Yöntem makalesi

Adım Adım: İki cansız hayvan modelleri birleştirerek Mikrocerrahi eğitim yöntemi

DOI:

10.3791/52625

9 Mayıs 2015

Bu makalede

Özet

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Burada küçük bir mikrocerrahi uygulama istasyonunun nasıl kurulacağını ve canlı olmayan hayvan modelleriyle mikrocerrahi eğitimi için basit ve ucuz bir yöntemin nasıl kurulacağını anlatıyoruz.

Özet

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Mikrocerrahi tekniklerin öğrenilmesi ve mikrocerrahi becerilerin sürdürülmesi geleneksel olarak canlı hayvanların, özellikle de laboratuvar farelerinin kullanımına dayanmaktadır. Bu yöntem, son derece değerli olmasına rağmen, hem cerrah hem de sponsor kurum için ekonomik açıdan zorlayıcı olabilir; Ayrıca, her zaman mevcut veya erişilebilir olmayabilecek özel eğitim tesisleri gerektirir. Ayrıca, etik kaygılar, canlı hayvanların eğitim amaçlı kullanımını sınırlayabilir. İnert tüpler ve eldivenler gibi alternatif eğitim yöntemleri, klinik bir duruma benzer bir deneyim sunmadıkları için cerrahlar arasında popülerlik kazanmamıştır. Canlı olmayan hayvan modelleri arasında tavuk budu ve kanatlarının kullanımı; Önemli ölçüde klinik bir duruma benzeyen bir uygulama deneyimi sunarlar. Bu tür bir eğitim nispeten ucuzdur ve kolayca temin edilebilir. Gerekli mikroskop ve aletler internet üzerinden temin edilebilir ve tavuk parçaları yerel süpermarketten satın alınabilir.

Bu yaklaşım, motive olmuş bir kursiyerin makul bir maliyetle farklı türdeki cerrahi teknikleri birkaç kez prova etmesine olanak tanır ve daha karmaşık tesisler mevcut değilse cerrahi uzmanlığını geliştirmeye veya sürdürmeye yardımcı olur. Mevcut el yazmasında, küçük bir uygulama istasyonunun nasıl kurulacağını, örneklerin nasıl inceleneceğini ve hem tavuk butları hem de tavuk kanatları ile aşamalı bir şekilde nasıl pratik yapılacağını açıklıyoruz. Bu yaklaşım, tavuk budu modelinin çok yönlülüğünden ve tavuk kanadı Brakiyal arterinin küçük boyutundan yararlanır.

Giriş

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Hem temel hem de ileri mikrocerrahi becerilerin öğrenilmesi ve sürdürülmesi için çok çeşitli eğitim modelleri tanımlanmıştır. Bunlar arasında canlı hayvanlar1,2, insan kadavra örnekleri3, inert modeller4,5 ve cansız hayvan modelleri6-9 bulunur. Canlı hayvan modelleri, özellikle sıçanları kullananlar, mikrocerrahi öğretiminde yaygın olarak kullanılmıştır 1,2; Ve mevcut altın eğitim standardı olarak kabul edilirler. Dikkate değer öğretici değerlerine rağmen, yoğun veya uzun süreli bir eğitim gerektiğinde; Ekonomik ve etik kaygılar pratik kullanımlarını engelleyebilir.

Kadavra modelleri3, gerçek klinik duruma benzer bir ortamda pratik yapma fırsatı sunar; ne yazık ki anatomi laboratuvarları ve benzeri olanaklarla sınırlıdır, laboratuvarda da bir mikroskop bulunması gerekir; bu nedenle bu modeller yaygın olarak bulunmaz. Kauçuk tüpler veya eldivenler4,5 gibi inert modeller ucuzdur ve kolay erişilebilirdir, uygulamaları için gerekli ekipman minimumdur. Bununla birlikte, klinik bir duruma benzerlik zayıftır; Ve uygulamaları genellikle, kursiyer fareler üzerinde pratik yapmaya başlamadan önce, eğitimin giriş aşamalarıyla sınırlıdır. Bildiğimiz kadarıyla, Hino6, klinik mikrocerrahi becerilerin geliştirilmesi ve sürdürülmesi için canlı olmayan tavuğun kullanılmasını öneren ilk kişiydi. Modeli, ticari tavuk kanatlarından tavuk brakiyal arterinin çıkarılmasına ve ardından kullanılmasına dayanmaktadır. Bu yaklaşım, kurum inceleme kurulu onayı, kemirgen anestezisi, laboratuvar teknisyenleri veya ameliyat sonrası bakım gerektirmez.

