Yöntem makalesi

Bir FOTOTROMBOTİK Tekniği sınırlı Kapsül Enfarktüs Modelleme

DOI:

10.3791/53281

⸱

2 Haziran 2016

 ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Biomedical Science and Engineering, Gwangju Institute of Science and Technology, 2Department of Pathology, Chonnam National University Medical School, 3Departement of Neurosurgery, Presbyterian Medical Center

Bu makalede

Özet

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bu el yazması kapsül enfarktüs bir modelleme tekniği anlatılmaktadır. Burada ön ameliyat hedef haritalama sonra ışık düşük yoğunluğu ile modifiye Fototrombotik tekniği kullanılmıştır. Bu tekniği kullanarak, biz kalıcı motorlu bozukluğu olan bir sınırlı kapsül infarkt modeli yarattı.

Özet

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Beyaz cevher inme prevalansındaki son artış, bu alanda özel araştırmalar yapılmasını gerektirmektedir. Bununla birlikte, beyaz cevher inmesi için uygun bir hayvan modelinin olmaması, araştırma araştırmalarını engellemiştir. Burada, komşu gri madde yapılarına verilen zararı en aza indiren sınırlı bir kapsül enfarktüsü oluşturmak için yeni bir yöntem açıklıyoruz. İç kapsül içindeki ön ekstremite alanının somatotopik organizasyonunu belirlemek için adeno ilişkili virüs-yeşil floresan proteini (AAV-GFP) ile ameliyat öncesi nöral izleme kullandık. Gri ve beyaz maddenin farklı optik özelliklerine dayalı olarak ışık yoğunluğunun ayarlanması, gri maddenin nispi korunması ile beyaz maddenin seçici olarak yok edilmesine katkıda bulunur. Optik-nöral arayüzün doğru konumlandırılması, iç kapsüldeki tüm ön ayak alanının tahrip edilmesini sağlar, bu da belirgin ve kalıcı bir motor açığa yol açar. Bu nedenle, bu teknik, kalıcı bir motor defisit ile yüksek oranda tekrarlanabilir kapsüler enfarktüs lezyonları üretir. Model, yalnızca davranışsal, devre ve hücresel düzeylerde beyaz cevher inmesini (WMS) incelemek için değil, aynı zamanda yeni terapötik ve rehabilite edici müdahalelerin geliştirilmesi için kullanışlılığını değerlendirmek için de yardımcı olacaktır.

Giriş

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Yakın zamana kadar, "gri madde inme (GMS) modeller" münhasıran inme patofizyolojisi anlamak ve yeni tedavilerin geliştirilmesine rehberlik etmek için kullanılmıştır. Tüm inmelerin 1,2% 25'ini - Ancak, 15 oluşturan yaşlı bireylerde, subkortikal beyaz cevher etkileyen inme giderek artan yaygınlık olmuştur. Çeşitli çalışmalar beyaz cevher inme (WMS) modelleri kullandık az sayıda çalışma vardır oysa GMS modellerini kullanarak ilgili inme yapılmıştır. kemirgenlerde beyaz cevher insan veya primatlarda beyaz cevher daha azdır. Sonuç olarak, seçici bir şekilde beyaz bir madde 3 hedef bölge ulaşmak ve yok etmek için daha zordur. Ayrıca, hiçbir etkin araçları seçici hedeflenen beyaz cevher planlanan ölçüde yok etmek için bugüne kadar geliştirilmiştir. Bu nedenle, beyaz madde vuruş çalışma için uygun modellerin eksikliği vardır.

hayvan stRoke modelleri genellikle yeni iyileştirici ve tedavi yöntemlerinin geliştirilmesi için motor iyileşme ilerlemesini izlemek için kullanılır. İnsan inme 4,5 gösterdiği anatomik değişiklikler ile uyumlu uzun vadeli nörolojik açığı sergileyen bir hayvan modeli kullanmak için idealdir. Bu bağlamda, motorlu açığı ve beyin aşağıdaki enfarktüs lezyon geniş katılımı hızlı iyileşme inme araştırma peşinde gerçekçi olmayabilir. Önceki kapsül infarkt modelleri internal kapsül 6-9 içine endotelin-1 (ET-1) internal karotid veya anterior koroidal arterler ve difüzyon tıkanması ile yapılmıştır. Bununla birlikte, arter tıkanıklığı arterlerin dikkatli diseksiyon gerektirir, ancak kalıcı davranış açıkları olmadan, internal kapsül dahil enfarktüs lezyonun geniş bir alanı üretir. Ayrıca, ET-1 tamamen internal kapsül posterior bacağı yok etmek dağınık ve dolayısıyla daha az belirgin veya beh kalıcı değildiavioral açığı.

