Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliğiniz gereklidir. Giriş yapın veya ücretsiz denemenizi bugün başlatın.

Yöntem makalesi

Canlı Makrofagların içinde Phagolysosome Biogenesis'den Çalışması

13.7K görüntülenme

⸱

DOI:

10.3791/51201

⸱

10 Mart 2014

 ,  , 
1Research Group Phagosome Biology, Helmholtz Centre for Infection Research, 2Division of Mycobacterial Research, National Institute for Medical Research

Bu makalede

Özet

Fagositik hücreler kaldırma ve phagosomes istila mikroorganizmaları ortadan kaldırarak, doğuştan gelen bağışıklık sisteminde önemli bir rol oynamaktadır. Fagosom olgunlaşma olgunlaşmamış bir fagosom sitoplazmada çeşitli hücresel organellere ve bölmeleri ile iyi yönetilen bir etkileşimler yoluyla köklü dönüşüme uğrar sırasında karmaşık ve sıkı düzenlenmiş bir süreçtir. Onların litik ve bakterisidal özellikleri ile phagosomes donatarak fagositik hücrelerin fizyolojik fonksiyonu için gerekli olan bu süreç, lizozomlar ve phagosomes için olgunlaşma son ve kritik aşama olarak kabul edilir fagolizozomları arasında biyotekvinin ile phagosomes füzyonu sona eriyor. Bu raporda, biz phagolysosome biyotekvinin bir özelliğidir içerik dağıtım, fagosom için lizozoma dinamik süreci kalitatif ve kantitatif analiz için canlı hücre görüntüleme bazlı yöntem açıklanmaktadır. Bu yaklaşım, phagocy için bir model olarak IgG kaplı mikro-boncuklar kullanırbir lizozomal luminal yük prob olarak apoptosisi ve fluorofor ile konjüge edilmiş dekstran molekülleri, zaman atlamalı görüntüleme ve konfokal lazer tarama mikroskobu kullanılarak canlı makrofajlarda gerçek zamanlı olarak phagosomes için lysosmal dinamik içerik teslim takip etmek amacıyla. Burada ayrıntılı olarak arka plan, hazırlık aşamaları ve diğer laboratuvarlar bu yöntemin kolay ve hassas bir dağıtım sağlamak için adım adım bir deney düzeneği tarif. Bizim tanımlanan metot basit, sağlam, ve en önemlisi, kolayca farklı sistemlerde ve örneğin çeşitli fagositik hücreler türleri, kayıp-fonksiyon deneyleri, farklı prob kullanımı gibi çeşitli deneysel ayarları altında phagosomal etkileşimleri ve olgunlaşmasını çalışmak için adapte edilebilir, ve Fagositik parçacıklar.

Giriş

Makrofajlar dahil olmak üzere, profesyonel fagositlerin, bağışıklık sisteminde önemli bir oyun. Doğuştan gelen bağışıklık sistemindeki ilk savunma hattı olmasının yanı sıra, aynı zamanda bir rol 1-3 sunulması da sinyalizasyon ve antijen ile edinilmiş bağışıklık aktivasyonunda kritik bir rol oynamaktadır. Profesyonel fagositlerin işlevi çok yönlü iken, fagosom olgunlaşma profesyonel fagositlerin 4,5 bakterisit ve antijen işleme fonksiyonlarının kritik bir omurgadır. Reseptör aracılı yutulma ve bakteriler gibi bir fagositik hedef, alımından sonra, olgunlaşmamış fagosom etkileşim ve endositik ağ bölümlerinde ve çeşitli diğer hücresel organel 6 değişim karmaşık ve iyi ayarlanmış bir dizisi boyunca geçer. Bileşiklerin yapısı, bu hücresel varlıklar olarak düzenlenmesi ile değiştirilir ve füzyon olayların zamanlama luminal phagosomal ortamı ve phagos belirleromal membran bileşimi ve böylece 7, olgunlaşan fagozomun 8 kaderi.

Fagosom olgunlaşma fizyolojik alaka, kaçmak tutuklama veya fagosom olgunlaşmasını 9 yıkmak için çeşitli hücre içi patojenler tarafından istihdam çeşitli stratejiler ile örneklenmiştir. Hidrolitik enzim ve olgun fagozomun 7 arasında anti-bakteriyel faktörler bir kısmı ile endows geç endozomal / lızozomal bölmeli fagozomun füzyon: Bu stratejilerin çoğu doğrudan ya da dolaylı olarak fagosom olgunlaşma sürecinin son ve kritik aşamaya önlemek , 8,10. Doğal fizyolojik bir durum kullanılan ediliyor, özellikle deneysel ayarları altında etkilenen olumlu ya da olumsuz olması halinde, bu nihai ve kritik adım Analizi nedenle phagosomes olgunlaşma durumu hakkında güçlü göstergeler ile bize sağlayabilir ve.

Geç endozomal / lizozomal bölmesis genellikle çeşitli varlığı ile erken endositik bölmelerden tanımlanmış ve ayırt edici endositik yolunun terminal bölmeleri, spesifik, marker moleküllerin sahne olduğu kabul edilmektedir. Örneğin, diğerleri 11 arasında Lizozomal ilişkili membran proteinleri (lambalar) gibi hidrolitik enzimler veya membran bileşenleri için. Terminal endositik bölmeleri-bundan böyle lizozomlar-da fagositik / endositik yolunun 12 sonunda sindirim son aşamaları için ana konum olarak hizmet basitçe olarak anılacaktır. Bu şekilde, sindirilemez sondalar hücre dışı ortamdan endositoz ve makropinositoz yoluyla yüklenebilir ve alımı ve Chase belirlenmiş bir döngü takip sonra 13,14 birikir lizozomlara endositik yolu aracılığıyla taşınır. 15-17 endocyticprobes gibi organik sindirilemez polimer dekstran gibi floresan mikroskobu için fluorofor-konjuge problar yaygın olarak kullanılmaktadır.

