Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliğiniz gereklidir. Giriş yapın veya ücretsiz denemenizi bugün başlatın.

Yöntem makalesi

Bir Antijen odaklı Kolit Modelinin Geliştirilmesi Antijen T hücreleri için Hücreler sunulması ile Antijen Sunumu Eğitim için

8.6K görüntülenme

⸱

DOI:

10.3791/54421

⸱

18 Eylül 2016

 ,  ,  , 
1APC Microbiome Institute, University College Cork, 2Division of Gastroenterology and Hepatology, University Hospital Basel, 3Institute of Microbiology and Biotechnology, University of Ulm

Bu makalede

Özet

Bu antijen güdümlü kolit modelinde, kırmızı bir floresan proteini eksprese eden OT-II CD4+ T hücreleri, mononükleer fagositlerde (MP'ler) yeşil bir floresan proteini eksprese eden RAG-/- farelere evlat edinilmiş olarak aktarıldı. Ev sahipleri, bir camgöbeği floresan proteinine (CFP) kaynaşmış ovalbümin proteinini (OVA) eksprese eden Escherichia coli (E.coli) ile sorgulandı.

Özet

İnflamatuar bağırsak hastalığı (IBD), gastrointestinal sistemi (GIT) etkileyen kronik bir inflamasyondur. Hastalık sırasında yer alan immünolojik mekanizmaları incelemenin en iyi yollarından biri, kolitin T hücresi transfer modelidir. Bu modelde, immün yetmezliği olan fareler (RAG-/- alıcıları), sağlıklı vahşi tip konakçılardan alınan naif CD4 + T hücreleri ile yeniden oluşturulur.

Bu model, bağırsak iltihabının devam ettiği ancak tanımlanmış bir antijene bağlı olmadığı durumlarda, hastalığa ve kronik inflamasyona yol açan en erken immünolojik olayların incelenmesine izin verir. Antijen sunan hücrelerin (APC'ler) hastalık sürecindeki potansiyel rolünü incelemek için, tanımlanmış bir kommensal kaynaklı antijenin kolite yol açtığı antijen güdümlü bir hastalık modeline sahip olmak yararlıdır. Bu nedenle bir antijen güdümlü kolit modeli geliştirilmiştir. Bu modelde, OVA proteinindeki sadece spesifik epitopları tanıyabilen OT-II CD4 + T hücreleri, CFP-OVA eksprese eden E. coli ile mücadele edilen RAG-/- konakçılara aktarılır. Bu model, lamina propriadaki APC'ler ve T hücreleri arasındaki etkileşimlerin incelenmesine izin verir.

Giriş

bağırsak dış ortama maruz vücudun büyük bir yüzeydir. yerleşik mikropların geniş diziler bağırsak Mikrobiyota (veya mikroflora) oluşturmak için insan bağırsağa kolonize. Bu kadar 100 trilyon mikrobiyal hücrelerin oluştuğu tahmin ve biyoloji 1-3 bilinen en yoğun nüfuslu bakteriyel habitatların biri oluşturmaktadır. GIT bakteriler hayatta ve 4 çarpın bir bağırsak niş kolonize. Buna karşılık, Mikrobiyota genomu 1 kodlanmış almayan ek fonksiyonel özellikleri ile ev sahibi endows. Örneğin Mikrobiyota, epitel hücrelerinin çoğalmasını uyarır kendileri tarafından ev sahipliği üretemez vitamin üretir, metabolizmasını düzenler ve patojenlere 4-6 karşı korur. Bu yarar ilişkisi göz önüne alındığında, bazı yazarlar insanların bakteriyel ve insan genlerinin 7,8 bir karışımı olan "süper organizmalar" veya "holobionts" olduğunu ileri sürmüşlerdir. (Insan) ana bilgisayarda Mikrobiyota yararlı etkileri göz önüne alındığında, intestinal bağışıklık sistemi lümen varlıklarını etkinleştirmek değil, aynı zamanda luminal kenarında 9-11 istila patojenleri öldürmek için ortakçı mikropların tahammül gerekiyor. Bağırsak bağışıklık sistemi zararsız ve potansiyel olarak zararlı lümen mikroplar ayırt etmek mekanizmalar geliştirmiştir; Ancak bu mekanizmalar henüz tam olarak 12 anlaşılamamıştır. Bağırsak bütünlüğünü korumak tolerans ve bağışıklık 13 arasındaki dengeyi korumak için sıkı regüle bağışıklık homeostazı gerektirir. Immün homeostasisin bir dengesizlik enflamatuar bağırsak hastalığı (IBD), 3,14 gibi bağırsak hastalıklarının indüksiyonu katkıda bulunur.

