Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliğiniz gereklidir. Giriş yapın veya ücretsiz denemenizi bugün başlatın.

Yöntem makalesi

Kaynaklı Nöronlar içine Yetişkin İnsan Beyninin perisit türetilmiş Hücreler Lineage yeniden programlama

11.6K görüntüleme

⸱

DOI:

10.3791/51433

⸱

12 Mayıs 2014

 ,  ,  , 
1Department of Physiological Genomics, Institute of Physiology, Ludwig Maximilians University Munich, 2Tumor Biology Lab, Neurosurgical Clinic, Ludwig-Maximilians University Munich, 3Institut für Biochemie, Emil-Fischer-Zentrum, Friedrich-Alexander-Universität Erlangen-Nürnberg, 4Institute of Physiological Chemistry and Focus Program Translational Neuroscience, Johannes Gutenberg University Mainz

Bu makalede

Özet

Doğrudan soy-yeniden programlama için beyin-yerleşik hücreleri hedef beyin onarımı için yeni perspektifler sunuyor. Burada yetişkin insan serebral korteks beyin-yerleşik perisitlerden için zenginleştirilmiş kültürleri hazırlamak ve Sox2 ve Ascl1 faktörleri transkripsiyon retrovirüs aracılı ifade tarafından uyarılan nöronların bu dönüştürmek için nasıl bir protokol açıklar.

Özet

Uyarılan nöronların (INS) içine non-nöronal hücrelerin doğrudan soy-yeniden programlama nörogenezi altında yatan moleküler mekanizmaları içgörü sağlamak ve in vitro modelleme veya hastalıklı beyin tamiri için yeni stratejiler etkinleştirebilirsiniz. Ins içine doğrudan dönüşüm için müsait belirlenmesi beyin-yerleşik olmayan nöronal hücre tipleri hasarlı beyin dokusu içinde, yani yerinde böyle bir yaklaşımı başlatılması için izin verebilir. İşte bu öncül yerine yetişkin insan beyninden türetilen hücrelerin teşhis etmek için bir girişimde gelişmiş bir protokol açıklar. Bu protokol şunları içerir:, yetişkin insan beyin biyopsileri elde serebral korteks, insan hücreleri (1) kültürlenmesini; (2) in vitro (yaklaşık 2-4 hafta gerektiren) genleşme ve immunositokimya ile kültür karakterizasyonu ve akış sitometrisi; (3) anti-PDGF reseptörü β-ve anti-CD146 antikorları kullanılarak (FACS) floresan-aktive edilmiş hücre ile zenginleştirme;(4), nörojenik transkripsiyonuna retrovirüs aracılı iletim ve Sox2 ascl1 faktörleri; (5) ve son olarak, bağışıklık kimyası edilen perisit türetilmiş kaynaklı nöron (PdiNs) 'nin karakterizasyonu (8 hafta için 14 gün retroviral iletimini sonra). Bu aşamada, ins yama kelepçe kayıt kendi elektriksel özellikleri için tanınacak. Bu protokol, fonksiyonel insan ins içine beyin yerleşik perisitler in vitro soy dönüşüm için son derece tekrarlanabilir prosedürü sağlar.

Giriş

Da farklılaşma potansiyel bir bolluk ile donatılmış bulunmaktadır uyarılmış pluripotent kök hücreleri içine somatik hücreler (iPSCs), yeniden programlamayı aksine, doğrudan yeniden programlama başka içine belirli bir hücre tipi düz dönüşüm için amaçlanmıştır. Hastalık modelleme ve potansiyel hücre bazlı terapiler bağlamında kendi uygulama ile ilgili olarak, her ikisi de yeniden programlama yaklaşımlar belirli avantajları ve dezavantajları vardır. IPSCs (i) yeniden programlama hücrelerin neredeyse sonsuz bir kaynak içerir; (Ii) genetik mühendisliği için izin verir; (Iii) a, neredeyse sınırsız farklılaşma potansiyele sahip endows. Bu hücreler, hücre bazlı terapiler için kullanılacak olan, ancak, iPSCs önemli dezavantajları farklılaşmamış hücreleri (in vivo teratoma formasyonu) tümöre neden olması ve ex vivo yetiştirme ve müteakip transplantasyon için ihtiyaç risk taşımaktadır. Buna karşılık, direkt soy yeniden programlama arzu edilen hücrelerin düşük verim tarafından kısıtlanırBaşlangıç ​​nüfusun hedef hücrelerin sayısı ile doğrudan ilişkili, ancak soy programlanabilir hücre nakli 1,2 üzerinde herhangi bir tümör oluşturucu bir risk sergilemek için görünür avantajına sahiptir ki; ayrıca, doğrudan yeniden programlama da örneğin, bu hücrelerin bu şekilde nakli ihtiyacını ortadan kaldırmak, gerekli olacaktır organ içinde, in situ sağlanabilir.