biz phagosomes için lızozomal luminal içerik teslim analiz ederek fagosom olgunlaşmasını araştırmak fagositik kargo olarak IgG kaplı mikroboncuk kullanımını tarif eder. Canlı kemik iliği kaynaklı makrofajlar (BMM) ve konfokal lazer tarama mikroskobu ile time-lapse video görüntülemede lizozomların bir kolaylıkla saptanabilir marker olarak flüorofor-konjuge dekstran prob kullanarak, yüksek olan phagosomes içine kargo teslim dinamik sürecini takip zamansal çözünürlük. Daha sonra istatistiksel olarak Microsoft Excel kullanarak analiz ve GraphPad yazılımı 14,18 kullanarak sunulan, toplanan time-lapse görüntüleme verileri, açık kaynak kodlu ve serbestçe kullanılabilir görüntü analiz yazılımı, Fiji (veya ImageJ) kullanılarak değerlendirilebilir anlatacağız.

Bizim yöntemin açıklaması ardından, benzer deneyler fagosom olgunlaşması üzerindeki etkilerini araştırmak için modifiye ayarları ve faktörler kullanılarak dizayn edilebilir; hemen her otyapışık birincil veya hücre hattı fagositik hücrelerin kendi türü de dahil olmak üzere fonksiyon deneyler genetik kaybı gen nakavt ve knock-down, mutantlar veya füzyon proteinleri, fagositik-hedefler, microbead kaplama bileşikleri, endozomal / lizozomal sondaları ve faktörlerin böyle bir ifade diğerleri arasında sitokinler, kimyasal inhibitörleri veya siRNA bu yöntemin temel yaklaşım uygulanabilir tüm değişkenlerdir.

Biz aşağıdaki gibi bu yöntemin hedefi ve temel gereksinimlerini tanımlar:

  • Yöntemin Hedef: fagositik canlı hücreler yüksek zamansal çözünürlüğe sahip fagosom olgunlaşma, doğrudan nicel ve nitel gözlem ve analiz sağlamaktır.
  • Fagositik yük: Bir uygun şekilde kaplanmış mikro parçacık veya biyolojik hedef. Burada kolayca Fc-γ reseptörü aracılığıyla fagositoz ile içselleştirilir 3 um küresel polistiren mikro-IgG kaplı kullanın. Seçenek olarak ise, bir mikroorganizma ya da kaplanmış mikrofon, retina reseptör hücrelerde mevcut olduğu için roparticle kullanılabilir.
  • Fagositik hücreler: Uygun fagositik reseptörlerini sentezleyen Yapışık fagositik hücreler. Burada bol Fc-γ reseptörlerini ifade fare primer BMMs kullanın. Alternatif olarak, dendritik hücreler (DC), monositler veya fagositik epitel hücreleri ya da bunların mutantlan ya da genetik knock-out varyantlar kullanılabilir.
  • Lizozomal kargo: Bir floresan etiketli lizozomal prob. Burada, Texas Red-konjüge edilmiş dekstran 70,000 kiloDalton (Dex70kD) lizozomlara luminal yük olarak kullanılır. Alternatif olarak, bu asitlik veya indirgeyici kapasitesi phagosomal özellikleri için bir hücre bölmesi veya organel ya da uygun bir prob, floresan bir saptanabilir marker ile etiketlenebilir fagosom olgunlaşma ilerlemesini incelemek için kullanılabilir.
  • Örneğin, molekülleri, kimyasal bileşikler, gen knock-down, ya da olabilir mutant proteinlerin geçici ifadesini sinyalizasyon: etkileyen faktörler. Burada, biz Förg varbasitlik uğruna böyle bir faktör biri kullanılması, ancak mutant protein ifade ve Kasmapour vd. 18. phagosomes fagositozunu veya şartlar ve hareketlilik etkileyebilir ve / olabilir Herhangi bir faktör bakın lütfen knock-down etkileyen faktörler ile yeni bir örnek ya da olgunlaşma phagosomes etkileşim bölmeleri potansiyel olarak kullanılabilir.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

Bu protokolde, hayvan bakımı ve bütün prosedürler, kurumsal ve ulusal kurallara uyun.

"Π-" önceden ile gösterilir hazırlıkları hazırlayın.

1.. BMMs hazırlanması

  1. Servikal dislokasyon ile farelerin itlafı yapın.
  2. Doku femur ve tibia kemikleri, ücretsiz kemikleri çıkarın ve kemik iliği erişilebilirlik için iki ucunu kesin.
  3. Buz soğukluğunda PBS veya bir sonraki safhaya kadar buz üzerinde 100 ug / ml streptomisin ve 100 U / ml penisilin ve ile desteklenmiş buz soğukluğunda DMEM ortamında (in kemik tutun.
    Not: kontaminasyon riskini en aza indirmek için bir sınıf II biyogüvenlik kabini altında aşağıdaki adımları gerçekleştirin.
  4. Bir 1 ml şırınga bağlanmış bir 26 G (0.45 mm) bir iğne kullanılarak soğuk PBS + penisilin / streptomisin ile medüller boşluğu yıkayın.
  5. 10 dakika için 350 xg nazik santrifüj Pelet hücreleri, BMM med yılında pelletinisteril mikrobiyoloji yum ve plaka Petri yemekleri kaplanmamış.
    1. BMM ortamının hazırlanması
      • Dulbecco Modified Eagles Medium DMEM
      • % 10 FCS inaktive
      • % 20, fare fibroblast L929 hücre hattı kültürü yüzer maddesi (makrofaj koloni uyarıcı faktör, M-CSF kaynağı)
      • % 5 at serumu
      • 2 mM glutamin
    2. L929 hücre dizisi kültür ortamının hazırlanması,
      • RPMI (Roswell Park Memorial Institute) 1640 ortamı
      • % 10 FCS inaktive
      • 2 mM glutamin
    3. Fare fibroblast L929 hücre hattı kültürü yüzer hazırlanması;
      • Konfluent L929 hücreleri, 175 cm kültürlenmiş, 1:4 oranında bölünmüş olan 20 ml L929 orta ve kültür süpernatanı kullanılarak, 2 gün için 2 şişe, 48 saat sonra toplandı, süzüldü ve BMM-ortama ilave
  6. Temizlendi hücreleri inkübeCO2 atmosfer,% 5 37 ° C'de bir kuluçka makinesi içinde femur.
  7. Inkübasyon, her 48 saat (en fazla 72 saat) sonra, ortam aspire ve 10 gün boyunca, taze BMM ortam ile değiştirilir. Flow sitometri tarafından test olarak hücrelerin% 95'inden fazlası CD14 için pozitif idi. CD14 makrofajlar tarafından ağırlıklı olarak ifade edilen bir örüntü tanıma reseptörü olduğunu. Bu reseptör için pozitif hücrelerin yüzdesi belirlenerek, yapışık BMMs saf bir kültürü oluşturuldu.