Hino'nun tavuk kanadı arter modelini tanımlamasının ardından çok sayıda başka cansız hayvan modeli yayınlandı. Ticari tavuk butlarının kullanımı ilk olarak femoral arter, ven ve sinirin didaktik amaçlarla kullanıldığını bildiren Marsh ve ark.7 tarafından önerilmiştir. Bu özel model, arterlerden farklı yapılar dahil olmak üzere eğitim olanaklarını genişletir; Kursiyerin damar greftleri, sinir greftleri veya fasiküler onarımlar gibi çeşitli karmaşık prosedürleri gerçekleştirmesine izin verir. Jeong ve ark.8 Marsh'ın tavuk budu modelini ve bunun asistan doktorların öğretimine uygulamalarını daha fazla incelediler. Yazarlar tavuk dokusu örneklerini histolojik olarak analiz ettiler ve insan dokularına benzerlikler gösterdiğini buldular. Kursiyer tarafından anastomoz yapma süresi, çalışmalarındaki uygulama ile önemli ölçüde azaltılmıştır. "Femoral nörovasküler tavuk demetlerinin mikrocerrahi öğretimi ve uygulaması için uygun ve etkili bir model olduğu" sonucuna vardılar. 2013 yılında meslektaşlarım ve ben9, hem tavuk budu hem de tavuk kanadı modellerini birleştiren bir mikrocerrahi eğitim rejimi yayınladık; Bu yaklaşım, tavuk butlarının çok yönlülüğünden ve daha ileri düzeydeki kursiyerler için femoral damarlardan daha fazla zorluk teşkil edebilen tavuk kanadı arterinin sınırlı boyutundan yararlanır.

Mevcut el yazması üzerinde bir mikrocerrahi uygulama istasyonu kurma sürecini adım adım anlatıyoruz; gerekli materyalleri, her modelin nörovasküler yapılarının nasıl diseke edileceğini ve eğitim rejiminin nasıl etkili bir şekilde uygulanacağını anlatıyoruz.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Hazırlama:

  1. 45x zoom bir değişken 3,5 x ile, bir masa stereo mikroskop edinin, 200 mm çalışma mesafesi, 55-75 mm değişken arası pupiller mesafe ve bir aksesuar halkası led ışık. Herhangi benzer mikroskop küçük bir masanın üzerine kurulabilir, yeterli ve son derece pahalı değildir.
  2. Toplayın ve iki mikrocerrahi manyetikler, tek kesme makas, ve bir iğne sürücü ile mikrocerrahi aletleri bir dizi hazırlamak; Bu gereken en düşük, bu uygulama aracı olan ve yüksek son kaliteli araçlar gerekli değildir dikkate alınmalıdır.
  3. Tüm uygulamalar için 9/0 monofilament mikro sütür kullanın. Yerel süpermarkette tavuk uyluk ya da kanatları ve gıda renklendirici piyasadan temin satın alın.
  4. A 20 G anjiyo-kateter tavuk femoral arterler üzerindeki açıklık testleri için kullanılır. Brakiyal arterler için daha ince 27 G kateter gereklidir. Bunlar yerel Eczacılık internet üzerinden elde edilebilir ya daset enstrümanlarla. Gıda renklendirici enjekte etmek için piyasada mevcut şırınga al.

2. Makroskopik diseksiyon teknikleri:

  1. femoral damarların yaklaşım basittir. Tavuk uyluk için, bir künt diseksiyon tekniği sadece femur şaft medial gerçekleştirmek kemik femur kas ayırmak ve femoral arter, ven ve sinir maruz kalmaktadır. Sinir ayrıca sinir onarım uygulamalarının farklı türleri için iki ayrı fasiküller halinde disseke edilebilir.
  2. Kanat ucuna kadar olan omuzdan, bir makas ile uzunlamasına deri, tavuk kanatları tavuk brakiyal arter erişmek kesilirken için. Biceps ve triseps brachii'nin arasında çalışan arter gözlemleyin.