Bu düşünceyle, bizim laboratuvar nörodejeneratif hastalıkların hücre bazlı terapiler yönelik yeni bir yaklaşım olarak ins içine soy-yeniden programlanması beyin yerleşik hücrelerinin olasılığını izlemiştir. Potansiyel olarak soy tekrar programlanması için, hücresel hedefler olarak kabul edilebilir Brain yerleşik hücreler farklı macroglia türleri (astrositler, NG2 hücreleri ve oligodendrosit), mikroglia ve mikrovasküler ilişkili hücrelerin (endotelyal hücreler ve perisitler) içerir. Biz kapsamlı serebral kor astroglial in vitro yeniden programlama potansiyel inceledikErken doğum sonrası farelerin 3-5, tex. Yetişkin insan beyninde doğrudan soy-yeniden programlama için benzer uygun hücre kaynakları arayışı içinde, başarıyla INS ve perisitlerin sergi işaretlerinden içine programlanabilir bir hücre popülasyonu karşılaştı. Burada genişletmek ve in vitro olarak bu hücreleri zenginleştirmek ve son olarak da başarılı bir şekilde içine (% 25-30 aralığında), bu in vitro genişletilmiş hücreleri önemli bir kısmını yeniden programlamak için, yetişkin insan beyni biyopsilerinden bu hücrelerin hasat için nasıl bir protokol açıklar INS. Tekrar-iki transkripsiyon faktörleri, Sox2 ve ascl1 eşzamanlı retrovirüs aracılı ko-ifade ile elde edilebilir. Bu PdiNs tekrarlayan aksiyon potansiyeli ateşleme yeteneğini kazanmak ve sinir ağları içine entegre kabiliyetlerini gösteren diğer nöronlar gibi sinaptik hedeflere hizmet bulundu. Bizim protokol ins içine yetişkin insan beyni perisitler izolasyon ve soy dönüşüm için basit bir prosedürü sağlar.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

1.. İzolasyon ve Yetişkin İnsan Beyin Hücrelerinin ekimi

Insan dokusu ile ilgili deneyler araştırma amacıyla insan malzeme kullanımı ilgili tüm devlet ve kurumsal düzenlemelere uygun olarak yapılmalıdır. Mevcut protokol LMU Münih Tıp Fakültesi etik kurulu ve tüm hastalardan yazılı onam tarafından onayı doğrultusunda geliştirilmiştir.

Insan yetişkin beyin korteks hazırlanması kültürlerinin Bu protokol, temporal lob epilepsi ya da diğer derin non-travmatik, habis olmayan lezyonlardan muzdarip her iki cinsten hasta örneği kullanılarak kurulmuştur. Bu nedenle beyin lezyona erişim kanalı özel olarak oluşan cerrahi odadan elde edilen ve doku sağlıklı kabul edilir. Hastaların yaş aralığı 19-70 yıl idi.