Not: diğer hücre tipleri kullanıldığında göre hücreleri hazırlamak ve kültür.

2. Fagositik Kargo olarak mikrotaneciklerin Kaplama

  1. 1 ml boncuk süspansiyonu hazırlanması için,% 2.5, 400 ul 3 um karboksilatlanmış polistiren mikro ya da alternatif mikro kullanın.
  2. Bir 1.5 ml mikrosantrifüj tüpüne transfer boncuk süspansiyonu PBS ile 3 kez yıkama ve 500 mM 2 100 ul ekle - (N-morfolino) etanlarulfonic asit sodyum tuzu boncuk pelet, pH 6.7 de MES tamponu.
  3. Steril GKD 2 O 50 ul 50 ug fare IgG (poliklonal IgG antikoru) çözülür ve boncuk süspansiyonu ekleyin.
  4. Steril GKD 2 O (450 ul) ile 1 ml süspansiyon doldurun.
  5. Oda sıcaklığında dönen bir tekerlek üzerinde 15 dakika için çözelti inkübe edin.
  6. 10 mg / ml 'lik bir konsantrasyonda EDAC çapraz bağlayıcı, N-(3-dimetilaminopropil)-N'-etilkarbodiimid hidroklorür hazırlamak ve boncuk süspansiyonuna 14 ul ekle.
    Not: EDAC çapraz bağlantıları boncukların yüzeyi üzerindeki karboksil grupları ile IgG amino gruplarına ve kordon yüzeyi üzerindeki IgG immobilizasyon kolaylaştırır. Bu boncuk alımı için çok önemlidir ve bu nedenle çözelti, taze hazırlanmalıdır olduğunu.
  7. Oda sıcaklığında 1 saat için bir döner tekerlek üzerine süspansiyonu inkübe edin.
  8. EDAC çapraz bağlayıcının 14 ul ilave edin ve oda sıcaklığında 1 saat için bir döner tekerlek üzerine süspansiyonu inkübe.
  9. Bir mikrosantrifüj içinde 2 dakika için 10,000 x g'de santrifüjleyin süspansiyon.
  10. Boncuklar durdurma tamponu içinde topağın tekrar askıda ve 2 dakika boyunca 10,000 x g'de çözeltisi iplik, çapraz bağlama reaksiyonu durdurmak için durdurma tamponu (10 mM Tris, pH 9.4 içinde% 1 Triton-X-100) içinde 3 kat yıkayın.
  11. PBS'de 3x boncuk yıkayın ve 1 ml PBS içinde pelletini.
    Opsiyonel: 30-50 ul çalışma alikotları hazırlayın.
  12. Artık 4 hafta boyunca 4 ° C'de IgG kaplanmış boncuk süspansiyon, depolama ve süspansiyon dondurulacak asla izin.

Not:% 0.02 'lik bir nihai konsantrasyona (ağırlık / hacim) bakteri gelişimini ve kirlenmeyi önlemek için süspansiyona ilave edilebilir da sodyum azit gibi bir koruyucu. Bu durumda önce kullanımına boncukların yıkama koruyucu sitotoksik etkilerinden kaçınmak için yapılabilir zorundadır. 2 dakika boyunca 10,000 x g'de süspansiyonun bir kısım santrifüj ve yeniden yıkamak ve boncuklarıPBS içinde süspansiyon pelet. Yıkama 3x tekrarlayın.

3. Dekstran Probe Stok solüsyonunun hazırlanması

  1. Texas Red 70000 kilodalton çözündürülür 20 mg, PBS içinde Dextran (Dex70kD), üreticinin talimatlarına uygun olarak, -20 ° C / ml ve mağaza.
    Not: Birkaç aya kadar -20 ° C'de hisse tutun, ya da 4 ° C'de birkaç hafta için, üreticilerin belgelerine bakın.
  2. (Seyreltilir olacak konsantre çözelti birkaç kat, yaklaşık 1 mg / ml 'de (DMEM,% 10 FCS, 2 mM L-glutamin) tam DMEM hücre kültür ortamı içinde seyreltilmesi ile stoktan deney için dekstran solüsyonu hazırlayın , hücrelere ilave edilmeden önce 20 ug / ml 'lik son çalışma konsantrasyonu).
  3. Çözelti homojen hale getirmek ve daha sonra görüntüleme sırasında artefakt üretilmesine yol olabilir agrega çözmek için 5 dakika boyunca kısım dekstran sonikasyon için, bir ultrason banyosu su kullanın.
  4. Maksimum g de santrifüjbir mikrosantrifüj içinde 5 dakika çözeltiden çözülmemiş her türlü yığınları ya da kirletici maddeleri uzaklaştırmak için.
  5. Dikkatlice tüpün altındaki pelet kaçınarak, yeni bir tüpe süpernatant taşımak ve tam DMEM hücre kültür aracı maddesi içinde 20 ug / ml nihai konsantrasyona kadar çalışma çözeltisi seyreltin.
  6. 0.2 um şırınga monte edilen filtre kullanılarak filtre-steril çözelti.

