Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliğiniz gereklidir. Giriş yapın veya ücretsiz denemenizi bugün başlatın.

Yöntem makalesi

Chironomidae (Diptera) kullanılması Yüzey Yüzer Su Organları bir Rapid Bioassessment Protokolü Pupa Exuviae

11.4K görüntülenme

DOI:

10.3791/52558

24 Temmuz 2015

Bu makalede

Özet

Bentik makro omurgasızları kullanan hızlı biyolojik değerlendirme protokolleri genellikle su kalitesini izlemek ve değerlendirmek için kullanılır. Etkili bir protokol, Chironomidae yüzeyde yüzen pupa exuviae (SFPE) koleksiyonlarını içerir. Burada, saha toplama, laboratuvar işleme, slayt montajı ve Chironomidae SFPE'nin tanımlanması için teknikler açıklanmaktadır.

Özet

Bentik makroinvertebrat toplulukları kullanarak hızlı bioassessment protokolleri başarıyla su kalitesi insan etkileri değerlendirmek için kullanılmaktadır. Ne yazık ki, bu tür dip net olarak geleneksel bentik larva örnekleme yöntemleri, zaman alıcı ve pahalı olabilir. Alternatif bir protokol Chironomidae yüzey yüzen pupa exuviae (SFPE) toplanması içerir. Chironomidae olgunlaşmamış aşamaları genellikle sucul habitatlarda meydana gelen sinekler (Diptera) bir tür zengin bir ailedir. Yetişkin chironomids, sudan çıkan suyun yüzeyinde yüzen, onların pupa derileri, ya da exuviae bırakarak. Exuviae genellikle kıyısında ya da chironomid çeşitlilik ve zenginliği değerlendirmek için toplanabilir rüzgar veya su akımı, eylem tarafından engel arkasında birikir. Bazı türler diğerlerine göre kirlilik daha dayanıklı olduğu için Chironomids, önemli biyolojik göstergeleri olarak kullanılabilir. Bu nedenle, toplanan SFPE göreceli bolluk ve tür kompozisyonu yansıtırSu kalitesi değişir. Burada, alan toplama, laboratuar işleme, sürgünün montajı ve chironomid SFPE tanımlanması ile bağlantılı yöntemler ayrıntılı olarak tarif edilmiştir. SFPE yönteminin avantajları bir örnekleme alanında minimum rahatsızlık, verimli ve ekonomik numune toplama ve laboratuar işlemleri, kimlik kolaylığı, uygulanabilirliği neredeyse tüm sucul ortamlarda, ve ekosistem stres potansiyel olarak daha duyarlı bir ölçü bulunur. Sınırlamalar yetişkin erkekler ile ilişkili değil varsa türlere pupa exuviae tanımlamak için larva microhabitat kullanımı ve yetersizliklerini belirlemek amacıyla yetersizlik sayılabilir.

Giriş

Çevre sağlığı değerlendirmek için canlı organizmaları kullanmak biyolojik izleme programları, genellikle su kalitesini değerlendirmek ya da ekosistem restorasyon programlarının başarısını izlemek için kullanılır. Bentik makroinvertebrat toplulukları kullanarak hızlı bioassessment protokolleri (RBP) 1989 yılından bu yana 1 devlet su kaynakları kurumları arasında popüler olmuştur. Bu tür dip-net, Surber örnekleyici ve Hess örnekleyici 2 olarak RBPs için bentik macroinvertebrates örnekleme Geleneksel yöntemler, zamana olabilir, pahalı alıcı ve yalnızca belirli bir microhabitat 3'ten toplulukları ölçebilir. Belirli bir su kütlesi hakkında biyolojik bilgi üretmek için verimli bir alternatif RBP Chironomidae yüzey yüzen pupa exuviae (SFPE) 3 toplanması içerir.