Bir Fototrombotik enfarktüs modeli genel olarak korteks infarkt lezyonlarında ve subkortikal yapılar 10 çeşitli oluşturmak için kullanılmıştır. Teknik enfarktüs lezyonlar 10 trombosit küçük damarlarda toplama ve oluşumuna yol açan odak aydınlatma, ardından intravenöz uygulamayı içermektedir. Nadiren WMS lezyonlar 5,11 oluşturmak için kullanılır olmuştur oysa FOTOTROMBOTİK teknik yaygın, GMS lezyonlar oluşturmak için kullanılır olmuştur. Bu teknik için, Rose Bengal, boya ve hafif ışınlama bir kombinasyonu işlev bozukluklarını mukabil yol hedef yapının yok yararlı olduğu gösterilmiştir. o enfarktüs lezyonların boyutunu belirler çünkü Fototrombotik tekniğin kilit unsur, ışık ışınlama olduğunu. gri madde ve beyaz madde üzerinde farklı etkileri ışık ışınlama sonuçları, ışık saçılması beyaz ma fazla 4 kat daha fazladır çünkügri madde 12 ile karşılaştırıldığında tter; Işık yoğunluğu, yeterince düşük bir ışık etkisi (<1.140 mW / mm2) Buna göre, eğer bir Fototrombotik lezyondan beyaz bir madde ölçüde etkilediği olan uzatma sınırı (yani. Iç kapsül). Örneğin, yüksek enerji ışık hem gri hem de beyaz cevher infarktları uyarabilir, henüz düşük enerji ışığı sadece beyaz cevher Fototromboz neden olabilir. Bundan başka, ışık enerjisi penetrasyon çok sınırlıydı. Işık enerjisinin yaklaşık% 99 ışık 13 kaynağından 1 mm ötesinde kayboldu. Bu nedenle, doğru hedef olması beklenmektedir, düşük enerji ışık sadece komşu gri cevher az tecavüz beyaz cevherde Fototromboz neden olur.

Burada, kemirgenler, iç kapsülün ön ayakları alanında infarkt lezyonlar oluşturmak için yeni bir metot açıklamaktadır. Biz iç ca ön ayakları alanının belirlenmesi yöntemi tarifpsule, uyum ve ışık teslimat ve bir enfarktüs lezyonun nesil de dahil olmak üzere ışık ışınlama, teknoloji. Biz de kapsül modelleme tamlığını değerlendirmek için kullanılan davranışsal test açıklar.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Tüm işlemler Bilim ve Teknoloji (GIST) Gwangju Enstitüsü kurumsal kurallarına göre yapılmıştır ve tüm işlemler GIST Kurumsal Hayvan Bakımı ve Kullanımı Komitesi tarafından kabul edildi.

