Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliğiniz gereklidir. Giriş yapın veya ücretsiz denemenizi bugün başlatın.

Yöntem makalesi

Tripanozomlann RNA Düzenleme karşı ilaçlar Tarama için bir Muhabiri olarak RNA Catalyst

8K görüntülenme

⸱

DOI:

10.3791/51712

⸱

22 Temmuz 2014

 ,  , 
1Department of Biochemistry, McGill University, 2Institute of Parasitology, McGill University, 3McGill Centre for Bioinformatics, McGill University

* These authors contributed equally

Bu makalede

Özet

Tripanosomatid patojenlerde benzersiz RNA düzenleme sürecini hedefleyen kimyasalların yüksek verimli taramasına uygulanabilen, oldukça hassas ribozim bazlı bir test bu yazıda açıklanmaktadır. İnhibitörler, RNA düzenleme sürecinin hipoteze dayalı analizi için araçlar olarak ve nihayetinde terapötik olarak kullanılabilir.

Özet

Önemli bir ilerleme trypanosom mitokondriyal RNA düzenleme mekanizmasını belirleyen yapılmıştır. Benzer bir şekilde, önemli bir ilerleme RNA düzenlemeyi katalize editosome kompleksin bileşenleri tespit yapılmıştır. Ancak, bu proteinlerin nasıl birlikte çalıştığını hala net değildir. Editosome karşı yüksek verimli bir ekrandan edilen kimyasal bileşikler, düzenleme çevrimi içinde bir veya daha fazla aşamasını bloke eden ya da etkileyebilir. Bu nedenle, yeni kimyasal bileşiklerin tanımlanması editosome fonksiyonu ve kesme düzeneği için değerli moleküler problar üretecektir. Önceki çalışmalarda, in vitro deneyler, düzenleme, radyo-etiketli RNA kullanılarak gerçekleştirildi. Bu deneyler zaman verimsiz ve yüksek verimli amaçlar için uygun, alıcıdır. Burada, homojen floresans-esaslı "karıştır ve ölçmek" RNA düzenleme izlemek için bir çekiç ribozim in vitro haberci deneyi sunulmuştur. Sadece bir RNA düzenleme bir sonucu olarakçekiç ribozim, bir flüoresan rezonans enerji transferi (FRET) oligonükleotid alt-tabaka bölünme geçirmektedir. Bu da, böylece bir sinyal üreten söndürücüden fluorofor ayrılması ile sonuçlanır. Editosome fonksiyonu bloke edildiğinde aksine, floresans sinyali söndürülür olacaktır. Bu in vitro RNA ya da düzenleme editosome fonksiyonunu inhibe kimyasallar yüksek yayılımlı tarama esnasında izlenmesi için genel olarak uygulanabilir olması gerekir, son derece hassas ve basit bir testtir.

Giriş

RNA düzenleme, bir post-transkripsiyonel mRNA modifikasyon bir işlem olup, ilk tripanosomatidlerde 1 keşfedilmiştir. O zamandan beri, önemli iş Tiypanosoma brucei 2,3 RNA düzenleme arkasındaki mekanizmayı inceleyerek yapılmıştır. Enzimatik reaksiyonlar bir dizi olarak, editosome, yaklaşık 20 protein bir çekirdek kompleksi, enerji üretim oksidatif fosforilasyon sisteminin çoklu bileşenleri için olgun mRNA mitokondriyal oluşturur. Katalitik olayların sırası kılavuzu RNA'lar (gRNAs) tarafından dikte gibi, endonükleolitik bölünme, üridilat (U) ekleme veya silme, ve ligasyon 4.

Çekirdek editosome kompleks proteinlerine ilave olarak, yardımcı bir dizi faktör de 5-7 tespit edilmiştir. Bu proteinler daha çok bağımsız kompleksleri gruplandırılmıştır görülür. Ancak, çekirdek editosome kompleks protein montaj sırası ve aksesuar ile çekirdek kompleks etkileşim kalıplarıkompleksleri belirlenecek henüz. Tripanosomatidlerde RNA düzenleme işlemini hedefleme kimyasal Disektörler sağlayabilir ki editosome kompleksinin oluşumu ve işlevi okuyan yardım. Ayrıca, birkaç editosome proteinler üzerinde fonksiyonel çalışmalar ilaç 8-12 hedef olarak potansiyellerini gösteren, farklı yaşam evrelerinde genelinde zorunluluk göstermiştir. Bu nedenle, editosome en bulunan inhibitörleri aynı zamanda tripanosomatidlerde karşı kurşun bileşikleri olarak hareket edebilir. Tripanosomatid neden olduğu hastalıklara karşı mevcut ilaçlar, toksik verimsiz ve 13,14 pahalı gibi bu, zamanında.

