Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliğiniz gereklidir. Giriş yapın veya ücretsiz denemenizi bugün başlatın.

Yöntem makalesi

Fare Kulak ve Kuyruk Dokular Yaratma İlköğretim Fibroblast Kültürleri

36.4K görüntülenme

⸱

DOI:

10.3791/53565

⸱

10 Ocak 2016

 , 
1Immunology Program, Department of Microbiology, Yong Loo Lin School of Medicine, National University of Singapore, 2NUS Graduate School for Integrative Sciences and Engineering, National University of Singapore

Bu makalede

Özet

Bu kulak ve farelerin kuyrukları primer fibroblastlar üretilmesi için basit ve hızlı bir deney prosedürü tarif etmektedir. Prosedür özel hayvan eğitim gerektirmeyen ve 10 gün oda sıcaklığında saklanan kulaklardan fibroblast kültürlerin üretimi için de kullanılabilir.

Özet

Birincil hücreler doku şirketinden elde edilir yerleşmiş hücre hatlarında ve daha etkin in vivo hücre fizyolojik durumu daha iyi temsil olduğu düşünülmektedir. Bununla birlikte, birincil hücre kültürleri, genellikle sınırlı bir ömre sahiptir ve sık sık yeniden tesis edilmesi gerekir. Fibroblastlar primer hücre kolay ulaşılabilir bir kaynağıdır. Burada, kulakları ve farelerin kuyrukları primer fibroblast kültürleri kurmak için basit ve hızlı bir deneysel prosedür tartışır. Protokolü için 10 gün süreyle oda sıcaklığında depolanan kulak birincil fibroblast kültürleri oluşturmak için de kullanılabilir. Protokol dikkatle takip edildiğinde, bulaşmalar bazı durumlarda uzun süre saklanan steril olmayan doku kullanımına rağmen ortaya çıkması olası değildir. Fibroblastlar kültürde hızla çoğalırlar ve replikatif yaşlanmayı geçmeden önce önemli sayıda genişletilebilir.

Giriş

Birincil hücreler, in vitro koşullarda doku ve kültüre canlı elde edilir. Genellikle birincil hücreler daha yakından fizyolojik durumu ve ölümsüzleştirilmiş veya tümör hücre çizgileri 1 den kaynaklandığı doku genetik yapısının benzer olduğu varsayılır. Bu nedenle, birincil hücreler biyolojik sorular 2,3 eğitimi için yararlı bir model oluşturmaktadır. Ancak, sonsuza kadar büyümesine kurulan hücre hatları aksine, birincil hücreler sonunda kültürdeki yaşlanmayı geçmesi ve sık sık yeniden oluşturulması gerekmektedir.

Yaygın olarak kullanılan birincil hücreler, fibroblastlar, epitel hücreleri, endoteliyel hücreler, T hücreleri, B hücreleri, kemik iliği türevli makrofajlar (BMDM) ve kemik iliği türevli dendritik hücreleri (BMDC) içerir. Fibroblastlar, genellikle birincil hücre kültürü modeli olarak kullanılır. Onlar diğer birincil hücreler üzerinde önemli avantajlar sunuyoruz. Hücre kültürleri kolayca kolayca muhafaza kurulmuş ve hiçbir purifica gerektirirkültür öncesi hücrelerin tion. Onlar, hızlı başlangıç ​​çoğalması ve uzman, orta veya aktivasyon protokolleri için hiçbir şartı var. Fibroblastlar verimli biyolojik, kimyasal ve fiziksel protokolleri 4,5 ile transfekte edilebilir. Hücre kültürleri kurulmadan önce oda sıcaklığında en fazla 10 gün süreyle kulaklarını saklamak için bir olasılık var. Fibroblast kültürleri sitoplazmik süreçlerin görselleştirme için elverişli ve uyarılmış pluripotent kök (iPS) hücrelerden 6 içine yeniden programlanması için uygundur.

Fibroblastlar kollajen proteinleri ve hücre dışı matriks 7 salgılayan bağ dokusunun önemli hücreleridir. Bunlar birçok dokuda 8 yapısal çerçeve sağlar ve yara iyileşmesi ve doku onarımı, 9,10 önemli bir rol oynar.