1. Ön lezyon Adımlar

  1. İç Kapsül içinde ön ayakları Alan tanımlanması AAV-GFP kullanarak
    1. kurumsal ve ulusal kurallara uygun olarak - (13 hafta ~ 400 gr, 11) Ev Sprague Dawley sıçanları işlemek ve.
    2. Uygun bir sterilizatör (Buhar veya Plazma sterilizatör) kullanarak tüm cerrahi aletleri ve elektrotları sterilize edin. Sterilizasyon, 30 dakika, kuru 30 dakika ayarı olarak 121 ° C 'de buharlı sterilizatör kullanımı.
    3. kas içi enjeksiyon yoluyla ketamin hidroklorür (100 mg / kg) ve ksilazin (7 mg / kg) karışımı ile hayvan anestezisi. pençe sıkıştırarak anestezi derinliğini kontrol edin. Bir ısıtma pedi altında aracılığıyla 37.5 ± 0.5 ° C vücut ısısını korumakhayvanın vücut.
    4. bir kulak çubuğu ve ağız tutucu kullanarak bir stereotaktik çerçeve içinde hayvan yerleştirin.
    5. Temiz ve% 70 alkol ve povidon iyot çözeltisi ile cerrahi siteyi dezenfekte edin. intraoperatif ağrıyı azaltmak amacıyla kafatası kesi bölgesinde kafa derisi altında% 2 lidokain hidroklorür Infiltrate.
    6. gözlerin kurumasını önlemek için veteriner oftalmik merhem sürün. operatif sitelere hayvan üzerinde bir steril örtüyü yerleştirin. Steril şartlarda tüm işlemleri koruyun.
    7. Bir neşter kullanılarak 2 cm'lik bir orta hat kafatası kesi gerçekleştirmek ve tel Toplayıcılı bilateral cilt geri çekin. pamuklu ve% 30 hidrojen peroksit ile kafatası kurulayın.
    8. motor korteksin ön ayakları alanı üzerinde bir el parça matkap kullanarak bir delik açın ve virüs enjeksiyon mikro currette ile yolu temizlemek (AP: +2.5 bregmadan, ML orta hattan 2.5 ±).
    9. Buz ve yük 1 ul üzerinde AAV-GFP (2 x 10 12 virüs molekülleri / ml) Çözülme10 ul şırınga virüs. stereotaktik çerçeve üzerinde şırınga yerleştirin.
    10. önceden yapılmış delik iğne taşımak ve dura derinliklerine iğne 1 mm indirin.
    11. virüs yavaş (0.1 ul / dakika) yüksek hassasiyetli mikropompayı kullanılarak enjekte edilir ve virüsün yayılmasına izin vermek için 10 dakika daha iğneyi yerinde bırakın.
    12. tuzlu sulama ile ameliyat yerinin temizlendikten sonra, 3-0 naylon sütür ile yara sabitleyin; stereotaktik çerçeveden sıçan bırakın ve bir kurtarma odasına transfer. Ameliyat sonrası ağrı kontrolü için kas içi enjeksiyon yoluyla ketoprofen (2 mg / kg) uygulayınız.
    13. ısıtma pedi ile vücut sıcaklığına (37 ° C) muhafaza etmek ve gerekirse deri altına enjeksiyon yoluyla bir intramüsküler enjeksiyon ve% 2 lidokain hidroklorid ile (% 0.1, 1 mi), ikinci jenerasyon cephems sınıf antibiyotiği. onu korumak için yeterli bilinci yerine kadar gözetimsiz bir hayvan bırakmayınsternum yatma. Tek bir ev tam iyileşme kadar hayvan.
    14. 2 aşağıdakı - 3 haftalık iyileşme, derin kaputu kas içi enjeksiyon yoluyla ketamin hidroklorür (300 mg / kg) aşırı dozda sıçan anestezisi. ayak kısma yanıt, nabız ve solunum yetersizliği hayvanın ölümüne onaylayın. kaputu sıçan sırtüstü yerleştirin.