Bir etkili ve uygun in vitro deney RNA düzenlemeyi engelleyen özel inhibitörler için kimyasal evreni keşfetmek için gereklidir. Üç deneyleri geliştirilmiş ve editosome aktivitelerini izlemek için kullanılmıştır: vitro RNA düzenleme tahlilinde 15 (a) tam yuvarlak, (b) in vitro RNA düzenleme tahlilinde 16,17, ön ayrıldı and (c) çekiç ribozimi (HHR) deneyi 18-tabanlı. İlk iki deney radyoaktivite yardımıyla düzenlenmiş ürün (ATPase 6 mRNA) doğrudan görselleştirme dayanır. HHR-bazlı analiz düzenleme üzerine bir Ribozim davranmasına modellenmiştir ATPaz 6 mRNA değiştirilmiş bir sürümünü kullanır. Fonksiyonel Ribozim sonra özellikle bir muhabir olarak hizmet veren, radyo etiketli RNA substrat Cleaves. Son zamanlarda, Moshiri'nin et al. Geliştirilmiş bir 'karışımı ve ölçmek' radyo işaretli RNA alt-tabaka, bir flüoresan rezonans enerji transferi (FRET) alt-tabaka 19 ile değiştirildiği burada RNA düzenleme izlemek için in vitro tahlilinde raportör HHR-göre. Bu testin prensibi avantajlar şunlardır: (a) aktif ribozim ve alt-tabaka bölünme üretim düşük hacimli (örneğin 20 ul) aynı tüp içerisinde aynı anda meydana gibi, hızlı ve uygun bir karışım ve tahlilin ölçmek tür, (b ) bu radyoaktif etiketli malzemelerin kullanımı önler, (c) bir hassasiyeti olduğufloresan bir mikro-titre plaka biçiminde enstrümantasyon, ve (d)-gürültü oranı yüksek bir sinyal ile fforded. Bu tayin kullanılarak, saflaştırılmış editosome karşı bilinen RNA ligaz düzenleme inhibitörlerinin etkisi 19, teyit edilmiştir. Bu deney esas olarak T'den bütün editosomes karşı, RNA düzenleme önleyicilerinin hızlı tespit edilmesi için tahlil doğrulanmış brucei.

Şekil 1 ayrıntılı bir adım adım şemadır flüoresan bazlı vitro RNA düzenleme deneyde gösterilebilir. Bu protokol, ya in vitro RNA ya da düzenleme izleme kolayca çeşitli ölçekler bileşik kütüphanelerinin taranması için adapte edilmesi için kullanılabilir.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

Aşağıdaki protokol floresan RNA dayalı düzenleme tahlilini yapmak için prosedür açıklanmaktadır. Deney, tek bir PCR tüpü, deney kapsamına bağlı olarak, 96 oyuklu, veya 384 oyuklu plakalar içerisinde gerçekleştirilir. Daha sonra, floresans sinyali uygun bir gerçek zamanlı PCR algılama sistemi üzerinde okunabilir. Burada deney 384 oyuklu plakalar bağlamında tarif edilmektedir.

1.. Kültürleme T. brucei Hücreler

  1. T. için bir büyüme ortamı hazırlayın brucei formu hücreleri procyclic. Ortamı, 1 L için:
    1. 800 ml'lik mili Q suyu içinde 25.4 g SDM-79 tozu çözülür.
    2. 10 M NaOH ile 7.3 'e 2 NaHCO 3 g ve pH ekleyin.
    3. 900 ml, filtre ile sterilize bir son hacme nanopure su ekleyin.
    4. % 10 son konsantrasyonlara Fetal Bovine Serum (FBS), penisilin-streptomisin çözeltisi ve hemin (2.5 mg / ml) (v / v), 100 U / ml ve 7.5 mg / L idi.
  2. T <300 ml büyümekem> 1.5 x 10 7 hücre / ml 'lik bir yoğunluğa kadar 70 rpm'de çalkalanarak 28 ° C'de brucei 1.7A vahşi tip (procyclic form) hücreleri. Not: Bu aktif editosome 3 ml üretmelidir ~ 600 düzenleme reaksiyonlar için yeterli toplam protein, 0.5 mg.
  3. 4 ° C'de 10 dakika boyunca 6000 x g'de santrifüj ile hücreler hasat
  4. Soğutulmuş PBSG tamponu, 50 ml (10 mM Na 2 HPO 4, 10 mM NaH 2 PO 4, 145 mM NaCl ve 6 mM glukoz) ile pelet yıkayın ve 10 dk için 10,000 x g'de santrifüj ile tekrar hücrelerin aşağı spin 4 ° C.