Chironomidae: Yaygın olmayan ısırma tatarcık olarak bilinen (Insecta Diptera), tipik olarak yetişkin olarak ortaya önce sucul ortamlarda meydana gelen holometabolous sinekler vardır 60; su yüzeyinde. chironomid ailesi, dünya çapında açıklanan yaklaşık 5.000 tür ile, türlerin zengin olduğu; Ancak, 20.000 kadar türü 4 varlığını tahmin edilmektedir. Chironomids nedeniyle yüksek çeşitlilik ve değişken kirlilik tolerans seviyelerinin 5 birçok sucul ekosistemlerde su ve habitat kalitesinin belgelenmesi yararlıdır. Bundan başka, tipik haliyle eden 5,6,% 50 veya daha fazla türün muhasebe, çoğu zaman su sistemlerinde en bol ve yaygın bentik macroinvertebrates bulunmaktadır. Karasal yetişkin ortaya çıkması ardından, pupa exuviae (pupa cilt cast) suyun yüzeyinde yüzen kalır (Şekil 1). Pupa exuviae rüzgar veya su akımının hareketiyle kıyısında ya da engel arkasında birikir ve kolayca ve hızlı bir şekilde önceki 24-48 saat 7 sırasında ortaya çıkan chironomid türlerinin kapsamlı bir örneğini vermek için toplanabilir.

Diğerleri 5 oldukça hassas ise ntent "> göreceli bolluk ve toplanan SFPE taksonomik kompozisyonu, bazı türler hoşgörülü çok kirliliği olduğunu düşünüyor, su kalitesini yansıtan SFPE yöntemi de dahil olmak üzere geleneksel larva chironomid örnekleme tekniklerine göre birçok avantajı vardır: (1). minimal (2) numuneleri canlıları toplama odaklanmak değil, cansız cilt, yani toplum dinamiklerinin yörüngesi etkilenmez yoktur;, cinsine (3) kimlik ve varsa, habitat rahatsızlık bir örnekleme alanı oluşur genellikle türler, nispeten kolay, uygun tuşları ve açıklamaları 3 verilir; (4) toplanması, işlenmesi ve örnekleri belirlenmesi geleneksel örnekleme yöntemleri 3,8,9 karşılaştırıldığında verimli ve ekonomik olduğu; (5) birikmiş exuviae kaynaklanmış takson temsil microhabitats 10 geniş bir yelpazede; (6) yöntemi dere ve nehirler, nehir ağızları, lak dahil, neredeyse tüm sucul ortamlarda uygulanabilires, göletler, kaya havuzları ve sulak; hepsi olgunlaşmamış aşamaları tamamlanmış ve başarılı yetişkinler 11 olarak ortaya çıkmıştır bireyleri temsil beri (7) SFPE belki ekosistem sağlığının daha hassas bir göstergesi.

SFPE yöntemi chironomid topluluklar hakkında bilgi toplamak için yeni bir yaklaşım değildir. SFPE kullanımı ilk olarak 1900'lü yılların başlarında Thienemann 12 tarafından önerildi. Çalışmaların çeşitli (örneğin 7,16-19) Taksonomik araştırmalara (örneğin, 13-15), biyolojik çeşitlilik ve ekolojik çalışmalar için SFPE kullanılan ve sahip biyolojik değerlendirmeler (örn 20-22). Ayrıca, bazı çalışmalarda örneklem tasarımı, örneklem büyüklüğü ve türler veya cins (örn 8,9,23) çeşitli algılama düzeylerini elde etmek için gerekli örneklem olaylarının sayısının farklı yönlerini ele alınmıştır. Bu çalışmalar, türler veya cins nispeten yüksek yüzdeler, orta effor ile tespit edilebileceğini göstermektedirt veya gider numune işleme ile ilişkili. Örneğin, Anderson ve Ferrington 8 100 sayım alt örnek dayalı, 1/3 rd az zaman örnekleri net daldırma ile karşılaştırıldığında SFPE örnekleri almak için gerekli olduğunu belirledi. Başka bir çalışmada 3-4 SFPE örnekleri sıralanır ve her dip-net numune için ve tür zenginliği 3. arttıkça SFPE örnekleri tespit türler de dip-net örneklerinden daha verimli olduğu tespit edilebilir olduğunu belirledi. SFPE örnekleri% 97.8 3 verimli Örneğin, türler ile sitelerde 15-16 türün değerlerini zenginliği, ortalama dip-net verimlilik% 45,7 idi.