  1. Isı ile inaktive edilmiş fetal dana serumu büyütme ortamı ekleyerek hazırlamakGlutamax DMEM yüksek glikoz (FCS)% 20 FCS bir nihai konsantrasyon elde edilmiştir. 500 ml büyüme ortamı, toplam 5 ml penisilin / streptomisin ekleyin. Bu ve uygun bir laminer akış kaputu steril kültür koşulları gerektiren sonraki tüm adımları uygulayın.
  2. CaCI2 ve işleme kadar buz üzerinde HEPES (10 mM nihai konsantrasyon) de dahil olmak üzere MgCl2 (HBSS) ortamı ile Hanks dengeli tuz çözeltisi içinde cerrahi odadan elde edilen yetişkin insan beyin biyopsisi tutun. Kısa sürede işleme başlayın.
  3. 65 mm petri içine doku transferi ve iki steril tek kullanımlık neşter kullanarak küçük parçalar halinde kıyma, tek hücre içine ayrışma başlatmak için. Enzimatik sindirme için, 15 ml konik bir tüp içinde 3-6 ml TrypLE kullanımı ve bir su banyosu içerisinde 37 ° C'de 15-30 dakika inkübe edilir.
  4. Ayrışmasını kolaylaştırmak için önceden ısıtılmış büyüme ortamı 1 hacim ekleyin ve hafifçe ilk kullanarak yukarı ve aşağı doku parçaları içeren çözüm çiğnemekHücre süspansiyonunun homojen olana dek, bir cam Pasteur pipet kullanılarak ve ardından, 5 ml kullanılıp atılabilir pipet. Tipik olarak, çoğunlukla beyaz madde aşağıdakilerden oluşan bir miktar doku parçaları, süspansiyon içinde kalır.
  5. 5 dakika boyunca 157 x g Spin ve büyüme ortamı içinde uygun miktarda (kaplanmamış T75 kültür şişesi başına 10 mL) 'de pelletini. Büyüklüğü 5-10 mm çaplı bir biyopsi için, bir T75 kültür şişesi kullanın ve daha büyük örneklerin durumunda, bu çıkarım.
  6. % 5 CO2 ve% 5 O2 ile 37 ° C inkübatör içine hücreleri yerleştirin.
  7. Hücreler birleşik hale gelmiş kadar her 3-4 günde bir ortamın yarısı değiştirin. Bu genellikle (pasaj 0 [P0] olarak da adlandırılır), iki haftaya kadar sürer.