    15. göğüs boşluğunu açmak için bir 'Y'şeklinde kesi yoluyla karın boşluğuna açın. Sıkıca bir hemostatla inen aorta kelepçe ve kan drenajı için sıçan kalbin sağ atrium rüptürü. 30 dakika (10 ml / dakika)% 4 paraformaldehid, ardından 5 dakika (10 ml / dak) soğuk% 1 paraformaldehit ile kalbin sol ventrikül içine perfüzyon başlatın.
    16. bir makas kullanarak karkas sıçan kafasını çıkarın. burun boyun orta hat kesi yapmak ve kafatası maruz böylece makas veya rongeur kullanarak boyun kasları kaldırın. Yavaşça beyin kafatası kemikleri ve Duras teşrih.
    17. beyin ekstresi ve gece boyunca% 4 paraformaldehit ile dolu bir 50 ml'lik konik bir tüp içinde, sıçan beyin yerleştirin. Ertesi gün, 1 x PBS ile 3 kez beyin yıkama ve% 30 sukroz çözeltisi içine koyun.
    18. Beyin tamamen% 30 sukroz çözeltisi dibine batar sonra kriyotom -20 ° C'de OCT bileşiği ile cryomold beyin yerleştirin. 40 um kalınlığa ve 200 um arasında bir aralıkta koronal düzlemde beyin dilim.
    19. Slayt yöntemi 14 kullanarak GFP immünohistokimyasal boyama yapın. Birincil antikor uygulayın (1: Anti-Yeşil Floresan Protein, tavşan IgG fraksiyonu 200), beyin dilimlerine gece boyunca 4 ° C 'de. 2. günde, Tween-20 (PBST) çözeltisi ile% 1 Fosfat 3 kez yıkama ve ikincil antikor (1: Keçi anti-tavşan IgG, 500 (H + L)) uygulanır, 1 saat. % 1 PBST ile 3 kez slayt durulayın. beyin dilim üzerinde cam kapak yerleştirin.
    20. floresan mikroskop kullanılarak (emisyon dalga boyu470 nm, emisyon dalga boyu 525 nm, büyütme 5X), internal kapsül AAV-GFP transduced aksonlar gözlemlemek. Transduced akson stereotaktik koordinatlarını belirlemek için Rat Beyin Atlas 15 transduced akson yerleri karşılaştırın
  2. Kapsül Enfarktüs Modelleme Uygun Işık Şiddeti Ayarı Ön lezyon
    1. Optik Sinir Arayüz İnşaatı
      1. Bir kesim matkap kullanarak içinde bir stile ile 27 gauge spinal iğne uygun bir uzunluğa (4 cm) kesin.
        NOT: Kesme sıkıştırmak ve spinal iğne ucu ezmek olabilir; stile kaldırmak ve spinal iğne ezilmiş kısmını çıkarmak ve spinal iğnenin iç kalibreli korumak için spinal iğne ucu lehçe.
      2. bir tarafı patch kablosu (62.5 um'lik çekirdek ile 125 um) optik elyafın ceketin uygun bir uzunluğu (10 cm) bir şerit.
      3. unjacked optik fi takınBER metal boru (dış çapı 17 mm: 3.8 mm, iç çap: 3.3 mm, uzunluk) olarak daha sonra elyafın yaklaşık sıkıştırılır. metal boru fiber optik ve spinal iğne göbek arasındaki boşluğu doldurmak için yararlıdır. iki kez ayağı ile metal borunun 1/2 alt kelepçe.
      4. fiber optik ısı-kurutmalı epoksi uygulayın ve spinal iğne içine fiber optik yerleştirin. hub boş alana ek bir epoksi uygulayın. stabil tespit için 100 ° C de 20 dakika boyunca epoksi Cure.
      5. Spinal iğne dışarı çıkıntı fiber optik tutunmaya ve elmas alıştırma (parlatma) sayfaları kullanarak spinal iğnenin ucunda fiber optik lehçe.
      6. yeşil lazer sisteminin kuplöre yama kablosu FC / PC bağlantı parçası bağlayın ve dijital optik güç ve enerji metre kullanarak fiber optik ucundan ışık yoğunluğunu ölçmek.