Önemli olarak, SFPE yöntemi, Avrupa Birliği 24 standardize edilmiş ve çevre açısından değerlendirildiklerinde, Kuzey Amerika 25 (chironomid pupa exuviae tekniği (KPET) olarak da bilinir), ancak yöntem ayrıntılı olarak tarif edilmemiştir. SFPE metodolojinin bir uygulaması ve diğ Ferrington'ın, tarafından tarif edilmiştir. 3 kadar; Bununla birlikte, bu çalışmanın birincil odak SFPE yönteminin etkinliği, etkinlik ve ekonomi değerlendirilmesidir. Bu çalışmanın amacı, örnek toplama, laboratuar işleme, slayt montaj ve cins belirlenmesi dahil, detaylı SFPE yönteminin tüm adımları tanımlamaktır. Hedef kitle kendi çalışmaları içine geleneksel su kalitesi izleme çalışmalarını genişleyen ilgilenen yüksek lisans öğrencileri, araştırmacıları ve profesyonelleri içerir.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

Alan Toplama Malzemeleri 1. Hazırlık

  1. Çalışma tasarım dayalı toplanmış ve her bir örnek için bir numune kavanozu (örneğin, 60 ml) elde edilmelidir SFPE örneklerin sayısını belirleyin.
  2. Her örnek kavanoz için iki tarih ve yerellik etiketleri hazırlayın. Iç tane koyun ve kavanozun dışında diğer yapıştırmayın. Örnek toplama ülkeyi, devleti, ilçe, şehir, su vücudu, GPS koordinatlarını, tarih ve kişi (ler) adını: Her tarih ve yerellik etiketi aşağıdaki bilgileri içerir emin olun.
  3. Diğer özel malzeme ve teçhizat (Belirli Malzemeleri / Ekipman bkz: İçindekiler) toplayın.

2. Alan Koleksiyonu

  1. Bir elinde bir larva tepsi ve diğer bir elek tutun. SFPE birikir suya larva tepsiyi batırın (örneğin, köpük birikimleri, kırılmaların, acil bitki örtüsü, geri enkaz, girdaplar ve banka kenarları boyunca) (Şekil 2A), wat iziner, exuviae ve enkaz larva tepsiyi girin ve elekten bu malzemeyi dökmek için. Bir lotik sistemde örnekleme, örnek erişemeyeceği aşağı ucunda başlar ve (Şekil 2B) yukarı çalışıyorsanız. Bir durgun sistemde örnekleme ise, rüzgar kıyı başlar.
    1. Yineleyin her önceden tanımlanmış örnek ulaşılabilecek 10 dakika boyunca adım 2.1 (ya da aksi belirli bir örnekleme rejimi için tanımlanan) (derelerden toplanan numuneler için genellikle 100-200 m, ama sucul izleme sitenin genel alana bağlıdır); uygun şekilde SFPE birikim alanları arasında hareket.
  2. Örnek sitesinden su ile dolu bir püskürtme şişesi kullanılarak elek bir alanda çöpleri konsantre edin ve dikkatli bir şekilde forseps yardım ve püskürtmeli bir şişe ile ilgili etanol akımı ile SFPE örnek önceden etiketlenmiş bir numune kavanozu aktarın. Etanol ile Örnek kavanoz doldurun.
  3. Tekrarlayın 2.1 tüm örnekler için 2.2 adımları.

3. Numune Toplama

NOT: Bu protokolün kalan 300 SFPE alt örnek ilgilidir ve diğer alt örnek boyutları için modifiye edilmesi gerekebilir. Çalışma özgü hedefleri ve kaynakları karşılamak için SFPE yöntemleri dikme için Bouchard ve Ferrington'ın en 9 subsampling ve örnekleme frekansı yönergelerine bakın.