Ham Mitokondri 2.. İzolasyonu

Not: Tüm adımlar editosome aktivitesini korumak için buz üzerinde ya da 4 ° C'de gerçekleştirilmelidir.

  1. DTE tamponu, 30 ml (1 mM Tris-HCl, pH 8.0 ve 1 mM EDTA) içinde yeniden süspanse hasat edilen hücreler. Yukarı okşayarak ve aşağı buz üzerinde en az 10 defa hücre zarı bozmak için bir 40 ml steril Dounce homojenleştirici (pre-soğutulmuş) kullanın.
  2. Tercihen mitokondri çökertmek için, 4 ° C'de 10 dakika boyunca 15.800 x g'de 0.25 M. Santrifüj bir son konsantrasyon elde etmek için homojenat için hemen 4.3 ml,% 60 sukroz (örneğin, 1.75 M w / v) ekleyin.
  3. STM tampon maddesi (20 mM Tris-HCl pH 8.0, 250 mM sukroz ve 2 mM MgCI2) 4.6 ml mitokondriyal pelletini. I, sırasıyla 0.3 mM ve 9 U / ml nihai konsantrasyonda 0.1 M CaCI2 13.8 ul ve RNase-barındırmayan DNase 4 ul ekleyin. Buz üzerinde 1 saat için karışımın inkübe edin.
  4. 4 ° C'de 10 dakika boyunca 15,800 xg'de DNase I Santrifüjü etkisiz hale getirmek için STE tampon 4,6 ml (20 mM Tris-HCl pH 8.0, 250 mM sukroz ve 2 mM EDTA) ekleyin
  5. 400 ul liziz tamponu (10 mM Tris-HCl pH 7.2, 10 mM MgCl2, 100 mM KCI, 1 ug / ml pepstatin, 1 mM DTT, ve 1 x tam EDTA içermeyen proteaz inhibitörü) ve bir transfer pelletini mikrofüj tüpü.
  6. % 1 a bir nihai konsantrasyona kadar% 10 Triton X-100 eklemend bir boru döndürücüde 4 ° C'de 15 dakika boyunca inkübe lizat.
  7. 4 ° C'de 15 dakika boyunca 17,000 x g santrifüj ile iki kez mitokondriyal lizat temizleyin; temizlenmiş süpernatan her tutma.

3.. Editosome Arıtma

  1. Dökün 10 ml 10% -30% (40 mM HEPES pH 7.9, 20 mM Mg (OAc) 2, 100 mM KCl 2x HHE gradyan tamponu kullanılarak, bir ultra santrifüj tüp içinde (v / v) gliserol lineer gradyan (Tablo 1), ve 2 mM EDTA) ve kullanma kılavuzunu takip ederek bir degrade yapımcısı.
  2. Dikkatlice gliserol gradyanın tepesinden çözeltisi 500 ul çıkarıp hafifçe silinir mitokondriyal lizat 500 ul yükleyin. Ultrasantrifüj işlemi kullanılarak 4 ° C'de 6 saat boyunca 178,000 x g'de Spin.
  3. 4 ° C 'de, gradyanın alt üst sıralı 500 ul fraksiyonlar toplamak Sonra kullanıma kadar -80 ° C'de sıvı azot ve mağaza kullanarak kesirler dondurma oturtun.