Burada, biz fibroblast kulaklar kültür ve farelerin 11 kuyrukları kurmak için basit ve hızlı bir (<4 saat) protokol açıklar. Protokol minimal fare gerektirirdeneyimi (diğer protokollere 12,13 aksine) dokular hasat ve 10 gün oda sıcaklığında ortamında saklanır kulak kültürleri oluşturmak için de kullanılabilir.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

Fareler euthanization kadar kurumsal rehberlere (Kurumsal Hayvan Bakımı ve Kullanımı Komitesi (IACUC) kılavuzların Singapur Ulusal Üniversitesi ve Laboratuar Hayvan Araştırmaları Ulusal Danışma Komitesi (NACLAR) kurallar) ile uyumlu patojen içermeyen koşullar yerleştirildiler.

1. Fare

  1. Uygun genetik arka plan bir fare sipariş edin. Bu protokol, tek bir C57BL / 6 fareden alınmış dokuda dayanır.

Tam Orta 2. Hazırlık

  1. % 10 fetal buzağı serumu (FCS), 50 uM 2-merkaptoetanol, 100 uM asparagin, 2 mM glutamin,% 1 penisilin-streptomisin solüsyonu: Roswell Park Memorial Institute (RPMI) 1640 ortamı aşağıdaki bileşenlerin eklenmesiyle tam orta hazırlayın.

Enzim Çözümleri 3. Hazırlık

  1. 15 ml konik alt tüp içinde kollajenaz D çözeltisi hazırlayın.
    1. Kollajenaz D. Di 10 mg tartılır4 ml ssolve kolajenaz D komple ortam.
  2. 1.7 ml mikrosantrifüj tüpü içinde Pronaz çözelti hazırlayın.
    1. Pronaz 10 mg tartılır.
    2. 1 M Tris tamponu (pH 8.0) 5 ul ekleyin. 0.5 M EDTA (pH 8.0) 1 ul ekleyin.
    3. Steril su 494 ul ile doldurun.
    4. 30 dakika için bir su banyosu içinde 37 ° C 'de Pronaz çözelti inkübe edin.

Kollajenaz D-Pronase Mix (≤2 kuyrukları) 4. hazırlanması

Not: Steril bir hücre kültürü kaputu sonraki adımları gerçekleştirin.

  1. Kolajenaz D solüsyonu 4 ml Pronaz çözeltisi 250 ul ekle.
  2. Steril bir 15 ml'lik konik tabanlı tüp içine 0.2 mikron bir şırınga filtreden geçirilmiştir kolajenaz D-Pronaz karışımı geçirin.

