için başka tahribatsız yöntemle açılabilir. Işitsel yolu cerrahi yaklaşım için kullanılan prensipler diğer nöral bölgeler veya dokuya değiştirilebilir.

Giriş

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Nöral protez ve implantları, Parkinson hastalığı, epilepsi ve duyu kaybı, 1,2 bozuklukların tedavisi kontrol araştırmaları için artan bir biçimde kullanılmaktadır. Kimyasal ve beynin elektrik bileşimi her ikisi de ölçülmesi ve / veya kontrol eden tüm sinir implantlar için temel oluşturur. Ancak, bu nöral doku yan etkileri 3 azaltmak için anormal halde sadece bir tedavi uygulanması önemlidir. Örneğin, epilepsi tedavisi için derin beyin uyarıcıları sadece nöbet sırasında beyindeki bir elektrik darbe uygulamak gerekir. Bazı yan etkiler distoni, bellek, oryantasyon bozukluğu, bilişsel işlev bozukluğu, kaynaklı halüsinasyonlar, depresyon ya da anti-depresyon 3,4 kaybı olabilir. Birçok cihaz, kapalı bir döngü sistemi elektriksel aktivite kayıt ve anormal bir durum tespit edildiğinde uyarımı tetiklemek için bu nedenle gereklidir. Kayıt elektrotları da pro kontrol etmek için kullanılırsthetic cihazlar. Bu en doğru tetikleme ve cihaz kontrolü sağlamak için mümkün olan en yüksek sinyal-gürültü oranına sahip hedef sinir aktivite kayıt için çok önemlidir. Daha güvenilir veri daha az gerekli olan deneklerde elde elde edilebilir, olarak büyük bir sinyal-gürültü oranı, aynı zamanda araştırma uygulamaları için yüksek ölçüde istenebilecektir. Bu da sinir uyarımı ve kayıt ile ilgili mekanizmaların ve yolların büyük bir anlayış sağlayacaktır.

Bir sinir implant beyin içine yerleştirildikten sonra, bir bağışıklık tepkisi, 5,6 tetiklenir. Cevabın zaman süreci genellikle her biri farklı biyolojik süreçlerin 7 kapsayan akut ve kronik fazlar ayrılmıştır. Immün yanıt gibi implant malzemeler 8'in bir glial yara izi veya kimyasal bozulma kapsülleme ile hedef nöronlardan elektrotların izolasyonu olarak implantın performansı üzerinde dramatik etkilere sahip olabilir.Bu bir kayıt elektrot sinyal-gürültü oranı ve bir uyarıcı elektrot güç çıkışı, ve başarısızlık 9 elektrot kurşun azaltabilir. Implant tasarımı ve malzemelerin dikkatli seçimi implant ömrü boyunca başarısızlığı önlemek için gereklidir.

Farklı malzemeler ve implant tasarımı çok sinir kayıt için sinyal-gürültü oranı ve implant kararlılığını artırmak için son zamanlarda geliştirilmiştir. Elektrot malzemeler platin, iridyum, tungsten, iridyum oksit, tantalum oksit, grafen, karbon nanotupler, iletken polimerler katkılı ve daha yakın zamanda hidrojeller dahil ettik. Yüzey test malzemeleri de silikon, silikon oksit, silikon nitrit, ipek, Teflon, poliimid, ve silikon içerir. Çeşitli değişiklikler, aynı zamanda, elektrot elektrokimyasal, plazma ve optik teknikleri kullanarak laminin, nörotrofinler, ya da kendi kendini monte tek katmanlar ve kaplamalar kullanılarak tedavi olarak, araştırılmıştır. İmplant tasarımgenellikle bir izolasyon probunun ucu ya da elektrotlar delici veya korteks yüzey implantlar için bir 2-boyutlu bir dizide bir gövdenin kenarı boyunca veya elektrotlar ile 3 boyutlu -, 2 - s 1 olabilir. Ne olursa olsun elektrot tasarım veya malzeme, önceki literatür genellikle diğer implant yapıların referans olmadan yeni implantın performansını göstermiştir. Bu özelliklerinin sistematik bir değerlendirmesini engeller.