4. RNA hazırlanması

  1. 3 dakika boyunca 90 ° C'de ısıtma ile 1:1 'lik bir mol oranında, bir T7 yükseltici oligonükleotid (5'-TAATACGACTCACTATAGGG-3') ile T7 promotörü dizisi (Tablo 2) tamamlayıcı bir sekansı içeren ve oda sıcaklığında soğutulduktan ilgili DNA şablonu tavlama en az 10 dakika karıştırıldı.
  2. Kullanım kılavuzunu takip ederek in vitro transkripsiyon kiti kullanılarak RNA'yı.
  3. 7 M üre boya (7 M üre,% 0.05 ksilen Cynol ve% 0.05 bromofenol mavisi) eşit hacmi eklenerek transkripsiyon reaksiyonu durdurun. 9% poliakrilamid jel (% 9 akrilamid, 7 M üre, 1 x TBE) denatüre steril bir filtre üzerinde çalıştırın.
  4. Bir bulmak için kısa dalga boylu UV lamba ve tüketim ilgili RNA ile ultraviyole (UV) gölgeleme kullanın. Bir mikrofüj tüpüne eksize jel parça koyun ve jel elüsyon tampon 400 ul (20 mM Tris-HCl pH 7.5, 250 mM NaOAc, 1 mM EDTA ve% 0.25 SDS) ekleyin. Bir tüpü rotatifine oda sıcaklığında gece boyunca Zehir.
  5. Precisoğuk% 100 etanol içinde 1 ml ilave edildi ve 30 dakika, -20 ° C, gece boyunca -80 ° C'de ya da inkübe edilerek elüe RNA pitate.
  6. RNA aşağı pelet 4 ° C'de 30 dakika boyunca 16,000 x g'de santrifüjleyin.
  7. % 75 etanol içinde 1 ml pelet yıkayın. 4 ° C'de 20 dakika boyunca 16,000 x g'de santrifüje
  8. Tablo 2'de gösterildiği gibi, istenen konsantrasyonları elde etmek için RNase içermeyen su içinde uygun bir RNA topağı yeniden süspanse edin.

5. Floresans tabanlı RNA Düzenleme Testi

  1. Tek bir reaksiyon için, bir mikrofuj tüp içinde preA6Rbz 1 pmol (1 ul) ve 2.5 pmol gA6Rbz (1 ul) (1:2.5 mol oranı) bir araya 3 dakika boyunca 70 ° C'de inkübe edilir ve bu da oda sıcaklığında bekletin en az 10 dak.
  2. Bu arada (25 mM HEPES pH 7.9, 10 mM Mg (OAc) 2, 50 mM KCI ve 10 mM EDTA), 1 mM 1x HHE tampon içeren düzenleme reaksiyonu için, preA6Rbz ve gA6Rbz olmadan Tablo 3 kullanarak bir ana karışım hazırlamakATP, 5 mM CaCl2, Torula maya RNA,% 0.1 Triton X-100 ve saflaştırılmış editosome 16 ng / ml.
  3. Ana karışımı tamamlamak için tavlı preA6Rbz ve gA6Rbz ekleyin.
  4. RNase içermeyen su 2 ul (no bileşikleri ile kuyu) veya 200 uM kimyasal bileşiklerin birinin veya 2 ul birini içeren kuyu içine ana karışımı (Tablo 3) 18 ul koyun ve şekil 5'e göre olan bir plaka içerisinde kontrol örneklerini içerir.
  5. Bir plaka kapatıcı ile plaka Seal ve herhangi bir hava kabarcıklarını çıkarmak için aşağı plaka döndürün. 4 saat boyunca 28 ° C'de inkübe edilir.
  6. Her bir oyuğa gA6Rbz yarışmacının 25 pmol (2 ul) ilave edin. Plakayı aşağı spin ve gerçek-zamanlı PCR makinesine koyun, taze bir mühürleyen yerleştirin. Aşağıdaki deney Programı:
    Adım 1: 5 dakika boyunca 85 ° C; Adım 2: 10 dakika boyunca 24 ° C; Adım 3: kes.
  7. 23 ul son hacim olması için her bir oyuğa FRET alt-tabakanın 15 pmol (1 ul) ilave edin. Taze bir mühürleyen ile plaka mühür.Çabuk plaka spin ve real-time PCR makinede geri yerleştirin.
  8. Aşağıdaki adımlara yeni bir deneme Programı:
    Adım 1: 1 dakika için 37 ° C; Adım 2: oku; Adım 3: 1, 40 kez Git Adım; Adım 4: durdurun.
  9. Okuma gerektiren ve FAM filtresi seçmek tüm kuyuları seçerek Kur plaka. 23 ul ve çalışma başlatmak gibi giriş seviyesi.
  10. Analizi için bir çubuk grafik üzerinde yamaçları çizilerek kinetik bir ölçümünü elde etmek için her bir oyuğa / numuneden elde edilen değerlerin eğimi hesaplanır. NOT: Bir kinetik okuma numune ve arka plan arasındaki sinyal-gürültü oranını iyileştirir; arkaplan örneği sıfıra yakın bir eğime sahip gibi. Bir uç nokta okuma yüksek bir arka plan gürültü vardır.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