Yetişkin İnsan Beyin Hücreleri 2.. In vitro Genişleme ve Karakterizasyonu

  1. In vitro genişlemesi:
    1. Kültür ortamı aspire ve fosfat tamponlu tuz (PBS) ile yıkamak, oda t tutulduemperature, 3 mi TrypLE eklemeden önce.
    2. Hücrelerin en müstakil kadar 5-10 dakika boyunca 37 ° C'de inkübe edilir. Yavaşça hücrelerin kaldırma kolaylaştırmak için şişeler dokunun; büyüme ortamının 3 hacimleri ilave edildikten sonra, 15 ml konik bir tüp içine aktarmak ve hücreler, 5 dakika boyunca 157 x g hızında aşağı spin ve büyüme ortamının uygun miktarda hücreler tekrar süspansiyon haline getirin.
    3. Geçiş yeni T75 hücre kültürü şişelerine uygun verim için 1:03 oranında hücreler.
      Not: Biz azaltılmış yeniden programlama verimlilik herhangi bir belirti olmadan P5 kadar bu hücreler pasajlanır var. Kültür endotelyal hücrelerin önemli bir kısmını (CD34 ekspresyonu ile değerlendirilen) içeren P0 da, takip eden geçitler de bu sayı ihmal edilebilir hale gelir.
  2. Yetişkin insan beyin kültürleri karakterizasyonu:
    1. İmmünositokimya:
      1. Poli-D-lizin kaplı cam kapak üzerine hücreler, tohum ~ 60,000 hücre karakterizasyonu için, 500 ul taze büyüme mediu fişleri24 oyuklu doku kültür plakaları içinde m ve% 5 CO2 ve% 5 O2 ile 37 ° C'de inkübe edin.
      2. Kültürlenmiş insan beyin hücreleri immünositokimyasal analizi için orta kaldırmak ve 1 ml PBS ile 3 kez yıkayın.
      3. Oda sıcaklığında 15 dakika boyunca PBS içinde% 4 paraformaldehit 500 ul ekleyerek, hücreler.
      4. Cam kapak, uygun bir nemli bir boyama odası içine sığar aktarın ve 80 ul PBS ile oda sıcaklığında 1 saat boyunca% 3 sığır serum albümini (BSA) ve% 0.5 Triton X-100 içeren bloke eder.
      5. Aynı çözelti içinde seyreltilmiş primer antikorların (seyreltme faktörler spesifik reaktifler ve ekipman tablo bakınız) ilave edilir ve oda sıcaklığında, 4 ° C ya da 1 saat sonra bir gece boyunca inkübe edilir.
        Not: kültür bu aşamada, hücrelerin önemli bir ama farklı fraksiyon (PDGFRβ) platelet türevli büyüme faktörü reseptörü β için immünoreaktif olan, farklılaşma 146 (CD146), kondroitin sülfat NG2 proteo kümeglukanıdır ve düz kas aktini (SMA), mikrovasküler ilişkili perisitlerden karakteristik yani belirteçleri. Yalnızca küçük bir bölümü (<% 1) astroglial belirteçleri glial fibriller asidik protein (GFAP) ve S100β ifade eder. Ayrıca, bu aşamada kültür nöronal işaretleyici βIII-tubulin ifade eden bir hücre yoksun olmalıdır. Farklı markerlerinin co-etiketlenmesi için çok sayıda birincil antikor kombinasyonları kullanılır. Glial, nöronal, endotel ve perisit markerlerinin sentezlenmesi başka bir onay da, ters transkripsiyon ve (bu protokol açıklanmayan) kantitatif gerçek zamanlı polimeraz zincir reaksiyonu ile elde edilebilir.
      6. Ile inkübe edildikten sonra, birincil antikorlar, 1 ml PBS ile üç kez yıkama ve boyama çözeltisine (uygun seyreltiler olarak) karşılık gelen ikincil antikor ekleyin ve karanlıkta, oda sıcaklığında 1 saat inkübe edilir. Hücreler 3x PBS ile yıkayın. Gerekirse, monte edilmeden önce oda sıcaklığında 5 dakika boyunca DAPI ile boyama dahilsıcaklığı.
      7. Montaj orta solmaya kullanın ve Epifloresans bir mikroskop ya da bir konfokal mikroskop kullanılarak kapak fişleri analiz.
    2. Flow sitometri:
      1. Akış sitometrisi kullanılarak yüzey işaretleyici ifade analizi için, kaplanmamış T25 veya T75 hücre kültürü şişelerinde hücreleri konfluansa kadar büyür.
      2. PBS +% 0.5 BSA içeren boyama çözeltisi içinde tekrar süspansiyon ve daha önce tarif edildiği gibi TrypLE kullanarak hücreleri çıkarın. Renk reaksiyonu başına, boyama çözeltisinin 100 ul 100,000-200,000 hücreler tekrar süspansiyon haline getirin. (CD146-FITC, CD140b-PE, CD34-APC, CD13-FITC, ilgili izotop kontrol antikorları) kullanılan antikor başına tek boyama reaksiyonları hazırlayın.
      3. Doğrudan hücre süspansiyonu içine (seyreltmeleri spesifik reaktifler ve ekipman için tabloya bakınız) her bir boyama çözeltisine florokrom-konjuge antikor ekleyin ve karanlıkta 30 dakika boyunca 4 ° C'de inkübe edin.
      4. 500 ul PBS ile hücreler üç defa yıkamak ve her arasında aşağı doğru döndürün5 dakika boyunca 157 x g yıkama aşaması.
      5. FACS tüplere bir hücre süzgecinden (70 um) üzerinden 0.5-1 mi boyama solüsyonu ve transfer hücrelerde hücre pelletini. Işığa maruz örnek koruyun.
      6. Önce FACS alet yerleştirerek için Vortex örnekleri.
      7. Canlı hücrelerin analiz ve enkaz ve hücre agrega, FSC-A kapısı ve SSC-A dışlamak için. Hücre duplets özellikle FSC-A ve FSC-W tarafından Geçitli. Ilgili florokroma konjüge eş izotipli antikor kontrolü ile kapıları belirlenen hücre yüzeyi işaretçileri için doğru yolluk koşullarını belirlemek. Daha sonra antikor-bağlı hücrelerin oranını belirler.