Bu protokol, analitik ve elektrofizyolojik teknikler yolu ile bir dizi farklı bir elektrot malzemeleri karşılaştırmak için bir yöntem sağlar. Polimer kaplama (polipirol (altı primer Ppy) ve poli-3 ,4-etilendioksitiyofen (PEDOT) sülfat ile katkılı (SO 4) ya da para-toluen sülfonat (PTS)) ve 4 iletken 4 farklı katkılı kıyasla yakın zamanda yayınlanan bir makale dayanmaktadır Farklı kaplama kalınlığı 10. Bu makalede, bir 45 saniye birikim zamanla bir malzeme, PEDOT-PTS bulunduküçük arka plan gürültü ile ve bu parametreler elektrot empedansı bağlı olduğu en yüksek sinyal-gürültü oranı ve başak sayısı vardı. PEDOT-PTS de diğer katkılı iletken polimerlerin ve çıplak iridyum elektrotlara kıyasla üstün akut biyo görüntülenir. Protokol kritik parametreler belirlenmiştir ve daha fazla sinir kayıt elektrotları performansını artırmak için kullanılmak üzere sinyal-gürültü oranı ve stabilite kontrol sağlar.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Protokol La Trobe Üniversitesi'nden (09-28P) ve RMIT Üniversitesi Hayvan Etik komite (1315) tarafından onaylanmıştır.

1.. Elektrot hazırlanması ve ön in vitro Test

  1. Elektrot kaplama biriktirme çözümler hazırlayın; örnek olarak 10 mM 3,4-etilendioksitiyofen (EDOT) ve 0.1 M sodyum para-toluen sülfonat (Na 2 PTS) poli-3 ,4-etilendioksitiyofen-PTS (PEDOT-PTS) oluşturur.
  2. Bir potansiyostatla için elektrot dizisi bağlayın.
  3. Dikkatle çökeltme çözeltisinin içine elektrot dizisi yerleştirin ve yerine kelepçe.
  4. Çökeltme çözeltisinin içine bir platin örgü karşı elektrot ve Ag / AgCl referans elektrot yerleştirin ve bir potansiyostatla bağlanın.
  5. İstenilen elektrotların üzerine potansiyostat, mevduat kaplamalar kullanma. Çökelme koşulları (potansiyel, akım ve zaman) arzu edilen kaplamalar bağlı olarak değişir. PEDOT-PTS kaplamalar için, uygulanan bir pote15, 30, 45, veya 60 saniye boyunca 1 V ntial kullanılmıştır. Dört elektrot dizisinde bir şaşırtmalı bir konfigürasyonla, kaplamanın (Şekil 1) ile kaplanmalıdır.
  6. Çökeltme çözeltisinden elektrot dizisi çıkarın ve yavaşça iyonu giderilmiş su ile durulama.
  7. Arzu edildiği gibi başka bir malzeme ile kaplama prosedürü tekrarlayın.
  8. In vitro test çözeltisi (iyonu giderilmiş su içinde 0.3 M di-sodyum fosfat (Na 2 HPO 4)) hazırlayın.
  9. Bir potansiyostatla için elektrot dizisi bağlayın.
  10. Dikkatle test çözeltisi içine elektrot dizisi yerleştirin ve yerine kelepçe.
  11. Test çözeltisi içine bir platin örgü karşı elektrot ve Ag / AgCl referans elektrot yerleştirin ve bir potansiyostatla bağlanın.
  12. Potansiyostatı ile, sıralı elektrokimyasal empedans spektroskopisi (EIS) gerçekleştirmek ve voltametri (1 çevrim, potansiyel aralığı 0 (potansiyel 0 V, genlik 10 mV, frekans aralığı 10-100,000 Hz ofset)0,8 V -0.8 için, tarama hızı 100 mV / tüm elektrotlar üzerinde sn.) Denenmemiş elektrotlar açık devre potansiyelinde tutulur ve 1 saniyelik bir sessizlik süresi her testte arasında kullanılır. Hepsi 32 elektrotlar 1 saat tam olarak test oturumu için çözeltisi ile temas içindedir.
  13. Test çözeltisinden elektrot dizisi çıkarın ve yavaşça, iyonu giderilmiş su ile durulama.
  14. Optik mikroskopi gibi herhangi bir başka arzu edilen analizler yapın.
  15. Elektrot yüzeylerinin hasar ve bozulmasını önlemek için kuru bir koruyucu kap saklayın sondalar.