  1. Her SFPE örnek için 1-gramlık bir şişeye tahsis; Her flakon içine yerleştirin ve etanol ile tam flakon ¾ doldurmak için tarih ve yerellik etiketi hazırlar.
  2. İlgili örnek kavanoz kapağını kaldırın ve bağlı pupa exuviae kontrol edin. Yavaşça etanol ile dolu bir bücür şişe kullanılarak Petri kabı üzerine kapağın kapalı içeriğini durulayın. Bulup Petri kabı üzerine etiket kapalı içeriğini durulayın hafifçe forseps kullanarak örnek kavanoz içinden etiketi kaldırmak ve. Kenara etiketi ayarlayın.
  3. Resim SFPE Örnek kavanoz içinde kalmasını sağlamak üzere, etanol ile durulanır, larva tepsiye numune kavanoz içeriğini aktarın. Pupa exuviae, bahçe bir bölümünü transferPetri kabı tepsiden bağlı ve etanol. Numune etanol kaplı olduğundan emin olun.
  4. Stereo mikroskop altında Petri kabı yerleştirin. Sistematik pupa exuviae için Petri kabı içeriğini tarayabilir. Şişenin içine forseps ve yer kullanarak çanak tüm pupa exuviae seçin. Kırık örnekleri almak yok, kurutulmuş veya daha sonra kimlik sorunları önlemek için sıkıştırılmış (yani cephalothoraksın ve karın en az yarısını yok).
    NOT: türe belirlenmesi genellikle, bazı durumlarda, genus seviyesi tanımlama kısmi numuneler ile mümkün olsa, tüm numune mevcut olmasını gerektirir.
    1. Girdaplı çanak ve ilk tespit olmayabilir çanak kenarlarına yapışmış olabilir herhangi bir de dahil olmak üzere ek bir pupa exuviae, yanı sıra, herhangi bir küçük ve yarı saydam numuneler için tarar. Iki ardışık taramalar ek pupa exuviae ortaya kadar tekrarlayın.
  5. Adımları yineleyin 3.3 ve3.4 tamamını veya 300 pupa exuviae aldı edilene kadar. 300 pupa exuviae aldı edildiğinde, larva tepsiye Petri kabı kalıntı dönmek ve etanol ile Petri kabı durulayın. Sonra, boş örnek kavanoza larva tepsiden kalıntı aktarmak tarih ve yerellik etiketini ekleyin ve kavanozun kapağı koydu. Koru veya projeye özgü protokollere göre kalıntı atmayın.

Sıralama 4. Numune

  1. Hepsi sadece örnekleri karşılamak için yeterli etanol ile dolu bir Petri kabı içine etiketli viyalden pupa exuviae aldı dökün.
  2. Stereo bir mikroskop altında ayrı ayrı morfolojik grupları (yani, morphotaxa) içine numuneler ayrı ayrı etiketlenmiş bir şişeler etanol ile inci 3/4 dolu dolu her bir morphotaxon yerleştirin.
    1. Chironomid morphotaxa ayırmak için dış morfolojik özelliklerini kullanmaktadır. Örneğin, cephalothoraks arasında, durum, boy, şekil farklılıkları kullanın vesefalik tüberküllerin frontal siğiller, frontal kıl ve göğüs boynuz renklenmesi. Karından, morphotaxa ayırma (Şekil 4A) için hesaplanan lob ilave olarak, karın segmentlerinin dikenler, hookrows, shagreen, kıllı ve mahmuzlar kullanın. Ferrington'ın görün, vd. 5, Sæther 26 Pinder ve ek açıklamalar ve morfolojik özelliklerinin rakamlar için Reiss 27.
    2. Örnekler kurumaya başlar, ek etanol kullanın.

Montaj 5. kaydırın

  1. % 95 etanol ile, her morphotaxon için bir çok-yuvalı plakanın bir dolgunun.
    1. Çok sayıda gösterim gerekir (örneğin, toplam% 25), her morphotaxon kayıcı plakasının ayrı ayrı oyuklanndan içine monte edilebilir. Örnekler yeterince kurutmak için en az 10 dakika süreyle iyice oturup bekleyin.
  2. Uygun bir sitede, koleksiyon ve kimlik informati ile Etiket slaytlar(Şekil 3) üzerinde.
  3. Stereo mikroskop yerleştirin slayt.
    NOT: aşama bantlanmış sürgünün bir şablon tutarlı bir yerleşim için yararlıdır.
  4. Slayt Euparal bir damla yerleştirin; bu lameller büyüklüğü yaklaşık olarak böylece Euparal yayıldı. Euparal ile çalışırken uygun havalandırma kullanın.
    NOT: Euparal ile çalışırken uygun havalandırma kullanın.
  5. Forseps kullanarak Euparal içine ilk morphotaxon bir temsilciye göm.
    NOT: Laboratuvar Euparal katıştırma önce mendil hafifçe numune dokunun bir forseps kullanarak, numunenin aşırı etanol geçersiz belirleyin.
  6. Ince uçlu forseps ve / veya diseksiyon probları (Şekil 4A) kullanarak karından cephalothoraksın ayırın.
    1. Ecdysial sütür (Şekil 4B) boyunca cephalothoraksın bölünmüş ve dikiş kenarları karşıt taraflarında (Şekil 4C) üzerinde olacak şekilde cephalothoraksın açın.
    2. C yönlendirmekephalothorax böylece ventral yüzü (Şekil 4C) yukarı bakacak.
    3. Karın dorsal yüzü yukarı yerleştirin; Hemen cephalothoraksın (Şekil 4C) altında yerleştirin.
  7. Numune üzerinde bir lamel yerleştirin. Bir kenar sonra yavaş yavaş alt slayt dokunmadan, ile, bir açıda lamel tutun ve hava kabarcığı oluşumunu azaltmak için lamel bırakın. Hafifçe lamel Basın örneği düzleştirmek için.
  8. Tekrarlayın tüm kurutulmuş örnekler için 5.7 ile 5.3 arasındaki adımları.