Flüoresan aktifleşmiş hücre sıralaması ile perisit türetilen Hücreler 3. Zenginleştirme

  1. FACS 70 mikron meme kullanılarak sıralama ile önce transdüksiyonu ile (büyüme ortamı içinde yeniden süspansiyon haline getirilmiş) perisit hücre popülasyonu arındırın. C ile bir arada CD34-APC kullanınD140b-PE ve CD146-FITC perisitlerden seçmek için. CD34-negatif, CD140b-ve CD146 pozitif hücreler için sıralar.
  2. 24 oyuklu doku kültürü plakalarında kayma poli-D-lizin kaplı cam kapak üzerine büyüme ortamı ve plaka içindeki kriteri hücrelerini toplamak ve% 5 CO2 ve% 5 O2 ile 37 ° C'de inkübe edin.
  3. Sıralama 48 saat sonra, taze büyüme ortamı ile orta yerine Protokol ve 4'te tarif edildiği gibi transdüksiyonunu gerçekleştirmek.

4. Retrovirütik perisit türetilmiş Hücrelerinin İletimi ve İsteyerek Nöronlar içine yeniden programlanması

Not: retroviral parçacıkları taşıma yerel biyogüvenlik kurallarına bakın. Almanya'da burada istihdam retrovirüslerde kullanımı biyogüvenlik düzeyi 2 gerektirir. Retroviral parçacıkların üretim protokolüne 6'ya bakın. Tekrar programlanması için kullanılan retroviral yapılar için Karow ve arkadaşlarına bakınız. (2012). Retrovirüsler, VSV-G (vesiküler stomatit virüsü-gliko psödotiplendirilmiş idiprotein) 5. Üretim için Gavrilescu ark 6 başvurun.

  1. Önce poli-D-lizin kaplı cam kapak üzerine retroviral transdüksiyon tohum ~ 60000 hücreleri 24 saat 24 oyuklu doku kültürü plakaları içinde 500 ul taze büyüme ortamı içinde kayar ve% 5 CO2 ve% 5 O2, 37 ° C'de inkübe .
  2. Ertesi gün, 500 ul taze, önceden ısıtılmış bir büyüme ortamı ile büyüme ortamının yerini ve retroviral parçacıklar (kontrol için pCAG-IRES-DsRed, özellikle de laboratuarda protokol kurulması esnasında), pCAG-ascl1 içeren ilgili konsantre edildi yüzer 1 ul ekle pCAG-Sox2 IRES-GFP, IRES-DsRed.
  3. Bir gün sonra, hücreler, viral partiküller dahil olmak üzere orta kaldırmak ve taze 1 ml eklemek Glutamax ile 49 ml DMEM yüksek glükoz ve 1 ml B27 serum içermeyen ek oluşan, B27-farklılaştırma ortamı önceden ısıtılmış. 5 37 ° C 'de kültür içinde hücreleri korumak% CO 2 ve ins olgun olarak tekrarlayan orta değişiklikler zararlı olmak gibi orta değiştirmeden 4-8 hafta boyunca% 5 O 2.