Crohn hastalığı (CD) ve ülseratif kolit (UC), iki büyük IBD tipi vardır. Bu hastalıkları olan hastalar genellikle rektal kanama, şiddetli ishal ve karın ağrısı 15,16 muzdarip. IBD tek sebebi halagenetik faktörler, çevresel etkilere ve düzensiz immün yanıtın bilinmeyen, ama bir arada hastalık gelişimi 15 anahtar olay olabilir.

IBD için hayvan modelleri 50 yılı aşkın bir süredir kullanılmaktadır. Son birkaç yıl içinde yeni IBD model sistemler IBD 17,18 patogenezinde ilişkin çeşitli hipotezleri test etmek için geliştirilmiştir. Kronik kolit en iyi karakterize edilmiş bir model T-hücresi homeostazında 19,20 bozulmasını mukozada T-hücre transferi modelidir. 16,21 Bu model T ve (- / - ve SCID farelerde bu RAG gibi) B hücreleri eksikliği konaklara bağışıklığı yeterli fareden naif T hücreleri aktarımı kapsamaktadır. Bu modelde hastalığın gelişimi vücut ağırlığı ishal varlığı, düşük fiziksel aktivite ve zarar değerlendirerek 3-10 hafta boyunca izlenir. Bu yüzden israf sendromu 16 olarak adlandırılır. Sağlıklı farelere kıyasla nakledilen konak kolon doku thicke olduğunur, daha kısa ve 16 ağır. T hücre transferi modelini kullanarak, T hücre popülasyonları IBD 22 patogenezinde nasıl katkıda bulunabileceğini farklı anlamak mümkündür. T hücre transferi modeli antijene özgü bir şekilde hastalık sürecinde APC ve T hücreleri arasındaki etkileşim analiz etmez. Miyeloid hücreler ve lenfoid hücreler arasında bir etkileşim bağırsak iltihabı 23 gelişiminden sorumlu olabileceği gösterilmiştir. IBD pek çok açıdan açıklık olmasına rağmen, hastalık gelişmesine neden ilk olaylar hala net bir şekilde anlaşılması gerekir.

Bu Mikrobiyota transfer kolit yokluğunda gösterilmiştir 24 tespit edilemez. Son zamanlarda, çeşitli teoriler İBH bakterilere 25 karşı bir bağışıklık tepkisinin bir sonucu olabileceğini düşündürmektedir. Yazarlar ayrıca ortakçı bakteri uzak bağırsakta inflamasyon uyarmak için gerekli olduğunu önerdi26. Germ bilgilerini (GF) hayvanlar intestinal immün sistemi genellikle 27,28 bozulmuş, fakat tam yetkin bağırsak bağışıklık sisteminin 29 geliştirilmesine özel patojen içermeyen bakteriler sonuç karışımı ile, bu farelerde bir kolonizasyon. Bu nedenle, Mikrobiyota yatkınlık veya bağırsak iltihabı 30,31 gelişmesine karşı koruyan bir mekanizma olarak ya patogenezde önemli bir unsur olarak gözükmektedir. Güncel teoriler İBH genetik olarak yatkın hastalarda 32, dysbiosis denilen mikrobiyal dengesizlik, bir sonucu olduğunu düşündürmektedir, ancak henüz belli değil dysbiosis neden veya hastalık 12 sonucu ise. IBD gelişiminde mikroorganizmaların rolü dikkate alındığında, in vitro deneyler, CD4 + T hücreleri, bağırsak bakterileri 33,34 ile doldurulan APC 'ler ile aktive edilebilir olduğunu göstermiştir.