6. Genus Kimlik

  1. Bileşik mikroskop kullanılarak slayt monte numunelerin cins belirleyin. Ark Wiederholm 28 ve Ferrington'ın, tuşları ve teşhisleri kullanarak cinsine örnekleri belirleyin. 5. Gerekirse, vd, Ferrington'ın kullanarak aile düzeyinde kimlik onaylayın. 5. NOT: Wiederholm 28 ve Ferrington'ın beri sayısız jenerik açıklamaları ve revizyon olmuştur,ve ark., 5, bu nedenle, bu tuşlar ve tanılar eksik ve birincil literatüre ile takviye edilmesi gerekir.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

Şekil 1, chironomid ömrünü göstermektedir; Olgunlaşmamış aşamaları (yumurta, larva, pupa), genellikle gerçekleşecek, ya da yakın bir sucul ortamda, ilişkili. Larva yaşam aşamasının tamamlanmasından sonra, larva bir tüp benzeri barınak inşa ve çevresindeki alt tabakaya ipek salgıları ile tutunur ve pupa devresi oluşur. Gelişmekte olan yetişkin olgunlaştı sonra, pupa kendini kurtarır ve erişkin pupa exuviae ortaya suyun yüzeyine yüzer. exuviae hava ile doldurur ve manikür bir dış mumsu bir tabaka sayesind...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

Başarılı SFPE örnek toplama, slayt montaj, toplama ayırma ve tanımlama için en kritik adımlar şunlardır: (1) Tarla koleksiyonu (Şekil 2A) sırasında çalışma alanı içinde yüksek SFPE birikim alanlarını bulmak; (2) yavaş yavaş Örnek toplama sırasında tüm SFPE saptanması için Petri kabı içeriğini taranması; (3) (Şekil 4A) montaj slayt sırasında karından cephalothoraksın incelemek için gerekli el becerisi geliştirme; ve (4) doğru cinsine tanımlamak için chironomid pupa exuviae anahtar morfol...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

Yazarlar hiçbir rakip mali çıkarlarını olduğunu beyan ederim.

Teşekkürler

Beste ve bu kağıdı yayınlanması için Finansman Minnesota Üniversitesi Entomoloji Bölümü Chironomidae Araştırma Grubu (LC Ferrington'ın, Jr., PI) için birden fazla hibe ve sözleşmeleri yoluyla sağlanmıştır. Teşekkürler Nathan Roberts rakamlar olarak kullanılan saha fotoğrafları paylaşmak için video Bu yazının ile ilişkili.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
EtanolFisher BilimselS25309B %70-95
Plastik yıkama şişeleriFisher Scientific0340923B
Numune kavanozuFisher Scientific0333510BCam veya plastik, 60 mL önerilir
Test süzgeciAdvantech120SS12F125 mikron ağ boyutu
Larva tepsisiBioQuip5524Beyaz
Stereo mikroskop
Cam kabuk şişeleriFisher Scientific0333926B1 dram boyutlu
Plastik damlalıkThermo Scientific137111030 ila 35 damla/mL
İnce forsepsBioQuip4524#5
Petri kabıCarolina741158Cam veya plastik
Çok kuyulu plakaThermo Scientific144530Cam veya plastik
Cam mikro slaytlarThermo Bilimsel30100023 x 1 inç
Cam kapak kızaklarıThermo Scientific12-519-21GDairesel veya kare
Euparal montaj ortamı BioQuip6372B
Pigma kalemiBioQuip1154FSiyah
ProbBioQuip4751
KimwipesKimberly-Clark Profesyonel ve Ticaret;34120