4. Dekstran Preloading

  1. Tohum, canlı hücre görüntüleme cam alt tabak hücreleri ve eki ve iklime sağlamak için (% 5 CO2 atmosferi içinde 37 ° C'de), en azından 12 saat boyunca inkübe edilir.
    Not: tabak başına (dört bölmeye kadar) birden fazla deneyler izin mevcut segmente cam alt yemekler vardır.
  2. Protokol 3'te tarif edildiği gibi DMEM çözelti içinde dekstran hazırlayın. 37 ° C'de bir su banyosu kullanılarak, çözelti içinde DMEM hazırlanan dekstran ısıtmak
  3. Aspire ortamı,nd alımı için 2-8 saat boyunca CO2 atmosfer,% 5 37 ° C'de dikkatli bir şekilde hücrelere dekstran çözeltisi ekleyin ve inkübe edilir.
    Plan ve kullanılmış ve deneyler tekrarladığınızda kesinlikle bu süre tutmak olan prob ve hücre tipine göre protokol optimize: Not. Bu, endositik yolağındaki dekstran birikmesi Profile ve deneyler bu nedenle yeniden üretilebilirlik için gereklidir.
  4. 3x ile önceden ısıtılmış tam bir DMEM ortam hücreleri yıkayın, aspirat orta ve taze ortam ile dikkatlice hücreler yıkayın.
  5. CO2 atmosfer,% 5 37 ° C'de 4-12 saat boyunca tam bir DMEM ortamıyla yapılan hücreleri inkübe edin.
  6. Önceden ısıtılmış tam süzüldü kırmızı fenol içermeyen DMEM ortamı ile bir kez hücreler yıkayın.
  7. En iyi sonuçları elde etmek için görüntüleme, görüntüleme başlamasından önce önceden ısıtılmış tam süzüldü fenol kırmızı içermeyen DMEM ortamı en az 30 dakika değiştirin. Fenol kırmızı arka plan gürültü artıyor, floresan sinyallerin söndürülmesine neden olabilir veböylece görüntü kontrastı ve netliği azaltır.

Not: kullanılan prob ve hücre tipine göre önceden planlanmış ve optimize protokole göre, mikroskop ve önceden görüntüleme ayarlarını ayarlayın.

5. IgG kaplı boncukların

  1. Oda sıcaklığına kadar önceden hazırlanmış% 1 boncuk süspansiyonu bir kısım dengelenmesi 2-3 dakika süreyle bir ultrason banyosu içinde su sonikasyon.
  2. Kontaminasyon (iyi bir başlangıç ​​konsantrasyonu 1 ul / 2 cm 2 çanak yüzey) riskini en aza indirmek için bir sınıf II biyogüvenlik kabini altında tam süzülmüş kırmızı fenolsüz DMEM ortama% 1 boncuk süspansiyonu 1-6 ul ekleyin.
    Not: Burada BMMs 25,000 hücre / göz 'de ekildi ve% 1 stok boncuk süspansiyonu, 6 ul kabındaki ortam ilave edildi. Bu, yaklaşık 15:1 'lik bir boncuk / hücre oranına eşittir. Oranı kullanılır ve kordon malzemeye bir hücre türüne ayarlanmalıdır, i.e. polistiren boncuklar daha fazla sayıda çok daha hızlı ve böylece yapışık hücreler ile temas halinde gelir oysa lavabo ve lateks boncuk, düşük yoğunluğa sahiptirler ve hızlı bir şekilde dibe çöker, yok.
    Not: Deney bağlı olarak, önceden gözlenecektir bölgeyi belirlemek için bir avantaj olabilir. Boncuk süspansiyonu nedenle olumlu alımı olayları gözlemleme olasılığı artan, sadece cam alt yemeğin belirli bölgeye eklenebilir.
  3. Boncuk yoğun bulut yavaşça cam alt çanak süspansiyon pipetleme dağınık olabilir.
  4. Boncuklar, cam alt tabağın tabanına çöker ve yapışık fagositik hücreler ile aynı düzlemde yaklaşık kadar bekleyin.
  5. Ilgi (ROI) bölgeye odaklanır ve zaman atlamalı görüntüleme başlar.

Not: görüntüleme kullanılan görüntüleme sistemine bağlı olarak, devam iken, bu sta odak ince ayar için gerekli olabilirbility ve gözlemlenen hücrelerin hareketlilik. Ancak, bu imkansız kılabilecek kuvvetle yeniden odaklama bir sonucu olarak odak düzleminden sapan phagosomes uygun analiz edin.