Kulak ve Kuyruk Dokular Fibroblast 5. Ekstraksiyon

  1. Uygun kurumsal kurallarına göre fareler Euthanize.
  2. Hücre kültürü kaputu otoklava cerrahi aletler (makas ve forseps) yerleştirin.
  3. Iki adet 10 cm hücre kültür tabaklarında her birine 10 ml tam orta ekleyin.
  4. Kulakları (yaklaşık 1 cm çapında) ve makasla bir fare (kuyruk ucundan) kuyruk 5 cm kesin ve steril bir 50 ml konik bir tüp içinde 40 taban 70 ml etanol içinde% 5 dakika boyunca inkübe edin.
  5. 5 dakika boyunca kaputu açık 10 cm hücre kültürü çanak yerleştirerek hava kuru kulakları ve kuyruğu. Bir kez aşama 5,3 de tarif edildiği gibi aktarım kulak ve iki kültür tabaklarına kuyruk parçaları "kulaklar" ve 10 ml komple ortam içeren "kuyruk" etiketli, kurutulmuştur.
  6. Kulakları ve kuyruğu kullanarak makas saç çıkarın.
  7. Makas kullanılarak boyutu 3 mm'den küçük parçalar halinde kulakları ve kuyruğu kesti.
  8. "Kulakları" ve "kuyruk" etiketli 1.8 ml cryotube viyallere kesilmiş dokuları aktarın ve flakon 1.8 ml işaretine ulaşmak için hacim için yeterli kollajenaz D-Pronase çözüm ekleyin.
  9. Pbir çalkalayıcı üzerinde yatay olarak cryotube şişeleri dantel ve 37 ° C 'de 90 dakika boyunca 200 rpm'de örnekleri sallayın.
  10. 90 dakika inkübasyondan sonra, çalkalayıcı gelen cryotube şişeleri kaldırmak ve kaputu şişeleri yerleştirin.
  11. İki 10 cm hücre kültürü yemekleri, etiketli "kulaklar" ve "kuyruk" her birine 10 ml tam orta ekleyin ve her yemeğin içinde 70 mikron hücre süzgeç koyun.
  12. > 5 dakika boyunca 10 ml şırınga pistonu kullanarak dokuları eziyet zorla aşama 5.11 hazırlanan buna göre etiketlenmiş yemekleri 70 mikron hücre süzgecinden sindirilmiş kulak ve kuyruk dokuları yerleştirin ve. Hücre süzgecinden dışına hücreleri yıkamak için orta bazen hücre süzgeç sallayın.
  13. "Kulaklar" ve "kuyruk" etiketli iki 15 ml konik alt tüpleri içine her yemeğin hücre süspansiyonu pipetle. Ek 10 ml tam orta çanak ve süzgeci yıkayın ve uygun 15 ml konik alt tüplerine orta ekleyin.
  14. Hücreyi Spin~ 580 xg 7 dakika ve bir buzdolabında hücre santrifüj kullanılarak 4 ° C süspansiyon.
  15. Süpernatantı 15 ml konik alt tüp hücre pelet 10 ml tam orta ekleyin ve hücreleri tekrar süspansiyon.
  16. Adımı yineleyin 5.14 ve 5.15.

Hücre Karışımı 6. Kültürleme

  1. Süpernatantı. Hücre topağı kesintisiz olmasını sağlamak.
  2. 10 ml hücreleri tam orta yeniden askıya ve "kulaklar" ve "kuyruk" etiketli iki 10 cm hücre kültürü yemekleri için ilgili karışımı ekleyin.
  3. Kültür: 10 ul amfoterisin B çözeltisi (250 mg / ml stok çözelti) eklenir.
  4. Nemlendirilmiş bir% 5 CO2 inkübatörde 37 ° C'de inkübe hücreleri.
  5. Üçüncü gün, 10 mi taze tamamlanmış artığın ayrılması için amfoterisin B için 10 ul ihtiva eden ortam (Şekil 1 ve 2) ile orta değiştirin.

Fibroblast 7. Alt kültür

  1. When kültürü yaklaşık% 70 ortak akışkanlığa (günlük kültür 3-4) orta kaldırmak ve 5 ml steril 1 x fosfat tamponlu tuzlu su (PBS) ile yıkama hücreleri ulaşır.
  2. PBS çıkarın ve hücreleri 2 ml steril 1 x tripsin-EDTA çözeltisi ilave edilir.
  3. Nemlendirilmiş bir% 5 CO2 inkübatöründe 37 ° C'de 5 dakika boyunca inkübe hücreleri.
  4. 5 dakika sonra, yavaşça kültürü çanak dokunun ve hücrelere 6 ml tam orta ekleyin.
  5. 15 ml konik bir alt tüp hücre süspansiyonu aktarın ve soğutulmuş bir hücre santrifüj kullanılarak ~ 450 xg ve 4 ° C'de 5 dakika boyunca tüp spin.
  6. Süpernatantı ve yavaşça 5 ml tam orta hücre pelet yeniden askıya.
  7. 10 cm hücre kültür kaplarına Tohum 2 x 10 5 hücre ve 7.6 arasındaki adımları 7.1 tekrarlamadan önce 3-4 gün boyunca nemlendirilmiş bir% 5 CO2 inkübatörde 37 ° C'de inkübe hücreleri.

Gönderi için Kulaklar 8. Hazırlık

Not: t gerçekleştirO steril hücre kültürü kaputu sonraki adım.