Büyük çaplı bir ekranı set edilmesi için gereken gerekli adımları göstermek için, 2-5 tahlilin kalitesine ilişkin temsili kontrol deneyleri Şekil. Bu tarama birkaç gün boyunca tutarlı bir deney için ya da farklı ekranlar karşılaştırılması için gerekli kontrol deneyleri bulunmaktadır.

Floresan Sinyal-gürültü Oranı değerlendirilmesi

Büyük çaplı bir kurulumunda fosforla etiketlenmiş oligonükleotid substratın istikra...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

Trypanosom RNA düzenleme kompleksine karşı inhibitörlerini teşhis etmek için yeni bir yüksek veri akışı tarama yöntemi tripanosomatidlerde neden olduğu hastalıkların karşı ilaç keşfi için yeni bir araç temin sunuldu. FRET tabanlı tahlil ribozim yaygın olarak farklı amaçlar 20-22 için kullanılmıştır; ancak, RNA düzenleme aktivitesi 19 in vitro izlenmesi için FRET bazlı ribozim tahlilin kapasitesini kullanılmıştır var. Bu deney, potansiyel olarak, memelilerde 23 çekirdeği ile kodl...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

Yazarların açıklayacak hiçbir şeyi yoktur.

Teşekkürler

Najmeh Nikpour ve Fiona Alum önerilerde bulundular ve bu el yazmasını düzenlediler. McGill Üniversitesi Biyokimya Bölümü, Kimyasal Biyolojide CIHR Eğitim Girişimi ile HM ve VM'yi destekledi. Bu çalışma, Kanada Sağlık Araştırmaları Enstitüsü (CIHR) hibe 119464 (R. S.'ye) tarafından desteklenmiştir.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
SDM-79 OrtaGibco by Life Technologies
Fetal Sığır SerumuYaşam Teknolojileri12483-02055 & # 176'da ısı inaktivasyonu; 1 saat için C
Hemin, minimum% 80SigmaH5533-10G
Penisilin-Streptomisin SollutionFisher ScientificMT-30-002-CI
Dnase 1 rekombinant, Rnase Free Roche4716728001
T7 RiboMax Express Büyük  ölçekli RNA  üretim sistemiPromegaP1320
Kimble Kontes Dounce Doku Öğütücüler   Fisher BilimselK885300-0040   
Gradyan Ustası, ver 5.25 Biocomp107-201M
Ultra Şeffaf Tüp, 13.2 mlBeckman Coulter344059
Optima L-100XP  Ultrasantrifüj Beckman Coulter392052
SW 41 Ti ROTORBeckman Coulter331336
MicroSeal 'B' Contası, ContalarBioradMSB1001
CFX 384 Dokunmatik Gerçek Zamanlı PCR Tespit SistemiBiorad185-5484
Akrilik/Bis çözeltisi (19:1), %40 (a/h)Bio BasicA0006-500ML
Üre, Moleküler biyoloji sınıfı, 1 kgYaşam TeknolojileriAM9902