6. Görüntüleme

Optimum görüntü kalitesi için aşağıdaki genel yönergeleri izleyin;

  1. Bu tür bir lazer-tarama ya da eğirme disk sistemi gibi bir konfokal görüntüleme sistemi kullanın.
    Not: Leica LAS AF yazılımı tarafından kontrol ve çevre kontrol odası ile donatılmış bir Leica TCS SP5 AOBS Lazer tarama konfokal mikroskop time-lapse video görüntüleme için burada kullanılmıştır.
  2. Vb tarama hızı, büyütme, çözünürlük gibi görüntüleme ayarlarını optimize eder. el sistemine bağlı olarak her 7-20 saniye bir karenin bir oranda sağlamak için bir şekilde.
    Not: Burada, 200 Hz tarama hızı, 2x yakınlaştırma tarayıcı ve 512 x 512 piksel resu çözünürlükte 2-3x bir çizgi ortalama3-5 sn / rame arasında kayıt süresi içinde lted. Her 10 saniyede bir çerçeve bir oran en az 120 dakika süreleri time-lapse film kaydetmek için kullanıldı.
  3. Kullanılan görüntüleme sistemi ve prob (lar) dayalı uygun uyarma / emisyon ayarlarını kullanın.
    1. Aşırı fotoğraf beyazlatma önlemek için ayarlarını optimize.
      Not: Burada, Texas Red Dekstran 70 kD bir DPSS (561 nm) lazer ve ışık emisyon 610 nm emisyon zirve ile 600-650 nm bir Leica melez detektörü (HYD) tarafından tespit edildi kullanarak heyecanlıydı. Lazer yoğunluğu, sinyal yoğunluğu üzere uyarlanmış ve fluorofor (ler) ve hücreleri üzerinde lazer ışığının verilmedi toksisite etkisinin foto-ağartma en aza indirmek için mümkün olduğu kadar düşük tutulmalıdır. Genel olarak, doğru ve kararlı sinyal şiddetini elde etmek tarama hızı, hat kavuşur, tarama çözünürlüğü, çerçeve aralığını ve görüntüleme süresini dengelemek ve boncuk alımı ve fagosom olgunlaşma yanlısı tam süresini yakalamak için önemlidircess.
  4. Onlar floroforla ile konjuge değilse boncuk gözlemlemek için bir aydınlık alan (BF) kanalı da bulunmaktadır.
    Not: Texas Red kanalının yanında, BF kanal boncuk görselleştirmek için kullanılan, aynı DPSS lazer ışık kaynağı ve sinyal bir fotoğraf çarpan (PMT) detektörü ile tespit edilmiştir olarak kullanılmıştır.
    Not: harmanlanmış olan verileri satın alırken aynı kayıt ayarlarını uygulamak için emin olun. En önemli parametreler şunlardır: uyarma lazer şiddetleri, dedektör ayarı, satın alma ayarları, büyütme ve çerçeve aralıkları. Gözlem veri noktaları (her 12 sn de kare ile başka bir dizi ile her 7 saniyede edinilen kare ile bir gözlemi harmanlamak gibi) üst üste olmayacak gibi aynı kare aralıkları kullanılarak değil, bir eğri-ortalama adım gerektirecektir. Bu veri değerlendirme için gerekli adımları artırmak ve bu OriginLab gibi eğri-ortalama fonksiyonu ile ek yazılım, 'gerektirecektirs Origin Pro istatistik yazılımı ( http://www.originlab.com/ ).
  5. Tercihen, kullanılan görüntüleme sisteminin yerli dosya formatında time-lapse video kaydetmek ve sıkıştırılmış formatlarda ihraç kaçının.

Not: (. LİF) İşte, zaman-lapse film sonra doğrudan Fiji açmak için ithal edilen yerli Leica LAS AF formatında dosyalar kaydedildi. Fiji dahil Bio biçimleri ithalatçı plug-in kullanarak en mikroskop üreticilerin yerel dosya formatlarını okuyabilir. JPG veya TIFF veya AVI konteyner formatında bir video dosyası olarak bir resim serisi time-lapse film dışa gerekli ya da tavsiye edilmez. Yerli mikroskop dosya biçimini kullanarak, kayıplı sıkıştırma algoritmaları (örneğin JPEG) kaçınarak orijinal bir gözlem mümkün olan en iyi görüntü kalitesini koruyarak ek olarak sigortalanır dosyanın meta-veri (zaman damgaları, büyütme, lazer ve satın alma yoğunlukları, Dedektör ayarları vs) korunur ve Fiji için mevcuttur. Herhangi bir nedenle, time-lapse video dosyalarını analizi için farklı bir formatta ihraç edilmesi gerekiyorsa Ancak, TIFF görüntü serisi ve ayrı RGB renk (kırmızı, yeşil, mavi) bu zaten kanalları gibi sıkıştırılmamış dosya biçimlerini kullandığınızdan emin olun Fiji genellikle başarıyla ihraç dosyaları diğer renk kanallardan BF kanalı ayrı olamaz gibi, adım. Ayrıca, bir referans olarak orijinal mikroskop dosyalarını korumak için emin olun.