2. Photothromİç Kapsül içinde robotik Enfarktüs hasarının

  1. Uygun bir sterilizatör (Buhar veya Plazma sterilizatör) kullanarak tüm cerrahi aletleri ve elektrotları sterilize edin. Sterilizasyon, 30 dakika, kuru 30 dakika ayarı olarak 121 ° C 'de buharlı sterilizatör kullanımı.
  2. hayvan anestezisi (~ 400 g, 11-13 hafta) kas içi enjeksiyon yoluyla ketamin hidroklorür (100 mg / kg) ve ksilazin (7 mg / kg) karışımı ile. pençe sıkıştırarak anestezi derinliğini kontrol edin. hayvanın bünyesinde bir ısıtma pedi vasıtasıyla 37.5 ± 0.5 ° C vücut ısısını korumak.
  3. bir kulak çubuğu ve ağız tutucu kullanarak bir stereotaktik çerçeve içinde hayvan yerleştirin.
  4. Temiz ve% 70 alkol ve povidon iyot çözeltisi ile cerrahi siteyi dezenfekte edin. intraoperatif ağrıyı azaltmak amacıyla kafatası kesi bölgesinde kafa derisi altında% 2 lidokain hidroklorür Infiltrate. gözlerin kurumasını önlemek için veteriner oftalmik merhem sürün.
  5. bir aşırı steril örtüyü uygulaminimal- ve operatif siteleri maruz kalmaktadır. Steril şartlarda tüm işlemleri koruyun.
  6. 2 cm orta hat kafatası kesi gerçekleştirmek ve tel Toplayıcılı bilateral cilt geri çekin. Pamuk swapları ve hidrojen peroksit ile kafatası kurulayın.
  7. Bregma ve lambda aynı düzeyde hizaya kadar burun kelepçe yüksekliğini ayarlayın. KRİTİK ADIM: Bu hizalama doğru da ana deneyde, iç kapsül içinde bir enfarktüs lezyon performans gibi, daha derin bir yapı yaklaşım için çok önemlidir.
  8. bir delik yapın (çapı: 2 mm; AP: bregmadan -2.04; ML: orta hattan 3.0 ±) Fototromboz ikna etmek için bir matkap kullanarak.
  9. Polonyalı ve optik arayüz fiber optik ucunu temizleyin. bükmeden stereotaksik çerçeveye Oni sabitleyin. Oni ucu kontrol öncesi ve optik arayüz yerleştirilmesinden sonra açıkça silin.
  10. optika sokulmasından önce, fiber optiğin ucu lazer yoğunluğu ölçmekSıçan beyni hedef siteye l arayüz. Optik fiberin ucunda öncesi ameliyat adımlarla doğrulandığı gibi, 3.5 mW lazer yoğunluğunu ayarlayın.
  11. internal kapsül hedef bölgeye matkap deliğinden (pre-cerrahi aşamasından doğruladı -7.8 mm) Oni yerleştirin.
  12. Fototromboz sırasında 37.5 ± 0.5 ° C'de vücut ısısını korumak. Düşük vücut ısısı infarktüsü beklenen ölçüde üretmek olmayabilir. kuyruk damarlarının içerisinden doğru Rose Bengal (2 ml / kg) enjekte edilir.
  13. Rose Bengal enjeksiyonundan sonra 90 saniye 1 dakika boyunca 532 nm yeşil lazer açın. Işık verilmesinden sonra yavaşça beyinden Oni çıkarın. ameliyat yerinin temizledikten sonra, yara 3-0 naylon sütür ile yara emniyete sabitleyin; stereotaktik çerçeveden sıçan bırakın ve bir kurtarma odasına transfer.
  14. Yalancı operasyon grubuna (SOG), yerine Gül-Bengal salin enjeksiyonu (0.2 ml / 100 gr) hariç, aynı lezyon yapma yordamı gerçekleştirin.
  15. Ameliyat sonrası ısıtma pedi ile vücut ısısını (37 ° C) muhafaza ve kas içi enjeksiyon yoluyla antibiyotik (ikinci jenerasyon sefalosporin,% 0.1, 1 ml) yönetmek. sternal yatma korumak için yeterli bilinci yerine kadar sahipsiz hayvan bırakmayın. Tamamen iyileşene kadar diğer hayvanlar tarafından işgal kafesine ameliyat sonrası hayvanların iade etmeyin.
    Not: Ön Deney 5 mW 1 mW olan en iyi ışık yoğunluğunu bulmak için aynı prosedür gerçekleştirildi ve prosedür, farklı durumda lezyonun tatminkar ölçüde elde etmek için gerekli olabilir.