2. Elektrot İmplantasyon

  1. Sıçan tartılır.
  2. (Damıtılmış su içinde a / h, 1.3 g / kg ip% 20) nonrecovery anestezi için üretan enjekte edilir.
  3. Bir ayak tutam çekilme refleksi için test tarafından anestezi başlangıcını sağlamak. Anestezi yeterli değilse, üretan ek doz (0.3 g / kg ip) verilmesi gerekir.
  4. Göz yağlayıcı, ve sonra An başını tıraşsimal.
  5. Sıcakkanlı bir plaka üzerinde yüzükoyun pozisyonda hayvan koyun ve bir rektal prob (37.5 ° C) takın.
  6. Stereotaksik çerçeve içinde yaklaşık olarak beklenen son pozisyona bir kulak çubuğu yerleştirin ve dış akustik meatus kulak çubuğu yerleştirmek için hayvan ayarlayın.
  7. Kontralateral dış akustik meatus içine ikinci kulak çubuğunu hizalayın. Diş tutucu ile hizalamak için kulak çubukları hayvan Shift.
  8. Rat-diş forseps kullanarak, hayvanın çenesini açmak diş tutucu üzerinde üst kesici dişler kanca ve yerinde burun kelepçe.
  9. Yaklaşık 1 orta hat sağında mm ve 10 mm rostral gelen lambda 10 mm kaudal için, kafa derisinde bir kesik oluşturma.
  10. % 20 hidrojen peroksit çözeltisi ve bir gazlı bez kullanarak parietal ve interparietal kemikleri açığa kesiden cilt ve yanal kas geri çekin, maruz kemik yüzeyini fırçalayın.
  11. Yaklaşık bir delik açın3 mm mümkün lambda ve orta hatta yakın olarak interparietal kemik 2 ve kemik fişi çıkarın. Steril tuzlu su kullanarak, elektrot zarar verebilecek herhangi kemik tozu veya parçalarını çıkarmak için delik yıkayın.
  12. Küt küt makas kullanarak, boynun ense altında incelemek ve bir boşluk oluşturun. , Pamuk bir Ag / AgCl kaplanmış tel tuzlu su ile doyurulması ve daha sonra da bunu boşluğa referans elektrot yerleştirin.
  13. Bir iğne ucu kullanılarak sagital düzlemde dura mater bir kesi yapmak.
  14. Elektrot manipülatör için elektrot dizisi takın ve 19 ° rostro-kaudal açı ile açılış üzerinde kendi konumunu ayarlamak. El ile aşağı doğru colliculus beyin içine elektroda yaklaşık 2 mm yerleştirin.
  15. Sol içi boş kulak çubuğuna hoparlörü takın.
  16. Emin amplifikatör açıktır. Sonra kayıt odasına sızdırmazlık önce hayvan anestezi doğrulayın.