7. Time-lapse Film Analizi

  1. ImageJ, Fiji veya benzerleri sinyal dernek analiz yeteneği sağlar başka bir yazılım kullanın.
    Not: Burada, Fiji time-lapse film analizi için kullanılmıştır. Fiji ücretsiz indirmek için kullanılabilir yeniden araç menüler ve ek yerli eklentileri ile bir görüntü işleme paketini içeren bir İmageJ dağıtım http://fiji.sc . Bu mezhep açıklanan prosesiyon, Şekil 2'de gösterilmiştir.
  2. "Aç", "Dosya" tıklayarak ve dosyayı seçerek, ya da sürükleyerek ve Fiji için dosyayı bırakarak tarafından Fiji dosyasını açın.
  3. Aşağıdaki seçenekleri seçin;
    1. Görüntüleme Stack: Görünüm hyperstack ile yığını,
    2. Renk seçenekleri: Renk modu renklendirilmiş,
    3. Ayrı pencerelere bölünmüş kanalları: Bölünmüş kanal (kaydedilen her RGB renk kanalı için ayrı bir pencere açılacaktır).
  4. Durumda bir resim serisi, "Dosya" "Import", "Görüntü Sırası" ve hedef görüntü serilerini içeren klasörde herhangi bir görüntü dosyasını seçmek giderek Fiji serisi yük kullanılacaktır.
    1. Set filtreler ve örneğin seri yükleme seçilen görüntüler için şartlar;
      1. Görüntü sayısı: yüklenecek kaç kare.
      2. Görüntüyü Başlangıç: serisinin başlangıç ​​kare olan görüntü.
      3. Artırmak: artımı arasındaçerçeveler (vb her karesini, her saniye çerçeve,.) yüklenecek.
      4. Dosya adı içeriyor: ("Kanal 1" den görüntüler çok kanallı bir time-lapse video renk-ayrılmasından sonra etiketli nasıl normalde "C001", ayarlayarak örneğin) dosya adını kullanarak belirli bir kanal için filtreleme.
  5. , "... Ölçeği ayarlama", "Analiz" giden kutusu "Küresel" kontrol ve "ölçek kaldırmak için tıklayın" linkine tıklayarak ölçekleme çıkarın.
    Not: Bu adım farklı büyütme değerlendirilecek olan çeşitli deneysel setleri için kullanılmıştır halinde görüntülerin piksel göre analiz sağlar. Büyütme ayarları her zaman sabit tutulmuştur ve yerli mikroskop dosya doğrudan Fiji ithal ise Fiji mikroskop dosyasının meta gelen büyütme ve ölçek verileri anlamak ve kullanmak gibi, bu adım, atlanabilir.
  6. Ölçüm parametre ayarlama"Area", "standart sapma", "Entegre yoğunluğu", "Ekran etiket" ve "gri ortalama değeri:", "Set Ölçümleri", "Analiz" olacak ve aşağıdaki kutuları işaretleyerek s.
  7. Ölçülür ve "OK" ile onaylayın olmaktır sonda gelen sinyali içeren renk kanalına yönlendir.
  8. Ölçümleri başlatılabilir vardır ve pencerenin üst kenarı üzerine tıklayarak BF kanal pencereyi seçmek hangi çerçeve gidin.
  9. Içselleştirilmiş boncuk üzerinde dairesel bir yatırım getirisi, yani bir ilgi bölgesi (ROI) seçmek için "oval seçim aracı" kullanırlar. Seçim BF kanalda gibi görünen kordonun dış kenarına sıkıca takılı olduğundan emin olun.
    Not: PC kullanırken dairesel yatırım getirisi sağlamak için seçim aracını kullanırken, Shift tuşuna basılı tutun.
  10. Optimal olarak boncuk tam yutulma önce birkaç kare tamamlandıktan ölçüm başlatın ve notBir tam olarak oluşmuş olgunlaşmamış Boncuk fagosom oluşturulur ve fagositik fincan kapalı olduğu kare edildiği. Bu, BF kanalı nispeten açık bir şekilde ayırt edilebilir olmalıdır.
  11. "Analiz" ve ölçüm yürütmek için "Tedbir" tıklayın gidin; sonuç "Sonuçlar" başlıklı ayrı bir pencerede görüntülenir.
  12. , Sonraki kareye git boncuk taşındı durumunda ROI konumunu ayarlamak ve ölçümü tekrarlayın. Sonuç sonuç penceresinde listesine eklenir, her analiz çerçevesi "Etiket" sütunundaki değere göre tespit edilebilir.
    Not: (tedbir için örneğin "M") kısayol tuşlarını kullanarak önemli ölçüde değerlendirme sürecini hızlandırabilir; kısayol listesini görmek ve menüden "Eklentiler" altında kostüm olanları atayabilirsiniz.
  13. Ilgili tüm çerçevelerin ölçümü tamamladıktan sonra, sonuçlar MS Excel gibi bir elektronik tablo uygulamasında kopyalanabilir. Sütun "IntDen" intensitie gösteriyorölçüm yönlendirildi olduğu kanalda seçilen alanın s.

8. Beyazlatma Düzeltme

Kullanılan prob ve görüntüleme ayarlarınıza bağlı olarak, foto-ağartma oluşabilir. Onun ölçüde bağlı olarak, bu güçlü değerlendirmenin sonucunu etkileyebilir. Ancak, bu etki kısmen ölçülen değerlere değişimin eşit ama zıt oranı uygulanarak düzeltilebilir. Eğer mevcut ise, foto-ağartma katsayısı her fagozomun analizine uygun bir zaman aralığında, bütün çerçeve içinde zamana bağlı sinyal yoğunluğu azalma veya çerçevenin, özellikle kırpılan alanı ölçülerek hesaplanabilir. Bu işlem, Şekil 3 ve 4'de tasvir edilmiştir.

  1. Fiji "Eklentiler" menüsü altında, tam çerçeve içinde genel bir düşüşe, ya da zamanla ROI spesifik prob sinyal yoğunluğu (Şekil 3 belirlemek için "Zaman Serisi Analyzer" plug-in'i kullanabilir.)
    Not: Zaman Serisi Analiz plug-in indirmek için kullanılabilir http://rsbweb.nih.gov/ij/plugins/time-series.html Eklentiler menüsünde durumda zaten mevcut değil.
  2. Sadece analiz fagozomun çerçevelerine tekabül eden çerçeveler için, MS Excel'de (saniye olarak) zamana karşı ölçüm çizilir.
  3. Arsa için bir lineer trend-line (Şekil 4A) uygulamak; azalan sinyal için bir negatif eğim foto-ağartma etkisinin varlığını gösterir.
  4. Bir analiz fagozomun (Şekil 4B ve 4C) gelen değerlere ters eğim uygulayın: Düzeltilmiş sinyal yoğunluğu (SI) = ham SI + (zaman saniye * eğim ters)

Not: Her bir analiz fagosom kaydedilmiş bir time-lapse film sırasında (tam alım çerçeve başlayarak), belirli bir zaman dilimine sahip olacak, fotoğraf-bleaching belirli süre için yeniden hesaplanmalıdır ve bu özel fagozomun itibaren ölçülen değerlerin düzeltilmesi için geçerli olacaktır.