Kaynaklar

  1. Southerland, M. T., Stribling, J. B. Biological Assessment and Criteria: Tools for Water Resource Planning and Decision Making. Davis, W. S., Simon, T. P. , Lewis Publishers. 81-96 (1995).
  2. Merritt, R. W., Cummins, K. W., Resh, V. H., Batzer, D. P. An Introduction to the Aquatic Insects of North America. Merritt, R. W., Cummins, K. W., Berg, M. B. , 4th edition, Kendall/Hunt Publishing Company. 15-37 (2008).
  3. Ferrington, L. C., et al. Sediment and Stream Water Quality in a Changing Environment: Trends and Explanation. , International Association of Hydrological Sciences Press. 181-190 (1991).
  4. Ferrington, L. C. Freshwater Animal Diversity Assessment in Hydrobiology. Balian, E. V., Lévêque, C., Segers, H., Martens, K. , Springer. Netherlands. 447-455 (2008).
  5. Ferrington, L. C., Berg, M. B., Coffman, W. P. An Introduction to the Aquatic Insects of North America. Merritt, R. W., Cummins, K. W., Berg, M. B. , 4th ed, Kendall/Hunt Publishing Company. 847-989 (2008).
  6. Armitage, P. D., Cranston, P. S., Pinder, L. C. V. The Chironomidae: Biology and Ecology of Non-Biting Midges. 572, Chapman & Hall. (1995).
  7. Coffman, W. P. Energy Flow in a Woodland Stream Ecosystem: II. The Taxonomic Composition of the Chironomidae as Determined by the Collection of Pupal Exuviae. Archiv fur Hydrobiologie. 71, 281-322 (1973).
  8. Anderson, A. M., Ferrington, L. C. Proceedings of 18th International Symposium on Chironomidae on Fauna norvegica. Ekrem, T., Stur, E., Aagaard, K. 31, (2011).
  9. Bouchard, R. W., Ferrington, L. C. The Effects of Subsampling and Sampling Frequency on the Use of Surface-Floating Pupal Exuviae to Measure Chironomidae (Diptera) Communities in Wadeable Temperate Streams. Environmental Monitoring and Assessment. 181, 205-223 (2011).
  10. Wilson, R. S. Monitoring the Effect of Sewage Effluent on the Oxford Canal Using Chironomid Pupal Exuviae. Water and Environment Journal. 8, 171-182 (1994).
  11. Wentsel, R., McIntosh, A., McCafferty, W. P. Emergence of the Midge Chironomus tentans when Exposed to Heavy Metal Contaminated Sediment. Hydrobiologia. 57, 195-196 (1978).
  12. Thienemann, A. Das Sammeln von Puppenhäuten der Chironomiden. Eine Bitte um Mitarbeit. Archiv fur Hydrobiologie. 6, 213-214 (1910).
  13. Anderson, A. M., Kranzfelder, P., Egan, A. T., Ferrington, L. C. Survey of Neotropical Chironomidae (Diptera) on San Salvador Island, Bahamas. Florida Entomologist. 97, 304-308 (2014).
  14. Coffman, W. P., de la Rosa, C. Taxonomic Composition and Temporal Organization of Tropical and Temperate Assemblages of Lotic Chironomidae. Journal of the Kansas Entomological Society. 71, 388-406 (1998).
  15. Brundin, L. Transantarctic Relationships and their Significance, as Evidenced by Chironomid Midges. With a Monograph of the Subfamilies Podonominae and Aphroteniinae and the Austral Heptagyiae. Svenska Vetenskapsakademiens Handlingar. 11, 1-472 (1966).
  16. Anderson, A. M., Ferrington, L. C. Resistance and Resilience of Winter-Emerging Chironomidae (Diptera) to a Flood Event: Implications for Minnesota Trout Streams. Hydrobiologia. 707, 59-71 (2012).
  17. Anderson, T. Contributions to the Systematics and Ecology of Aquatic Diptera-A Tribute to Ole A. Saether. , Caddis Press. 99-105 (2007).
  18. Bouchard, R. W., Ferrington, L. C. Winter Growth, Development, and Emergence of Diamesa mendotae (Diptera: Chironomidae) in Minnesota Streams. Environmental Entomology. 38, 250-259 (2009).