  1. Uygun kurumsal kurallarına göre fareler Euthanize.
  2. Hücre kültürü kaputu içine otoklava makas ve forseps yerleştirin.
  3. 50 ml'lik konik tabanlı tüp içine 50 mL tam orta ekleyin.
  4. Makasla bir fare kulakları (~ 1 cm çapında) kesin.
  5. Forseps kullanarak (aşama 3'te hazırlanan gibi) 50 ml konik taban tüpü içine kulaklar aktarın.
  6. Uygun bir kutuda oda sıcaklığında göndermeden önce parafilm 50 ml konik alt tüp Seal.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

Doku çöküntüsü önemli bir miktarda doku sonuçlarından fibroblast ekstraksiyonu (Şekil 1). Doku çöküntüsü aksine, fibroblastlar gün 1 ve kültür 3 arasında doku kültürü plastik yüzeylere yapışır. Fibroblast kültürlerinde orta güvenle anlamlı kültür (Şekil 2) enkaz mevcut seviyelerini azaltmak gerektiğini kültür, günü 3 değiştirilebilir. Fibroblastlar bir ince uzun morfoloji ve net bir şekilde görülebilen sitoplazma (Şekil 1 ve 2) göstermektedir. Mitotik h...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

Burada kulakları ve farelerin kuyrukları primer fibroblast kültürleri kurmak için, basit, ucuz ve hızlı bir deneysel prosedür sağlar. Ekstraksiyon doku 3 gün sonra izole olan yapışık ve hızlı bölünen fibroblastlar ile sonuçlanmalıdır. Primer hücrelerin önemli bir sınırlama yaşlanması, kalıcı bir büyüme tutuklama 15'dir. Fibroblastlar yaşlanmış hale gelmeden önce protokolü kullanarak, fibroblast kültürleri boyutu (3/2 katı artış) ve genişletmek için başarısızlık artış, hücrelerin yassılaşmasına ile gösteri...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

Yazarlar herhangi bir mali çıkar çatışması beyan etmemektedir.

Teşekkürler

Bu çalışma, NRF hibesi HUJ-CREATE - Hücresel ve Moleküler Enflamasyon Mekanizmaları tarafından desteklenmiştir.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
RPMI-1640HyCloneSH30027.01
Fetal Buzağı SerumuHyCloneSV30160.03
2-merkaptoetanolSigma-AldrichM3148
AsparaginSigma-AldrichA4159
GlutaminSigma-AldrichG8540
Penisilin / StreptomisinHyCloneSV30010
Analiz için EtanolMerck Millipore107017Mutlak
Kollajenaz DRoche Teşhis11088866001Clostridium histolyticum, liyofilize, steril olmayan
Pronaz proteazMerck Millipore53702'denStreptomyces griseus 
Tris tamponu (pH 8)1. BASE1415Ultra saf sınıf
0.5M EDTA (pH 8)1. BAZBUF-1053Biyoteknoloji sınıfı
10X Fosfat Tamponlu Salin (PBS)1. BASEBUF-2040-10X4LUltra saf sınıf
Tripsin-EDTA çözeltisi 10XSigma-Aldrich59418C-100ML% 0.5 tripsin,% 0.2 EDTA, fenol kırmızısı olmadan SER-TAIN işlemi ile ışınlanmış tripsin gama, tuzlu
Amfoterisin BSigma-AldrichA2492-20ml250 & mu; deiyonize suda g / ml, steril filtrelenmiş
MakasAesculap
ForcepAesculapAE-BD312R
0.2 & mu; M şırınga filtresiSartorius Stedim16534
70 & M hücre süzgeciSPL93070
Şırınga pistonuTerumoSS + 10L
Kriyoviyal tüpNUNC368362
1.7 ml mikrosantrifüj tüpüAxygenMCT-175-C
10 cm hücre kültürü kabıGreiner664160Hücre kültürü ile muamele edilmiş tabak 
15 ml konik tabanlı boruGreiner188271
50 ml konik tabanlı tüpGreiner227261
Su banyosuGFL1002
SantrifüjEppendorf5810R
İnkübasyon çalkalayıcıSartorius StedimCertomat-BS1
Zeiss Axiovert 25 ışık mikroskobuCarl Zeiss AG