9. Veri Değerlendirilmesi

  1. Verileri harmanlayın ve uygun yazılım ağartıcı düzeltilmiş değerlerinin ortalama ve istatistiksel hata hesaplar.
  2. Uygun bir biçimde değerlendirilen veriler çiziniz.

Not: Burada, bilimsel istatistikler ve yazılım GraphPadPrizmasındaki komplo ( http://www.graphpad.com/scientific-software/prism/ ) kullanılmıştır. Prizma yazılım sürece tüm veriler aynı kare hızını (yani tüm bu tek bir kare her 10 sn gibi aynı aralıklarla ile elde edilmiştir) gibi ilgili hata göstergeleri ile ortalama bir eğri oluşturmak ve çizmek mümkün değildir.

Not: aynı experim tekrarlar içinde mutlak SI değerlerinin Geniş varyasyonlarıent kümesi çok büyük istatistiksel hata tanıtmak ve veri kullanılamaz hale getirecektir. Protokol, örneğin görüntüleme ayarları, harmanlanmış olması farklı deney tekrarları arasında kesinlikle özdeş tutulan, bu durum olabilir.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

Görüntüleme için hücrelerin ve boncukların doğru hazırlama kritik önem taşır. Şekil 1 BMMs için Optimize edilen protokolüne bağlı olarak tohumlama, prob yükleme ve bu yöntemde ilk görüntüleme adımlar, ana hatlarını göstermektedir. Bu protokol parametreleri hücreleri ve kullanılacak olan sondaların türüne bağlı olarak test edilmiş ve optimize edilmesi bu nedenle önemlidir.

Önceden yüklenmiş hücrelere IgG kaplı boncuk ilave edildikten sonra, bu büyütme önceden tanımlanmış ayar...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

Aşağıdaki bölümde sunulan yöntem ve sınırlamalar kritik adımları görüşecek. Ayrıca, biz, onların çözümleri ile yaygın sorunlardan bazıları bağlamak olası değişiklikler tanıtmak ve bizim yöntemin avantajları yanı sıra, bu yaklaşıma uygun tamamlayıcı yöntemler dikkate alacaktır.

Boncuk yüzeye IgG bağlanması da dahil olmak üzere boncuklar, preparasyonu, önemlidir ve unfresh preparasyonlar kullanımından kaçınılmalıdır. Buna ilave olarak, dekstran taze her deney öncesi donmuş stok (seyreltilmiş v...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

Yazarlar ifşa hiçbir şey yok.

Teşekkürler

Biz yazının eleştirel okuma için fagosom Biyoloji Laboratuvarı üyelerine teşekkür ederim. Bu çalışma, bir Helmholtz Genç Araştırmacı hibe (Girişimi ve Helmholtz Derneği Ağ fonları) ve Öncelikli Programı Alman Araştırma Konseyi (Deutsche Forschungsgemeinschaft, DFG) içinde SPP1580 Grant tarafından desteklenmektedir.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
Dulbecco'nun Modifiye Kartallar Ortamı (D-MEM)PAA, AvusturyaE15-009
Dulbecco'nun fenol kırmızısı içermeyen Modifiye Kartallar Ortamı (D-MEM)PAA, AvusturyaE15-047
Fetal Sığır Serumu (FBS)PAA, AvusturyaA15-151
L-GlutaminPAA, AvusturyaM11-004
PBSPAA, AvusturyaH15-002
Penisilin / StreptomisinPAA, AvusturyaP11-010
WillCo-dish® Cam alt çanak (35 mm & boş;, # 1.5)WillCo Wells, HollandaGWSt-3522
CELLviewTM cam alt çanak, 35 mmGreiner Bio one, Almanya627871Alternatif: Segmentli
Karboksilatlı lateks mikroküreciklerPolysciences, USA#09850Farklı çaplarda mevcuttur, 3 &mu kullandık; m
Polistiren mikropartiküllerKisker Biotech, AlmanyaPPs-3.0COOH
Triton-X 100ROTH, Almanya305.1.3
fare bütün IgGRockland, ABD010-0102
EDAC çapraz bağlayıcıSigma-Aldrich, ABDE6383-1g
10 mM TrisSigma-Aldrich, ABDT1503
1 ml şırınga Omnifix -FB.Braun, Almanya9161406V
26  G iğnesi (0.45 * 25 mm)B.Baun, Almanya4657683
RPMI 1640PAA, AvusturyaE15-039
At SerumuGibco, ABD16050-122
MES hidratSigma-Aldrich, ABDM2933
0.2 & mu; M şırıngaya monte filtreSartorius, Almanya83.1826.001
olarak mevcuttur