  19. Hardwick, R. A., Cooper, P. D., Cranston, P. S., Humphrey, C. L., Dostine, P. L. Spatial and Temporal Distribution Pattens of Drifting Pupal Exuviae of Chironomidae (Diptera) in Streams of Tropical Northern Australia. Freshwater Biology. 34, 569-578 (1995).
  20. Wilson, R. S., Bright, P. L. The Use of Chironomid Pupal Exuviae for Characterizing Streams. Freshwater Biology. 3, 283-302 (1973).
  21. Raunio, J., Paavola, R., Muotka, T. Effects of Emergence Phenology, Taxa Tolerances and Taxonomic Resolution on the Use of the Chironomid Pupal Exuvial Technique in River Biomonitoring. Freshwater Biology. 52, 165-176 (2007).
  22. Ruse, L. Lake Acidification Assessed using Chironomid Pupal Exuviae. Fundamental and Applied Limnology. 178, 267-286 (2011).
  23. Rufer, M. R., Ferrington, L. C. Sampling Frequency Required for Chironomid Community Resolution in Urban Lakes with Contrasting Trophic States. Boletim do Museu Municipal do Funchal (História Natural) Supplement. 13, 77-84 (2008).
  24. CEN. 15196, European Committee for Standardization. Brussels. 1-13 (2006).
  25. Ferrington, L. C. Collection and Identification of Surface Floating Pupal Exuviae of Chironomidae for Use in Studies of Surface Water Quality. Standard Operating Procedure No. FW 130A. , (1987).
  26. Saither, O. A. Glossary of Chironomid Morphology Terminology (Chironomidae Diptera). Entomologica Scandinavica Supplement. 14, 51(1980).
  27. Pinder, L. C. V., Reiss, F. Chironomidae of the Holarctic region. Keys and Diagnoses Part 2. Pupa. Wiederholm, T. 28, Entomologica Scandinavica Supplement. 299-456 (1986).
  28. Wiederholm, T. Chironomidae of the Holarctic region - Keys and Diagnoses, Part 2, Pupae. 28, Entomologica Scandinavica Supplement. (1989).
  29. Merritt, R. W., Webb, D. W. An Introduction to the Aquatic Insects of North America. , 4th edition, Kendall/Hunt Publishing Company. (2008).
  30. Wilson, R. S., Ruse, L. P., Sutcliffe, D. W. A Guide to the Identification of Genera of Chironomid Pupal Exuviae Occurring in Britain and Ireland (including Common Genera from Northern Europe) and Their Use in Monitoring Lotic and Lentic Fresh Waters. , Freshwater Biological Association. (2005).
  31. Egan, A. T. Communities in Freshwater Coastal Rock Pools of Lake Superior, with a Focus on Chironomidae (Diptera). , University of Minnesota. (2014).
  32. Raunio, J., Heino, J., Paasivirta, L. Non-Biting Midges in Biodiversity Conservation and Environmental Assessment: Findings from Boreal Freshwater Ecosystems. Ecological Indicators. 11, 1057-1064 (2011).
  33. Kavanaugh, R. G., Egan, A. T., Ferrington, L. C. Factors affecting decomposition rates of chironomid (Diptera) pupal exuviae. Chironomus: Newsletter on Chironomidae Research. 27, 16-24 (2014).
  34. Anderson, A. M., Stur, E., Ekrem, T. Molecular and Morphological Methods Reveal Cryptic Diversity and Three New Species of Nearctic Micropsectra (Diptera: Chironomidae). Freshwater Science. 32, 892-921 (2013).
  35. Ekrem, T., Willassen, E. Exploring Tanytarsini Relationships (Diptera: Chironomidae) using Mitochondrial COII Gene Sequences. Insect Systematics & Evolution. 35, 263-276 (2004).
  36. Ekrem, T., Willassen, E., Stur, E. A Comprehensive DNA Sequence Library is Essential for Identification with DNA Barcodes. Molecular Phylogenetics and Evolution. 43, 530-542 (2007).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Etiketler

Chironomidae Pupa ExuviaeY zeyde Y zen ExuviaeSu Kalitesi De erlendirmesiArazi Toplama Y ntemiLaboratuvar lemeLam Montaj Tekni iMorfolojik Grup Ayr mCins ve T r Tan mlamaSucul Ortam rneklemesi