İmmünositokimya tarafından Kaynaklı Nöronlar 5. Karakterizasyonu

  1. Kalıt aktarımlı hücrelerin hücre kimliğini belirlemek için, nöronal bir fenotip elde edilmesini göstermek için, özellikle, belirli reaktiflerin tabloya bakınız, antikorlar ve bunların ilgili dilüsyonları için (örneğin, BIII-tubulin, MAP2 ve Neun gibi nöronal antijenlere karşı immünsitokimya gerçekleştirmek ve ekipmanlar; 2.2.1 belirtildiği gibi) aynı prosedürü uygulayın.
  2. E14 fare beyin kortekslerinden elde edilen nöronlarla PdiNs, ko-kültür, bu hücrelerin olgunlaşmasını geliştirmek için. Bu amaçla, serebral korteks incelemek ve bir ateş cilalı cam Pasteur pipeti ile mekanik olarak doku ayırmak. Sox2 ve ascl1 kodlayan yeniden iletimi ile aşağıdaki perisit türetilmiş hücreler, 2-3 hafta kültürlerine 10.000-50.000 sıçangil nöronlar eklemetroviruses ve kültürü devam etmektedir. Iletilmiş hücreler canlı epifluoresan veya GFP ve DsRed için İmmunositokimyayı şu ya da muhabir (GFP ve DsRed) ifadesi ile kemirgen nöronların ayırt edilebilir.
  3. , Kemirgen nöronlar tarafından PdiNs üzerine sinapsların oluşumunu değerlendirmek veziküler glutamat taşıyıcısı 1 (vGluT1) olarak veziküler nörotransmiter reseptörlerine karşı İmmunositokimyayı gerçekleştirmek için.
  4. Elektriksel özelliklerine (aksiyon potansiyelleri üreten yani yeteneği) ve patch-kelepçe elektrofizyoloji tarafından fonksiyonel sinapsların kurulması için transduced hücreleri inceleyin. Prosedürün ayrıntıları için bkz Heinrich ve ark. (2011).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

Bu protokol sonra başarılı bir şekilde insan yetişkin beyin korteksi bir örnekten bir kültür oluşturulması ilk sonuç kültürün hücre bileşimin tanımlanması oluşur. Hücre tipi özel proteinler için İmmünositokimya farklı hastalar (Şekil 1A) numune türetilen kültürleri arasında heterojenite önemli derecede ortaya koymaktadır. Akış sitometrisi ile belirlenir olarak (ortalama olarak ~% 75, 30 ile en fazla% 99 kadar) PDGFRβ eksprese eden hücrelerin önemli bir kısmı her zaman vardır; Böyle CD146, NG2 ve CD13 gi...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

Bu protokol in vitro genişlemesi ve zenginleştirme perisit türetilen hücrelerin yetişkin insan serebral korteksinden izole takip eden ve nörojenik transkripsiyon retrovirüs aracılı ifade tarafından INS içine sonraki dönüşüm ve Sox2 Ascl1 faktörleri açıklamaktadır. Anılan protokol, sonuçta yetişkin beyninin in vivo ortam haline doğrudan dönüşüm yaklaşımı çevirmek için akılda hedefi ile, potansiyel olarak da glia nöronların içine beyin-yerleşik hücrelerinin soy-dönüşüm ve çalışma vitro sistemde ...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

Yazarlar ifşa hiçbir şey yok.