Kaynaklar

  1. Greenberg, S., Grinstein, S. Phagocytosis and innate immunity. Curr. Opin. Immunol. 14, 136-145 (2002).
  2. Jutras, I., Desjardins, M. Phagocytosis: at the crossroads of innate and adaptive immunity. Ann. Rev. Cell Dev. Biol. 21, 511-527 (2005).
  3. Iwasaki, A., Medzhitov, R. Regulation of adaptive immunity by the innate immune system. Science. 327, 291-295 (2010).
  4. Stuart, L., Ezekowitz, R. Phagocytosis: elegant complexity. Immunity. 22, 539-550 (2005).
  5. Blander, J. M., Medzhitov, R. On regulation of phagosome maturation and antigen presentation. Nat. Immunol. 7, 1029-1035 (2006).
  6. Flannagan, R. S., Jaumouille, V., Grinstein, S. The cell biology of phagocytosis. Annu. Rev. Pathol. 7, 61-98 (2012).
  7. Vieira, O. V., Botelho, R. J., Grinstein, S. Phagosome maturation: aging gracefully. Biochem. J. 366, 689-704 (2002).
  8. Haas, A. The phagosome: compartment with a license to kill. Traffic. 8, 311-330 (2007).
  9. Flannagan, R. S., Cosio, G., Grinstein, S. Antimicrobial mechanisms of phagocytes and bacterial evasion strategies. Nat Rev Microbiol. 7, 355-366 (2009).
  10. Luzio, J., Pryor, P., Bright, N. Lysosomes: fusion and function. Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 8, 622-632 (2007).
  11. Huotari, J., Helenius, A. Endosome maturation. EMBO J. 30, 3481-3500 (2011).
  12. Luzio, J. P., et al. Lysosome-endosome fusion and lysosome biogenesis. J. Cell. Sci. 113 (pt 9), 1515-1524 (2000).
  13. Eissenberg, L., Goldman, W. Fusion of lysosomes with phagosomes containing Histoplasma capsulatum: use of fluoresceinated dextran). Adv. Exp. Med. Biol. 239, 53-61 (1988).
  14. de Souza Carvalho, C., et al. Internalization, phagolysosomal biogenesis and killing of mycobacteria in enucleated epithelial cells. Cell. Microbiol. 13, 1234-1249 (2011).
  15. Wang, Y. L. Differential and sequential delivery of fluorescent lysosomal probes into phagosomes in mouse peritoneal macrophages. J. Cell Biol. 104, 1749-1754 (1987).
  16. Harrison, R. E., Bucci, C., Vieira, O. V., Schroer, T. A., Grinstein, S. Phagosomes Fuse with Late Endosomes and/or Lysosomes by Extension of Membrane Protrusions along Microtubules: Role of Rab7 and RILP. Mol. Cell. Biol. 23, 6494-6506 (2003).
  17. Huynh, K. K., et al. LAMP proteins are required for fusion of lysosomes with phagosomes. EMBO J. 26, 313-324 (2007).
  18. Kasmapour, B., Gronow, A., Bleck, C., Hong, W., Gutierrez, M. Size-dependent mechanism of cargo sorting during lysosome-phagosome fusion is controlled by Rab34. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 109, 20485-20490 (2012).
  19. Snijder, B., et al. Population context determines cell-to-cell variability in endocytosis and virus infection. Nature. 461, 520-523 (2009).
  20. Knight, M., Roberts, S., Lee, D., Bader, D. Live cell imaging using confocal microscopy induces intracellular calcium transients and cell death. Am. J. Physiol. Cell Physiol. 284, 9 (2003).
  21. Hemmi, H., et al. A Toll-like receptor recognizes bacterial DNA. Nature. 408, 740-745 (2000).
  22. Underhill, D., Ozinsky, A. Toll-like receptors: key mediators of microbe detection. Curr. Opin. Immunol. 14, 103-110 (2002).
  23. Bohdanowicz, M., Cosío, G., Backer, J., Grinstein, S. Class I and class III phosphoinositide 3-kinases are required for actin polymerization that propels phagosomes. J. Cell Biol. 191, 999-1012 (2010).
  24. Hoffmann, E., et al. Initial receptor-ligand interactions modulate gene expression and phagosomal properties during both early and late stages of phagocytosis. Eur. J. Cell Biol. 89, 693-704 (2010).
  25. Yates, R., Hermetter, A., Russell, D. The kinetics of phagosome maturation as a function of phagosome/lysosome fusion and acquisition of hydrolytic activity. Traffic. 6, 413-420 (2005).
  26. Savina, A., et al. NOX2 controls phagosomal pH to regulate antigen processing during crosspresentation by dendritic cells. Cell. 126, 205-218 (2006).
  27. Yates, R., Hermetter, A., Russell, D. Recording phagosome maturation through the real-time, spectrofluorometric measurement of hydrolytic activities. Methods Mol. Biol. 531, 157-171 (2009).
  28. Russell, D., Vanderven, B., Glennie, S., Mwandumba, H., Heyderman, R. The macrophage marches on its phagosome: dynamic assays of phagosome function. Nat. Rev. Immunol. 9, 594-600 (2009).
  29. Hoffmann, E., et al. Autonomous phagosomal degradation and antigen presentation in dendritic cells. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 109, 14556-14561 (2012).
  30. Tan, S., Sukumar, N., Abramovitch, R., Parish, T., Russell, D. Mycobacterium tuberculosis Responds to Chloride and pH as Synergistic Cues to the Immune Status of its Host Cell. PLoS Pathog. 9, (2013).
  31. Aziz, M., Yang, W. -L., Wang, P., et al. Measurement of phagocytic engulfment of apoptotic cells by macrophages using pHrodo succinimidyl ester. Current protocols in immunology. Coliganet, J. E., et al. 14, (2013).
  32. Rogers, L., Foster, L. The dynamic phagosomal proteome and the contribution of the endoplasmic reticulum. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 104, 18520-18525 (2007).
  33. Russell, D. G., Vanderven, B. C., Glennie, S., Mwandumba, H., Heyderman, R. S. The macrophage marches on its phagosome: dynamic assays of phagosome function. Nat. Rev. Immunol. 9, 594-600 (2009).
  34. Savina, A., Vargas, P., Guermonprez, P., Lennon, A. -M., Amigorena, S. Measuring pH, ROS production, maturation, and degradation in dendritic cell phagosomes using cytofluorometry-based assays. Methods. Mol. Biol. 595, 383-402 (2010).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Etiketler

fagozom olgunlaşmasıcanlı hücre görüntülemekonfokal mikroskopizaman ayarlı görüntülemelizozomal kargo iletimiIgG kaplı mikroboncuklardekstran probukemik iliği makrofajlarıfloresan mikroskopi
Canlı Makrofagların içinde Phagolysosome Biogenesis'den Çalışması
Bize Ulaşın
Kütüphaneye Öner

Gizlilik

Kullanım Koşulları

Politikalar

Telif Hakkı © 2026 MyJoVE Corporation. Tüm hakları saklıdır.