Ayrıca, antijenlerin gösterilmiştirBöyle E. gibi farklı kommensal bakteri türleri, E. coli, Bacteroides, Eubacterium ve Proteus, CD4 + T hücrelerini aktive 35 edebiliyoruz. Bu T hücrelerine bakteriyel antijenlerin sunumu IBD gelişimi için önemli olduğunu gösterir. Hastalık sürecinde mikroflorasının türetilen birden fazla antijene karmaşıklığını azaltmak için, bir E. coli suşu OVA antijen üreten oluşturuldu. - / - Transfer kolit RAG olarak OVA spesifik T hücreleri enjekte edilerek indüklendi hayvanların OVA eksprese eden E. ile kolonize E. coli.

Bu model CX 3 CR1 + milletvekilleri, kolon lamina propria (CLP) 36 büyük bir hücre alt kümesi, aktarım sırasında CD4 + T hücreleri ile etkileşim olduğunu düşündüren son kanıtlara dayanmaktadır 37 kolit. Milletvekilleri kendi dendrit 36, 38,39 kullanılarak, bakteri gibi partikül antijeni için bağırsak lümen, örnek. Önceki çalışmalarMilletvekilleri ayrıca 40,41 lümen intestinal sokulan gibi OVA olarak çözünür antijenler, sürebilir gösterdi. CLP CX 3 CR1 + milletvekilleri bolluğu göz önüne alındığında, bu hücrelerin lümen bakterileri örnek ve CD4 T hücreleri ile etkileşim olması mümkündür. E. ile kolonize OVA'ya özel CD4 + T hücreleri ile transplante farelerin Konfokal görüntüleme E. coli CFP OVA CX 3 CR1 + MP'ler antijen tahrik kolit gelişimi sırasında OT-II, CD4 + T hücresi ile temas içinde olduğunu göstermektedir. Bu model, bağırsak APC 'sadece bağırsak lümeninde özel bir antijen-ifade eden bakteriler için spesifik T hücreleri arasındaki antijen sunumu işlemi etüdüne olanak sağlamıştır.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

Fareler yetiştirilen ve Ulm Üniversitesi (Ulm, Almanya) hayvan tesisinde spesifik patojen free (SPF) koşullar altında tutuldu. Tüm hayvan deneyleri yerel hayvan kullanımı ve bakımı komitesi ve Ulusal Hayvan Refahı Kanunu kurallarına göre yapılmıştır.

PCFP OVA Plazmid 1. İnşaat

  1. Ve plazmıd pCI-OVA (dayanıklı ampisilin) ​​bir şablon olarak kullanılması 42 primerleri Ova_SpeI_fw (3'-GACCAACTAGTATGGAATTTTGTTTTGATGTATT-5 ') ve Ova_ClaI_rev (3'GACCAGATCGATTAAGGGGAAACACATCTGCC-5') 37 ile tam boy OVA genini çoğaltmak. Belirli bir OVA-plazmid elde etmek için primerler ve vektör Spel ve Clal kısıtlama siteleri kullanılarak ticari olarak temin edilebilen faj orta vektörüne (OVA kodlayıcı sekansı IE) PCR ürünü klonlama.
  2. Plazmid Pad 1 kullanarak güçlü yapısal promotör P hiper birlikte CFP-kodlama geni yükseltmek -cCFP şablon ve primerler CFP_SacII_fw (3'-GATCGACCGCGGTTCTTGAAGACGAAAGGGCC-5 ') veya (dirençli kloramfenikol) 43 ve CFP_SpeI_rev (3'-GATCGAACTAGTACCACCACCACCACCACCTTTGTAGAGTTCATCCATGC-5') 37.
  3. Astar ve vektörü 37 Spel ve SacI kısıtlama siteleri kullanarak belirli OVA-plazmid (ampisilin dirençli) içine CFP-kodlama geni klonlamak. Bu OVA-kodlayıcı sekanstan CFP kodlama arasında 6 glisin kalıntısı bir ara parçası sunar.