Kaynaklar

  1. Benne, R., et al. transcript of the frameshifted coxII gene from trypanosome mitochondria contains four nucleotides that are not encoded in the DNA. Cell. 46, 819-826 (1986).
  2. Hajduk, S., Ochsenreiter, T. RNA editing in kinetoplastids. RNA biology. 7, 229-236 (2010).
  3. Aphasizhev, R., Aphasizheva, I. Uridine insertion/deletion editing in trypanosomes: a playground for RNA-guided information transfer. Wiley interdisciplinary reviews RNA. 2, 669-685 (2011).
  4. Seiwert, S. D., Stuart, K. RNA editing: transfer of genetic information from gRNA to precursor mRNA in vitro. Science. 266, 114-117 (1994).
  5. Weng, J., et al. Guide RNA-binding complex from mitochondria of trypanosomatids. Molecular. 32, 198-209 (2008).
  6. Hashimi, H., Zikova, A., Panigrahi, A. K., Stuart, K. D., Lukes, J. TbRGG1, an essential protein involved in kinetoplastid RNA metabolism that is associated with a novel multiprotein complex. RNA. 14, 970-980 (2008).
  7. Ammerman, M. L., et al. Architecture of the trypanosome RNA editing accessory complex, MRB1. Nucleic Acids Res. 40, 5637-5650 (2012).
  8. Huang, C. E., O'Hearn, S. F., Sollner-Webb, B. Assembly and function of the RNA editing complex in Trypanosoma brucei requires band III protein. Molecular and cellular biology. 22, 3194-3203 (2002).
  9. Carnes, J., Trotter, J. R., Peltan, A., Fleck, M., Stuart, K. RNA editing in Trypanosoma brucei requires three different editosomes. Molecular and cellular biology. 28, 122-130 (2008).
  10. Hearn, S. F., Huang, C. E., Hemann, M., Zhelonkina, A., Sollner-Webb, B. Trypanosoma brucei RNA editing complex: band II is structurally critical and maintains band V ligase, which is nonessential. Molecular and cellular biology. 23, 7909-7919 (2003).
  11. Schnaufer, A., et al. An RNA ligase essential for RNA editing and survival of the bloodstream form of Trypanosoma brucei. Science. 291, 2159-2162 (2001).
  12. Tarun, S. Z., et al. KREPA6 is an RNA-binding protein essential for editosome integrity and survival of Trypanosoma brucei. RNA. 14, 347-358 (2008).
  13. Croft, S. L., Barrett, M. P., Urbina, J. A. Chemotherapy of trypanosomiases and leishmaniasis. Trends in parasitology. 21, 508-512 (2005).
  14. Denise, H., Barrett, M. P. Uptake and mode of action of drugs used against sleeping sickness. Biochemical pharmacology. 61, 1-5 (2001).
  15. Seiwert, S. D., Heidmann, S., Stuart, K. Direct visualization of uridylate deletion in vitro suggests a mechanism for kinetoplastid RNA editing. Cell. 84, 831-841 (1996).
  16. Igo, R. P., Palazzo, S. S., Burgess, M. L., Panigrahi, A. K., Stuart, K. Uridylate addition and RNA ligation contribute to the specificity of kinetoplastid insertion RNA editing. Molecular and cellular biology. 20, 8447-8457 (2000).
  17. Igo, R. P. Jr, et al. Role of uridylate-specific exoribonuclease activity in Trypanosoma brucei RNA editing. Eukaryotic cell. 1, 112-118 (2002).
  18. Wang, B., Salavati, R., Heidmann, S., Stuart, K. A hammerhead ribozyme substrate and reporter for in vitro kinetoplastid RNA editing. RNA. 8, 548-554 (2002).
  19. Moshiri, H., Salavati, R. A fluorescence-based reporter substrate for monitoring RNA editing in trypanosomatid pathogens. Nucleic Acids Res. 38, e138(2010).
  20. Jenne, A., et al. Rapid identification and characterization of hammerhead-ribozyme inhibitors using fluorescence-based technology. Nature. 19, 56-61 (2001).
  21. Hartig, J. S., et al. Protein-dependent ribozymes report molecular interactions in real time. Nature. 20, 717-722 (2002).
  22. Famulok, M. Allosteric aptamers and aptazymes as probes for screening approaches. Current opinion in molecular therapeutics. 7, 137-143 (2005).
  23. Teng, B., Burant, C. F., Davidson, N. O. Molecular cloning of an apolipoprotein B messenger RNA editing protein. Science. 260, 1816-1819 (1993).
  24. Jurica, M. S. Searching for a wrench to throw into the splicing machine. Nature chemical biology. 4, 3-6 (2008).
  25. Spahn, C., Prescott, C. Throwing a spanner in the works: antibiotics and the translation apparatus. Journal of molecular medicine. 74, 423-439 (1996).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Daha fazla makale keşfet

Trypanozom EditozomuYüksek Kapasiteli TaramaFloresan Raportör AnaliziHammerhead RibozimiFRET SubstratıMitokondriyal RNA DüzenlemesiIn Vitro AnalizRNA Düzenleme İnhibitörleriGliserol Gradyanı
Tripanozomlann RNA Düzenleme karşı ilaçlar Tarama için bir Muhabiri olarak RNA Catalyst
Bize Ulaşın
Kütüphaneye Öner

Gizlilik

Kullanım Koşulları

Politikalar

Telif Hakkı © 2026 MyJoVE Corporation. Tüm hakları saklıdır.