3.In vivo Test

  1. Beyaz gürültü patlamaları, (Gauss dağıtılan gürültü, 1-44 kHz; 10 msn yükselme-düşme zamanı) sunun ve her elektrot üzerindeki etkinliğini izlemek. Patlamaları teslim edilmelidir hangi maksimum hızı bir patlama her 200 msn.
  2. Akustik olarak oluşturulan aktivitesi (elektrot kayıt aktivitesinin sayısı ve pozisyonu elektrot ya da elektrot yerleştirme tasarımı ile değişebilir), her şaft 3 en uzak elektrot kaydedilir kadar motorlu mikro sürücüsü kullanarak, yavaşça elektrot dizisi yerleştirin.
  3. 50 msn beyaz gürültü patlamaları (Gauss dağıtılan gürültü, 1-44 kHz; 10 msn yükselme-düşme zamanı) 300 tekrarları kullanarak akustik uyarma protokolünü uygulayın 70 dB 1 sn tekrarlama oranı, ve (her elektrotta multiunit etkinliklerini kaydetmek 24.4 kHz örnekleme hızı).
  4. Yavaşça th daha uzak elektrot olarak kabaca aynı konumda her elektrot yerleştirmek için elektrot dizisine IC içine başka bir 200 μ m takıne ilk kayıt konumu.
  5. Akustik stimülasyon ve nöral kayıt protokolü tekrarlayın.
  6. 200 μ m adımlarla elektrot dizisi ekleyerek ve tüm elektrotlar en az 3 pozisyon (genel genellikle 8-12 elektrot konumları) gelen akustik tahrik aktivite kaydedilmiş kadar akustik stimülasyon ve nöral kayıt protokolü gerçekleştirerek devam edin.
  7. 200 μ m adımda elektrot dizisi geri çekin ve ilk elektrot dizisi konum elde edilene kadar akustik uyarımı ve nöral kayıt protokolü performans devam etmektedir.
  8. Dikkatlice elle elektrot dizisi çekin.
  9. Sodyum pentobarbitonun aşırı dozda enjekte (Lethobarb; 200 mg / kg ip) hayvan euthanize.
  10. Yavaşça damıtılmış su ile elektrot dizisi yıkayın. Daha sonra kuru bir koruyucu kap içinde depolamak probları elektrot yüzeylerinin hasar ve bozulmasını önlemek için.