Kaynaklar

  1. Fitzpatrick, L. E., McDevitt, T. C. Cell-derived matrices for tissue engineering and regenerative medicine applications. Biomater Sci. 3 (1), 12-24 (2015).
  2. Elenbaas, B., et al. Human breast cancer cells generated by oncogenic transformation of primary epithelial cells. Genes Dev. 15 (1), 50-65 (2001).
  3. Stansley, B., Post, J., Hensley, K. A comparative review of cell culture systems for the study of microglial biology in Alzheimer's disease. J Neuroinflammation. 9 (1), 115(2012).
  4. Lim, J., Dobson, J. Improved transfection of HUVEC and MEF cells using DNA complexes with magnetic nanoparticles in an oscillating field. J Genet. 91 (2), 223-227 (2012).
  5. Li, M., et al. High-efficiency transduction of fibroblasts and mesenchymal stem cells by tyrosine-mutant AAV2 vectors for their potential use in cellular therapy. Hum Gene Ther. 21 (11), 1527-1543 (2010).
  6. Patel, M., Yang, S. Advances in reprogramming somatic cells to induced pluripotent stem cells. Stem Cell Rev. 6 (3), 367-380 (2010).
  7. Newman, A. C., Nakatsu, M. N., Chou, W., Gershon, P. D., Hughes, C. C. The requirement for fibroblasts in angiogenesis: fibroblast-derived matrix proteins are essential for endothelial cell luman formation. Mol Biol Cell. 22 (20), 3791-3800 (2011).
  8. Ohlund, D., Elyada, E., Tuveson, D. Fibroblast heterogeneity in the cancer wound. J Exp Med. 211 (8), 1503-1523 (2014).
  9. Guo, S., Dipietro, L. A. Factors affecting wound healing. J Dent Res. 89 (3), 219-229 (2010).
  10. Werner, S., Krieg, T., Smola, H. Keratinocyte-fibroblast interactions in wound healing. J Invest Dermatol. 127 (5), 998-1008 (2007).
  11. Shen, Y. J., et al. Genome-derived cytosolic DNA mediates type I interferon-dependent rejection of B cell lymphoma cells. Cell Rep. 11 (3), 460-473 (2015).
  12. Seluanov, A., Vaidya, A., Gorbunova, A. Establishing primary adult fibroblast cultures from rodents. J Vis Exp. (44), (2010).
  13. Baglole, C. J., et al. Isolation and phenotypic characterization of lung fibroblasts. Methods Mol Med. 117, 115-127 (2005).
  14. Alt, E., et al. Fibroblasts share mesenchymal phenotypes with stem cells, but lack their differentiation and colony-forming potential. Biol Cell. 103 (4), 197-208 (2011).
  15. Kuilman, T., Michaloglou, C., Mooi, W. J., Peeper, D. S. The essence of senescence. Genes Dev. 24 (22), 2463-2479 (2010).
  16. Lander, M. R., Moll, B., Rowe, W. P. A procedure for culture of cells from mouse tail biopsies: brief communication. J Natl Cancer Inst. 60 (2), 477-478 (1978).
  17. Moore, C. B., Allen, I. C. Primary ear fibroblast derivation from mice. Methods Mol Biol. (1031), 65-70 (2013).
  18. Liu, J., et al. Generation of stable pluripotent stem cells from NOD mouse tail-tip fibroblasts. Diabetes. 60 (5), 1393-1398 (2011).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Etiketler

Fare Kulak DokusuFare Kuyruk DokusuDoku SindirmeKollagenaz Pronaz ÇözeltisiHücre Süzgeci FiltrasyonuSantrifügasyon Yıkama BasamaklarıAmfoterisin B UygulamasıVimentin Markör BoyamasıTrypsin EDTA Pasajlama
Fare Kulak ve Kuyruk Dokular Yaratma İlköğretim Fibroblast Kültürleri
Bize Ulaşın
Kütüphaneye Öner

Gizlilik

Kullanım Koşulları

Politikalar

Telif Hakkı © 2026 MyJoVE Corporation. Tüm hakları saklıdır.