Kapsül Enfarktüs hasarının 3. Değerlendirme

  1. Davranış Testi ve Hayvan Gruplandırılması
    1. Whishaw ve arkadaşları tarafından tarif edildiği gibi görevleri ulaşan bir pelet gerçekleştirin. 14 strok modelleme sonra 1 hafta boyunca her gün ön ayakları motor açık değerlendirmek. Tek bir pelet ulaşan görevi gerçekleştirmek1 cm genişliğinde bir yarık ve ön duvarının ortasında önünde bir gıda raf net Pleksiglas (30 x 15 x 35 cm) kullanan gıda kısıtlamalı hayvanlarda (SPRT) (kontrol vücut ağırlığının% 90).
    2. Tercih ön ayakları eğik kontralateral gıda rafta pelet yerleştirin. 3 hafta seans başına 20 pelet yönetin.
      NOT: Sprts başarılı bir sayıda hayvan gıda pelet kavrar ve onu düşürmeden ağzına koyar bir ulaşılabilecek olarak tanımlanır.
    3. aşağıdaki formül ile tanımlanır başarılı ulaştığı bir yüzdesi olarak bir puan hesaplanır
      figure-protocol-1
      NOT: Biz 3 gruba hayvanlar bölmek: Sham grubu (SOG), ılımlı toparlanma grubu (MRG) ve kötü kurtarma grubu (PRG). Eğer bir inme sonrası SPRT skoru>% 50, biz önemli bir lezyon varlığını gösterir MRG gibi sıçan sınıflandırmak, ama ta değil tamamen yokrYer. İnme sonrası SPRT puanı öncesi inme SPRT puanı ile karşılaştırıldığında% 50
  2. Enfarktüs hasarının Neurohistological Onayı
    1. Daha önce tarif edildiği gibi% 4 paraformaldehit ile kardiyak perfüzyonun gerçekleştirin. Beyin tamamen% 30 sukroz çözeltisi içinde dibe çökmesinden sonra, 10 um kalınlığa ve mikrotom ya kriyotom 4 ile 200 um arasında bir aralıkta koronal bölümlendirilmeleri gerçekleştirin.
    2. H & E, Nissl, Luxol hızlı mavi-PAS, sinir lifi proteini-L veya Glial fibriler asit protein boyama ve histolojik bulguları gözlemlemek ile Leke boyama gözlemlemek hedef alan internal kapsül tüm genişliği anlatabileceğiniz optimum ışık yoğunluğunu belirlemek için 4,17.
    3. ImageJ yazılımı kullanarak, beyin slaytlar üzerinde internal kapsül Fototrombotik enfarktüs alanının hacmini ölçmek.
      1. infarkt alanının hacmini ölçmek için, 'ImageJ' yazılımı başlatmak. Dosyaları açmak için, 'Stacks Image' ( 'Resim' → 'Stacks' → 'Stacks Image') üst üste olmak. Düzenleme dosya adı seçin ve ölçek düzenlemek için (→ "Ölçeği ayarla 'Analiz' ') Ölçeği ayarla'.
      2. 'Eklentileri' ı seçin görüntülerin hacmi veya alanı hesaplamak için 'Yığınları ölçün'. 'Dilim Aralığı' içine 2 görüntülerin mesafe aralığını yerleştirin. Tüm resimlerin ROI bir çizim (İlgilenilen Bölge) yapın ve 'Tedbir' tıklayın.
        NOT: Yazılım 'ImageJ' otomatik alanı ve her bir görüntünün hacmi ve bunların toplam hacmi hesaplar.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Burada sunulan yöntem kalıcı bir motorlu açığı olan bir sınırlı kapsül infarktı oluşturmak için tasarlanmıştır. Nedenle, doğru bir şekilde, operasyon öncesi aşamada, iç kapsül içinde hedef belirlemek için önemlidir. internal kapsül piramidal liflerin somatotopik haritalama bugüne kadar yerleşmiş edilmemiştir. Doğru iç kapsül içinde hedef belirlemek için, ön ayakları alanı tasvir edilmelidir. Motor korteks ön ayakları alanına AAV-GFP bir enjeksiyon, iç kapsül (Şekil 1) pi...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Burada sunulan kapsül infarkt modeli ön ayakları işlevlerinde belirgin ve kalıcı motor yetersizliği ile hedeflenen lezyona göstermektedir. Subkortikal kapsül inme Önceki Modeller motor bozukluk ve hızlı bir iyileşme süreci 6,8,9 yetersiz derecede göstermiştir. Bu anlamda, bu model uzun dönem fonksiyonel bozukluğu sergileyen klinik kapsül infarkt olgusu benzer.