3. Önerilen eğitim rejimi:

  1. Femoral arter ile Eğitim.
    NOT: Eğitim rejiminde ilk adım tavuk femoral arter ile uygulama olduğunu.

  1. Mikroskop altında parça yerleştirin ve mikrocerrahi diseksiyon başlar. Altta yatan dokulardan femoral arter özgür; ve yatay olarak bölmek. Bir adventicectomy gerçekleştirin. Arteriyel lümen örten herhangi adventicia trim mikro manyetikler ve mikro-makas kullanın. Düzenli musluk suyuyla iç lümen durulayın. Başlangıç ​​saati bir yere yazın
  2. Anastomoz uçtan uca bir gerçekleştirin.
    1. Operatöre karşı tarafında arter arka duvarda başlatın. İlk dikiş yerleştirin; dikey çalışma ise alt tarafta, yatay çalışma ise sol tarafta başlayacak. Arterin dışına lümeninden sonra lümenin doğru arterin dışından iğne geçirin ve.
    2. , Dikiş Kravat ilk çift düğüm gerçekleştirmek ve sonra iki tek alternatif yön atar. Yukarıda tarif edilen tekniği ile tüm arka duvarını tamamlayın.
    3. Eğer wo iseniz yatay çalışan ya da üst tarafı ise sağ tarafta başlayarakdikey rking dışarıya lümenden daha sonra lümen dışında tek bir dikiş koyun. Yukarıda açıklandığı gibi düğüm. 3.1.2.2 açıklanan yordamı yinelenen ön duvarı tamamlayın.
    4. Bu bir zaman kaydını tutmak sağlayacak nihai zaman bir yere yazın, böylece ilerleme kontrol edebilirsiniz.
      NOT: Yazarlar tek yönlü yukarı tekniği tercih; ancak mikrocerrahi sütür her türlü prova edilebilir. O diğer klinik senaryolar deneyebilirsiniz önce stajyer bu şekilde yaklaşık 25 mikrocerrahi anastomoz tamamlar önerilebilir. Bu damar arter boşluklar aşılama sinir onarım uç uca ve sinir boşluklar tedavisi için damar boruları kullanımını içerir. Bu eğitim yöntemi ile öğrenilebilir mikrovasküler cerrahi önemli bir tekniktir, olmadan 3.1.2.1 gibi dikiş gerçekleştirmeye devam 3.1.2.1 olarak bu tekniği stajyer gelirleri gerçekleştirmek ancak stich kesmek değil, sürekli ya da devamlı sütür olduğunu Onlara u kesmentil Eğer bütün sütür tamamlamak ve sonunda orijinal dikiş kravat.

  1. Brakial arter ile Eğitim
    1. Mikroskop altında parça yerleştirin. Femoral arter için yukarıda tarif edilen prosedür tamamlayın.
      NOT: Tek fark boyutudur. Brakiyal arter femoral arter çok daha küçüktür ve anastomoz çok daha zordur.
  2. Açıklık testleri
    1. Birlikte hem damar duvarlarını dikilmesi dikiş kaynaklanan engellerden kontrol etmek için, anastomoz yoluyla pürüzsüz 20 veya 27 G anjiyo-kateter çapraz.
    2. Jet sızıntı testi için artere boya anjiyo-kateterin ucuna ticari gıda renklendirici ile bir şırınga uygulanır ve serpmek
    3. Dikiş, kendi paralelliği ve alınan duvarın miktarını görselleştirmek için uzunlamasına arter açın.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Yazarlar, bu eğitim yöntemi ile kere chronometered ve anlamlı üçüncü haftanın sonunda bir femoral arter için anastomoz sürelerini azaltmak için bunu gördük. stajyer onun kez onun açıklık yüzdeleri ve dikiş uyum kontrol ederek onun tekniği iyileştirmeler kontrol edebilirsiniz. Bu yazıda anlatılan sistem, bir masa mikroskop ve mikrocerrahi aletleri bir dizi içerir Şekil 1'de gösterilmiştir. makroskopik disseksiyonları, Şekil 2 ve 3, bir femoral arter mikro anastomoz bir örneği gösterilmiştir 4. Şekil 5, brakiyal arter mik...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Mikrocerrahinin klinik pratiği, sürekli bir uygulama ve yüksek düzeyde uzmanlık gerektirir; Uygulamaları arasında serbest flepler, replantasyon ve revaskülarizasyon prosedürleri, beyin cerrahisi prosedürleri için intrakraniyal – ekstrakraniyal anastomozlar, periferik sinir cerrahisi ve diğerleri yer alır. Mikrocerrahi teknikler gerektiren çok çeşitli prosedürlere rağmen, bazıları birçok merkezde nadiren uygulanmaktadır. Bu nedenle cerrahların bazen ameliyatları farklı uygulama modellerinde prova etme becerilerini koruma...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Yazarların açıklayacak hiçbir şeyi yoktur.