4. Vit post-implantasyonro Test

  1. Yavaşça bir kontaminasyonu temizlemek için damıtılmış su ile elektrot dizisi yıkayın.
  2. Bir potansiyostatla için elektrot dizisi bağlayın.
  3. Dikkatle test çözeltisi içine elektrot dizisi yerleştirin ve yerine kelepçe.
  4. Test çözeltisi içine bir platin örgü karşı elektrot ve Ag / AgCl referans elektrot yerleştirin ve potansiyostatla bağlanın.
  5. Potansiyostatı ile, sıralı elektrokimyasal empedans spektroskopisi (EIS) gerçekleştirmek (potansiyel 0 ofset V, genlik 10 mV, frekans aralığı 10-100,000 Hz) ve voltametri (1 çevrim, potansiyel aralığı 0.8 -0.8 V, tarama hızı 100 mV / sn ) Tüm elektrotlar üzerinde. Denenmemiş elektrotlar açık devre potansiyelinde tutulur ve 1 saniyelik bir sessizlik süresi her testte arasında kullanılır. Hepsi 32 elektrotlar 1 saat tam olarak test oturumu için çözeltisi ile temas içindedir.
  6. Test çözeltisinden elektrot dizisi çıkarın ve yavaşça, iyonu giderilmiş su ile durulama.
  7. P24 saat için enzimatik bir temizleme çözeltisi içine elektrot dizisi dantel.
  8. Çözeltiden elektrot dizisi çıkarın ve damıtılmış su ile yıkayın.
  9. Bir potansiyostatla için elektrot dizisi bağlayın.
  10. Dikkatle test çözeltisi içine elektrot dizisi yerleştirin ve yerine kelepçe.
  11. Test çözeltisi içine bir platin örgü karşı elektrot ve Ag / AgCl referans elektrot yerleştirin ve potansiyostatla bağlanın.
  12. Potansiyostatı ile, sıralı elektrokimyasal empedans spektroskopisi (EIS) gerçekleştirmek (potansiyel 0 ofset V, genlik 10 mV, frekans aralığı 10-100,000 Hz) ve voltametri (1 çevrim, potansiyel aralığı 0.8 -0.8 V, tarama hızı 100 mV / sn ) Tüm elektrotlar üzerinde. Denenmemiş elektrotlar açık devre potansiyelinde tutulur ve 1 saniyelik bir sessizlik süresi her testte arasında kullanılır. Hepsi 32 elektrotlar 1 saat tam olarak test oturumu için çözeltisi ile temas içindedir.
  13. Test çözeltisinden elektrot dizisi çıkarın vehafifçe deiyonize su ile durulayın.
  14. Elektrot yüzeylerinin hasar ve bozulmasını önlemek için kuru bir koruyucu kap saklayın sondalar.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bu deneysel protokol için kullanılan tipik bir elektrot dizisi, Şekil 1 'de gösterilmiştir. 413 μ m 2, nominal geometrik alanı ve 200 μ m zift ile 4 Shanks 32 iridyum elektrotlar bulunmaktadır. Dizisinde her ikinci elektrod 1-4 etiketlenmiş dört farklı elektrot kaplamalar, biri ile kaplanmıştır. Kaplama malzemeleri dikkatli, kimyasal, mekanik ve elektrokimyasal özellikleri için seçilmiştir. Daha önce belirtildiği gibi 10 büyük mevcut veya potansiyel de rakip reaks...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bu protokol, tek bir hayvan içinde sinir kayıt elektrot kaplamaların karşılaştırılması için bir yöntem sağlamaktadır. Kullanılan elektrot tasarımı benzer bir ölçekte boyutları ile, bir sıçan alt colliculus (IC) içine implantasyon için idealdir. Örneğin saplar arasında daha fazla bir alan olarak bu elektrot varyasyonları uzun sap ve elektrotlar arasında daha büyük bir adım sap uçlarına kafatası baz ile temas edeceği riskini artıran ise her sap, aynı zamanda, sıçan IC olmak önleyecektir sokma esnasında. Küçük elektrot ara...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
Yazarlar ifşa hiçbir şey yok.

Teşekkürler

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
Yazarlar Electromaterials Bilim Mükemmeliyet Merkezi aracılığıyla Avustralya Araştırma Konseyi destek için minnettarım.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
Programlanabilir ZayıflatıcıTDTPA5Akustik sinyalin genliğini frekanslar arasında kontrol eder
Elektrostatik hoparlör sürücüsüTDTED1Elektrostatik hoparlörleri çalıştırır (EC1)
Birleştirilmiş elektrostatik hoparlörTDTEC1Hayvanlara ses verir
İşleme baz istasyonuTDTRZ2Elektrot dizisinden nöral aktiviteyi kaydeder (PZ2 ön amplifikatör kullanarak)
Ön yükselticiTDTPZ2-256256 kanallı yüksek empedanslı ön yükseltici
Çok İşlevli İşlemciTDTRX6Akustik uyaranlar oluşturmak için kullanılır
Çok kanallı elektrotNeuroNexus TechnologiesA4 & zaman; 8 – 5mm-200-200-4134 şaftlı 32 kanallı elektrot dizisi
PotansiyostatCH InstrumentsCHI660BElektrot kaplamalarını biriktirir ve döngüsel voltametri ve EIS gerçekleştirir (CHI684 ile kullanılır)
ÇoklayıcıCH InstrumentsCHI684Potansiyostat üzerindeki elektrotlar arasında geçiş yapar
Disodyum fosfatFluka71644Test solüsyonunda kullanılır
3,4- Etilendioksitiyofen (EDOT)Sigma Aldrich483028Bir elektrot kaplama malzemesi
para-Toluen sülfonat (Na2pTS)Sigma Aldrich152536Bir elektrot kaplama malzemesi
ÜretanSigma AldrichU2500Hayvanı uyuşturmak için kullanılır
Gümüş/Gümüş klorür elektrotCH InstrumentsCHI111Elektrot in vitro
Platin elektrotCH InstrumentsMW4130Elektrot in vitroMotorlu mikro sürücüyü test etmek için kullanılır
Sutter InstrumentsDR1000Ameliyat sırasında elektrot dizisi konumunu kontrol etmek için
Enzimatik temizleyiciGelişmiş Medikal OptikUltrazymeİmplantasyondan sonra proteini elektrot dizisinden temizler
Akustik muhafazaTMC Ametek83-501Hayvanı akustik ve elektriksel gürültüden izole eder
Stereotaksik çerçeveDavid Kopf Instruments1430Hayvanı sabitler ve konumlandırır
Sıcaklık kontrolörüWorld Precision InstrumentsATC1000Hayvan sıcaklığını kontrol eder
Kemik matkabıKaVo DentalK5PlusKraniektomi yapmak için kullanılır
AspiratörFlaemEmme proKraniektomi yapmak için kullanılır
test etmek için kullanılır