Bir sınırlı kapsül enfarktüs modelinin geliştirilmesi en kritik adımlar şunlardır: 1) doğru internal kapsül içinde işlevin...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Yazarların açıklayacak hiçbir şeyi yoktur.

Teşekkürler

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bu çalışma Sağlık Sistemleri Mühendisliği Enstitüsü (IMSE) GIST gelen GIST-Caltech İşbirlikçi Fonu (K04592) bir hibe ile ve Bilim, bilgi ve iletişim teknolojileri ve gelecek Planlama Bakanlığı tarafından finanse Kore NMK vasıtasıyla Temel Bilimler Araştırma Programı tarafından desteklenen (NRF-2013R1A2A2A01067890).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
DC Sıcaklık kontrolörüWORLD PRECISION INSTRUMENTS, INC.
Dijital Stereotaksik AletlerSTOELTING CO.51900
Elektrik StimülatörüCyberMedic Corp.EMGFES 2000
Epoksi Hassas Elyaf Ürünleri, INC.PFP-353ND1Karışım Oranı: < br / > 10 (A): 1 (B-sertleştirici) ağırlıkça 
Kürleme Programı:
1 dk @150 &derece; C
2 ~ 5 dk @120 &derece; C
5 ~ 10 dk @100 &derece; C
15 ~ 30 dk @80 &derece; C
Fiber Optik Yazıcı THORLABS, INCS90R
Fiber patch kabloKORE OPTRON Corp.Dış çap: 3 mm < br / > & Oslash; 200 ve mikro; m
0.39 NA
FC/PC-FC/PC
1 m
Lazer Güç KaynağıCHANGCHUN YENİ ENDÜSTRİLER OPTOELEKTRONİK TEKNOLOJİSİ CO., LTD.MGL-FN-532nm-200mW-14010196
Sıkma halkası ve nbsp;DAWOOTECH CO., LTD.Uzunluk: 19 mm < br / > İç çap: 3 mm < br / > Dış çap: 3,8 mm < br / > Malzeme: SUS
Micro4-mikro şırınga pompası kontrolörüWORLD PRECISION INSTRUMENTS, INC95100
Optik Güç ÖlçerTHOLABS, INCPM100D
Elmas alıştırma (parlatma) levhasıTHORLABS, INCLF3DKum: 3 ve mikro; m
Elmas alıştırma (parlatma) levhasıTHORLABS, INCLF6DGrit: 6 & m
Gül BengalSIGMA-ALDRICH CO., LLC.330000
Kalem uçlu spinal anestezi iğnesi (Spinal iğne) B.BRAUN MELSUNGEN AG 4502027Boyut: 27 G
Uzunluk: 88 mm
İğne: 0,40 mm
Su geçirmez zımpara kağıdı DEERFOS CO., LTDCC261Kum: 1.000 ve mikro; m
Nanofil 10  &mikro; l şırıngaDÜNYA HASSAS ALETLER, INCNANOFIL
Nanofil 33 & nbsp; G BVLD iğnesiWORLD PRECISION INSTRUMENTS, INCNF33BV-2
AAV-GFP virüsüUNC Vektör ÇekirdeğiAAV2-CamKIIa-eYFP2 x 1012 virüs molekülleri/ml
Anti-Yeşil Floresan Protein, Tavşan IgG fraksiyonuLife Technologies, INCA11122birincil antikoru (1:200)
Keçi Anti-Tavşan IgG (H + L)Life Technologies, INCA11034ikincil antikor (1:500)
CeftezoleGUJU Pharma CO.,LTD.A27802741% 0.1, 1 ml
Lidokain hidroklorür enjeksiyonuJEIL PHARMACEUTICAL CO., LTD.A04900271%2, 1 ml
El Aleti MatkapSeshin
Dijital optik güç ve enerji ölçerTHORLABS, INCPM100D
KetoprofenUNIBIOTech
ATC1000