Teşekkürler

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Yazarların teşekkür hakkı yok.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
StereomikroskopAmscopeSM-1BXMikroskop
Led ışıkAmscopeLED-80S-YAaydınlatma sistemi
Mikrocerrahi aletler setiChen tavuk mikrocerrahi aletleriHC-X803-1Mikrocerrahi aletler
Mikrocerrahi sütürlerS/T mikrocerrahi9/0Sütür Sütürler

Kaynaklar

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Lee, S. Historical events on development of experimental microsurgical organ transplantation. Yonsei Med J. 45 (6), 1115-1120 (2004).
  2. Shurey, S., Akelina, Y., Legagneux, J., Malzone, G., Jiga, L., Ghanem, A. M. The rat model in microsurgery education: classical exercises and new horizons. Arch Plast Surg. 41 (3), 201-208 (2014).
  3. Olabe, J., Olabe, J., Sancho, V. Human cadaveric infusión model for neurosurgical training. Surg Neurol. 72, 700-702 (2009).
  4. Peled, I. J., Kaplan, H. Y., Wexler, M. R. Microsilicone anastomoses. Ann Plast Surg. 10 (4), 331-332 (1983).
  5. Gluer, N. M., Rao, G. S. Canniesburn “ever-ready” model to practise microsurgery. Br J Plast Surg. 43 (3), 381-382 (1990).
  6. Hino, A. Training in microvascular surgery using a Chicken wing artery. Neurosurgery. 52 (6), 1495-1498 (2003).
  7. Marsh, D. J., Norton, S. E., Mok, J., Patel, H. D., Chen, H. C. Microsurgical training the Chicken thigh model. Ann Plast Surg. 59 (3), 355-356 (2007).
  8. Jeong, H. S., Moon, M. S., Kim, H. S., Lee, H. K., Yi, S. Y. Microsurgical training with fresh chicken legs and their histological characteristics. Ann Plast Surg. 70 (1), 57-61 (2013).
  9. Couceiro, J., Ozyurekoglu, T., Sanders, S., Tien, H. Microsurgical training regimen with nonliving chicken models. Microsurgery. 33 (3), 251-252 (2013).
  10. Phoon, A. F., Gumley, G. J., Rtshiladze, M. A. Microsurgical training using a pulsatile membrane pump and chicken thigh: A new, realistic, practical, nonliving educational model. Plast Reconstr Surg. 126 (5), 278e-279e (2010).
  11. Zhou, Y., Gu, X., Xiang, J., Qian, S., Chen, Z. A comparative study on suture versus cuff anastomosis in mouse cervical cardiac transplant. Exp Clin Transplant. 8 (3), 245-249 (2010).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya şekillerini yeniden kullanmak için izin iste

İzin iste

Etiketler

Tavuk But ModeliTavuk Kanat ModeliU tan Uca S t rFemoral Arter DiseksiyonuBrakial Arter Prati iCerrahi Beceri Geli imiDamar AnastomozuMikroskopik Diseksiyon

İlgili makaleler