Teşekkürler

Biz bu protokolün geliştirilmesi sırasında onu girişi için Dr Magdalena Götz minnettarız. Biz cömertçe Sox2 kodlama dizisi ile bize sağlamak için Dr Marius WERNIG (Stanford Üniversitesi) teşekkür ederim. Biz de virüs üretimi için Dr Alexandra Lepier için çok müteşekkiriz. Bu çalışma Deutsche Forschungsgemeinschaft (4182/2-2 BE) ve BMBF (01GN1009A) BB, ve Bavyera Bilimler Devlet Bakanlığı, Araştırma ve MK ve BBCs için Sanatları uluslu SYSTHER-fon alınan hibe ile desteklenmiştir INREMOS Sanal Enstitüsü (Eğitim ve Araştırma Alman ve Sloven Federal Bakanlıklar) ve DFG (SFB 824).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
anti-CD140b-PEBD Biosciences5588211:100
anti-CD146-FITCAbD SerotecMCA2141FT1:100
anti-CD13-FITCAbD SerotecMVA1270A488Tkullanın 1:100
anti-CD34-APCBD Biosciences560940kullanın
;Hücre Sinyalizasyonu3169S,1:200
anti-CD146Ab757691:400
anti-NG2MilliporeAB53201:400
anti-SMASigma-AldrichA25471:400
anti-&beta kullanır; III-tubulinSigma-AldrichT86601:400
anti-MAP2Sigma-AldrichM44031:200
anti-GFAPSigma-AldrichG3893kullanır; 1:600
anti-GFPAves LabsGFP 10-20kullanır; 1:1.000
anti-RFPChromotek5F81:500
anti-S100 ve beta kullanır;Sigma-AldrichS25321:300
anti-NeuNMilliporekullanır, MAB3771:200
anti-GABASigma-AldrichA20521:500
anti-CalretininMilliporeAB50541:500
anti-vGluT1SYstems1355111:1,000
Sıçan IgG1 izotip kontrolü kullanır, FITCAbD Serotec11-4301-811:100
Sıçan IgG1 izotip kontrolü PEAbD Serotec12-4301-811:100
Sıçan IgG1 izotip kontrolü kullanın APCAbD Serotec17-4301-811:100
TrypLEInvitrogen12605-010
DMEM, yüksek glikoz, GlutaMAXInvitrogen61965
B27 serumsuz takviyeInvitrogenkullanın
fetal buzağı serumuInvitrogen10106-16956 ° C'de inkübasyon yoluyla ısı inaktivasyonu gerçekleştirir; 30 dakika boyunca C
Penisilin-streptomisinİnvitrojen15140122
HBSS (Hanks Dengeli Tuz Çözeltisi)CaCl
<2 / sub> ve MgCl < sub <> 2 / sub> (D-PBS, 1x) olmadan Dulbecco'nun PBS'si (D-PBS, 1x)İnvitrojen14190
HEPESSigma-AldrichH3375
Poli-D-lizin hidrobromür (PDL)Sigma-AldrichP0899
PFA (paraformaldehit)Sigma-AldrichP1648
Sığır serum albüminiSigma-AldrichA9418
Triton X-100Sigma-AldrichT9284
DAPI (4 ve asal;, 6-Diamidin-2-fenilindol) dilaktatSigma-Aldrich042M4005
Aqua-Poly/ MountPolysciences18606-20
Polipropilen yuvarlak tabanlı borular ve nbsp;BD Biosciences352063
Hücre süzgeç kapaklı polistiren yuvarlak tabanlı tüpler BD Biosciences352235
24 oyuklu plakalarOrange Scientific5530305
75 cm2 kültür şişeleriGreiner Bio-One658175
25 cm2 kültür şişeleriGreiner Bio-One690175
Tek kullanımlık pipetler 10 mlSarstedt86.1254.001
Cam Pastör pipetler (150 mm)FisherbrandFB50251
Cam lameller 12 mm çapındaMenzelCB00120RA1
Cerrahi tek kullanımlık neşterler B. Braun5518083
Doku kültürü yemekleri Greiner Bio-One633180
Konik tüpler 15 mlBD Biosciences352095
Laminer akış başlığı
15 ml ve 50 ml tüpler için adaptörlü santrifüj ve açılır rotorHettich Lab Technology1406
Flow sitometri hücre sıralayıcısı: FACSDiva yazılımı ile FACSAria l BD Biosciences
Humified hücre kültürü inkübatörüEppendorf Galaxy 170R
Wather banyosu 37 &°C; C
FACSFlow kılıf sıvısı BD Biosciences342003
Epifloresan mikroskobu BX61Olympus
Konfokal mikroskop LSM710Zeiss
, Abcam, , , , , , kullanır; kullanır; kullanır; ; , , kullanır, , kullanır, , kullanır 17504044,