Kaynaklar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Oluigbo, C. O., Rezai, A. R. Addressing Neurological Disorders With Neuromodulation. IEEE Trans. Biomed. Eng. 58, 1907-1917 (2011).
  2. Shivdasani, M. N., Mauger, S. J., Rathbone, G. D., Paolini, A. G. Inferior Colliculus Responses to Multichannel Microstimulation of the Ventral Cochlear Nucleus: Implications for Auditory Brain Stem Implants. J. Neurophysiol. 99, 1-13 (2008).
  3. Perlmutter, J. S., Mink, J. W. Deep Brain Stimulation. Ann. Rev. Neurosci. 29, 229 (2006).
  4. Weaver, F. M., et al. Bilateral Deep Brain Stimulation vs Best Medical Therapy for Patients With Advanced Parkinson Disease. J. Am. Med. Assoc. 301, 63-73 (2009).
  5. Biran, R., Martin, D. C., Tresco, P. A. Neuronal cell loss accompanies the brain tissue response to chronically implanted silicon microelectrode arrays. Exp. Neurol. 195, 115-126 (2005).
  6. McConnell, G. C., et al. Implanted neural electrodes cause chronic, local inflammation that is correlated with local neurodegeneration. J. Neural Eng. 6, (2009).
  7. Liu, X., et al. Stability of the interface between neural tissue and chronically implanted intracortical microelectrodes. IEEE Trans. Rehab. Eng. 7, 315-326 (1999).
  8. Rousche, P. J., Normann, R. A. Chronic recording capability of the Utah Intracortical Electrode Array in cat sensory cortex. J. Neurosci. Methods. 82, 1-15 (1998).
  9. Williams, J. C., Rennaker, R. L., Kipke, D. R. Long-term neural recording characteristics of wire microelectrode arrays implanted in cerebral cortex. Brain Res. Protoc. 4, 303-313 (1999).
  10. Harris, A. R., et al. Conducting polymer coated neural recording electrodes. J. Neural Eng. 10, (2013).
  11. Bard, A. J., Faulkner, L. R. Electrochemical Methods. , Wiley. (2001).
  12. Ludwig, K. A., Uram, J. D., Yang, J., Martin, D. C., Kipke, D. R. Chronic neural recordings using silicon microelectrode arrays electrochemically deposited with a poly(3,4-ethylenedioxythiophene) (PEDOT) film. J. Neural Eng. 3, 59 (2006).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya şekillerini yeniden kullanmak için izin iste

İzin iste

Etiketler

Elektrokimyasal TestlerIn Vitro TestlerIn Vivo TestlerElektrot EmpedansSinyal G r lt OranElektrot Biyostabilitesiletken Polimer KaplamalarAkut N ral Kay t

İlgili makaleler