Kaynaklar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Roger, V. L., et al. Heart disease and stroke statistics--2012 update: a report from the American Heart Association. Circulation. 125, 2-220 (2012).
  2. Debette, S., Markus, H. S. The clinical importance of white matter hyperintensities on brain magnetic resonance imaging: systematic review and meta-analysis. Bmj. 341, 3666(2010).
  3. Zhang, K., Sejnowski, T. A universal scaling law between gray matter and white matter of cerebral cortex. PNAS. 97 (10), 5621-5626 (2000).
  4. Kim, H. S., et al. A rat model of photothrombotic capsular infarct with a marked motor deficit: a behavioral, histologic, and microPET study. J Cereb Blood Flow Metab. 34 (4), 683-689 (2014).
  5. Kleim, J. A., Boychuk, J. A., Adkins, D. L. Rat models of upper extremity impairment in stroke. ILAR J. 48 (4), 374-384 (2007).
  6. Frost, S. B., Barbay, S., Mumert, M. L., Stowe, A. M., Nudo, R. J. An animal model of capsular infarct: endothelin-1 injections in the rat. Behav Brain Res. 169 (2), 206-211 (2006).
  7. He, Z., et al. Definition of the anterior choroidal artery territory in rats using intraluminal occluding technique. J Neurol Sci. 182 (1), 16-28 (2000).
  8. Tanaka, Y., et al. Experimental model of lacunar infarction in the gyrencephalic brain of the miniature pig: neurological assessment and histological, immunohistochemical, and physiological evaluation of dynamic corticospinal tract deformation. Stroke. 39 (1), 205-212 (2008).
  9. Shibata, M., Ohtani, R., Ihara, M., Tomimoto, H. White matter lesions and glial activation in a novel mouse model of chronic cerebral hypoperfusion. Stroke. 35 (11), 2598-2603 (2004).
  10. Watson, B. D., Dietrich, W. D., Busto, R., Wachtel, M. S., Ginsberg, M. D. Induction of reproducible brain infarction by photochemically initiated thrombosis. Ann Neurol. 17 (5), 497-504 (1985).
  11. Kuroiwa, T., et al. Development of a rat model of photothrombotic ischemia and infarction within the caudoputamen. Stroke. 40 (1), 248-253 (2009).
  12. Bashkatov, A. N., Genina, E. A., Tuchin, V. V. Handbook of biomedical optics. 83, CRC Press. Boca Raton, Fl. (2011).
  13. Yizhar, O., Fenno, L. E., Davidson, T. J., Mogri, M., Deisseroth, K. Optogenetics in neural systems. Neuron. 71 (1), 9-34 (2011).
  14. Whishaw, I. Q., Whishaw, P., Gorny, B. The structure of skilled forelimb reaching in the rat: a movement rating scale. J Vis Exp. (18), e816(2008).
  15. Jang, S. H. A review of corticospinal tract location at corona radiata and posterior limb of the internal capsule in human brain. NeuroRehabilitation. 24 (3), 279-283 (2009).
  16. Kim, D., et al. Longitudinal changes in resting-state brain activity in a capsular infarct model. J Cereb Blood Flow Metab. 35 (1), 11-119 (2014).
  17. Blasi, F., Whalen, M. J., Ayata, C. Lasting pure-motor deficits after focal posterior internal capsule white-matter infarcts in rats. J Cereb Blood Flow Metab. 35 (6), 977-984 (2015).
  18. Metz, G. A., Antonow-Schlorke, I., Witte, O. W. Motor improvements after focal cortical ischemia in adult rats are mediated by compensatory mechanisms. Behavioural brain research. 162 (1), 71-82 (2005).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya şekillerini yeniden kullanmak için izin iste

İzin iste

Etiketler

Circumscribed Capsular InfarctPhotothrombotic TechniqueInternal CapsuleAAV GFP TracingStereotaxic CoordinatesRose Bengal InjectionGreen Laser SystemOptical Neural InterfaceMotor Deficit ModelWhite Matter Stroke

İlgili makaleler