Kaynaklar

  1. Caiazzo, M., et al. Direct generation of functional dopaminergic neurons from mouse and human fibroblasts. Nature. 476, 224-227 (2011).
  2. Kim, J., et al. Functional integration of dopaminergic neurons directly converted from mouse fibroblasts. Cell stem cell. 9, 413-419 (2011).
  3. Duan, B., et al. Interactions between water deficit, ABA, and provenances in Picea asperata. Journal of experimental botany. 58, 3025-3036 (2007).
  4. Heinrich, C., et al. Directing astroglia from the cerebral cortex into subtype specific functional neurons. PLoS Biol. 8, (2010).
  5. Heinrich, C., et al. Generation of subtype-specific neurons from postnatal astroglia of the mouse cerebral cortex. Nat Protoc. 6, 214-228 (2011).
  6. Gavrilescu, L. C., Van Etten, R. A. Production of replication-defective retrovirus by transient transfection of 293T cells. J Vis Exp. , (2007).
  7. Karow, M., et al. Reprogramming of pericyte-derived cells of the adult human brain into induced neuronal cells. Cell stem cell. 11, 471-476 (2012).
  8. Ortega, F., et al. Using an adherent cell culture of the mouse subependymal zone to study the behavior of adult neural stem cells on a single-cell level. Nat Protoc. 6, 1847-1859 (2011).
  9. Ladewig, J., et al. Small molecules enable highly efficient neuronal conversion of human fibroblasts. Nat Methods. 9, 575-578 (2012).
  10. Espuny-Camacho, I., et al. Pyramidal neurons derived from human pluripotent stem cells integrate efficiently into mouse brain circuits in vivo. Neuron. 77, 440-456 (2013).
  11. Davila, J., Chanda, S., Ang, C. E., Sudhof, T. C., Wernig, M. Acute reduction in oxygen tension enhances the induction of neurons from human fibroblasts. J Neurosci Methods. 216, 104-109 (2013).
  12. Vierbuchen, T., et al. Direct conversion of fibroblasts to functional neurons by defined factors. Nature. 463, 1035-1041 (2010).
  13. Pfisterer, U., et al. Direct conversion of human fibroblasts to dopaminergic neurons. Proc Natl Acad Sci USA. 108, 10343-10348 (2011).
  14. Lu, J., et al. Generation of Integration-free and Region-Specific Neural Progenitors from Primate Fibroblasts. Cell Rep. 3, 1580-1591 (2013).
  15. Yang, N., Ng, Y. H., Pang, Z. P., Sudhof, T. C., Wernig, M. Induced neuronal cells: how to make and define a neuron. Cell Stem Cell. 9, 517-525 (2011).
  16. Pang, Z. P., et al. Induction of human neuronal cells by defined transcription factors. Nature. 476, 220-223 (2011).
  17. Yoo, A. S., et al. MicroRNA-mediated conversion of human fibroblasts to neurons. Nature. 476, 228-231 (2011).
  18. Son, E. Y., et al. Conversion of mouse and human fibroblasts into functional spinal motor neurons. Cell Stem Cell. 9, 205-218 (2011).
  19. Lujan, E., Chanda, S., Ahlenius, H., Sudhof, T. C., Wernig, M. Direct conversion of mouse fibroblasts to self-renewing, tripotent neural precursor cells. Proc Natl Acad Sci USA. 109, 2527-2532 (2012).
  20. Thier, M., et al. Direct conversion of fibroblasts into stably expandable neural stem cells. Cell Stem Cell. 10, 473-479 (2012).
  21. Yang, N., et al. Generation of oligodendroglial cells by direct lineage conversion. Nat Biotechnol. 31, 434-439 (2013).
  22. Najm, F. J., et al. Transcription factor-mediated reprogramming of fibroblasts to expandable, myelinogenic oligodendrocyte progenitor cells. Nat Biotechnol. 31, 426-433 (2013).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Etiketler

Ak SitometrisiFloresanla Aktive Edilen H cre Ay klamaRetroviral Transd ksiyonmm nositokimyaYama Kenetleme KaydPDGFR beta AntikoruCD146 Antikoru
Kaynaklı Nöronlar içine Yetişkin İnsan Beyninin perisit türetilmiş Hücreler Lineage yeniden programlama
Bize ulaşın
Kütüphaneye tavsiye et

Gizlilik

Kullanım Şartları

İlkeler

Telif hakkı © 2026 MyJoVE Corporation. Tüm hakları saklıdır.