E.coli pCFP-OVA 2. İnşaat

  1. Gece boyunca, döner bir karıştırıcı üzerinde 37 ° C 'de aerobik Luria Bertani (LB) ortamı, 100 ml E.coli DH10B suşu büyütün.
  2. -80 ° C'de gliserol stokları ve mağaza oluşturmak için gliserol 200 ul bakteri kültürü 800 ul karıştırın.
  3. LB ortamı 5 ml gliserol stokundan E.coli DH10B 50 ul ilave edin ve bir döner sallayıcı ove 37 ° C 'de aerobik büyümekrnight.
  4. bir döner titremesi, 37 ° C'de LB ortamı 250 ml, saptırma plakalı 1 litrelik bir Erlenmeyer şişesi kültür aktarın.
  5. 600 nm'de optik bir yoğunluğa kadar olan bakterilerin yetiştirilmesi (OD 600) 0.5 ve daha sonra 30 dakika boyunca buz üzerinde kültüre soğuk. 4 ° C'de 10 dakika boyunca 5000 x g'de santrifüjleyin bakterileri.
  6. Buzla soğutulmuş% 10 gliserol ve santrifüj bakteriler 100 ml 4 ° C'de yeniden süspanse bakteri 10 dakika boyunca 5000 x g'de buz soğukluğunda steril H2O ve santrifüj bakterilerin 100 ml yeniden süspanse bakteriler, 10 dakika boyunca 5000 x g'de 4 ° C'de. İki kez bu son adımı tekrarlayın.
  7. Son yıkama aşamasından sonra,% 10 gliserol, 700 ul bakteri tekrar süspansiyon. -80 ° C'de, sıvı azot ve deposunda 50 ul alikotları dondurun.
  8. önceden soğutulmuş elektroporasyon küvetine (2 mm elektrot mesafesi) içine buz ve transfer bir 50 ul kısım Çözülme.
  9. 50 ul E. plazmid DNA (100 ng) 5 ul ekle E. coli aliquots. 25 iF, 200 ohm (Ω) ve 2,5 kV tek bir darbe ile elektroporasyon gerçekleştirin.
  10. 1 ml önceden ısıtılmış SOC ortamı (5 g / L maya ekstresi, 2g / L tripton, 10 mM sodyum klorid, 2.5 mM potasyum klorid, 10 mM magnezyum klorür, 10 mM magnezyum sülfat) yeniden süspanse bakteri ve 37 ° C'de inkübe aerobik 1 saat karıştırıldı.
  11. LB-agar plakaları üzerinde Plaka bakteri ampisilin, 100 ug / ml (LB-agar 100 ml için 100 mg / ml ampisilin stokunun 100 ul) ve gece boyunca aerobik 37 ° C'de inkübe ile takviye edilmiştir.
  12. ampisilin, 100 ug / ml ile takviye edilmiş LB-agar plakaları tek koloniler ve yeniden çizgi seç. gece boyunca aerobik 37 ° C'de inkübe edin.
  13. Tek koloniler ve plasmid izolasyonu için amfisilin, 100 ug / ml ile takviye edilmiş LB ortamı 10 ml gecede büyür. Piyasada mevcut plazmid Mini hazırlık kiti kullanın ve 30 ul dH 2 O (damıtılmış su) üreticiye göre 'ile plazmid DNA Zehir; s protokol. Sınırlama analizi ve DNA sekanslama 37,42,43 Plasmidlerin edin.
  14. E. pozitif klonların bir kültür kurmak LB ortamı 100 ml E. coli pCFP OVA ampisilin, 100 ug / ml ile takviye edilmiştir. bir döner çalkalayıcı üzerinde gece boyunca 37 ° C'de Aerobik Olarak Büyüyen.
  15. -80 ° C de, saf gliserol ve mağaza 200 ul bakteri kültürü 800 ul karıştırın.
  16. Oda sıcaklığında (RT) 10 dakika boyunca 5000 x g'de, gece boyunca kültürün kalan santrifüj ve fosfat tamponlu tuzlu su (PBS) içinde pelletini. cam slayt üzerine süspansiyonu 10 ul yerleştirin ve bir lamel ile örtün.
  17. CFP-OVA ekspresyonunun floresan (450 nm'de uyarma CFP, 480 nm emisyon) teyit etmek için standart bir floresan mikroskobu örnekleri dikkate alınmalıdır. büyütme 400X'lik ile başlayan bakteri analiz edin.
  18. Santrifüj 10 dakika, oda sıcaklığında 5000 x g de bir gece kültürden bakteri 1 mi. 40 ul pelletiniPBS ve 10 dakika boyunca 95 ° C 'de kaynatın.
  19. 10 dakika için 30,000 x g'de santrifüjleyin örnekleri ve Western blot analizi 37 için süpernatanlar kullanılması. 400: 1 oranında sulandırılmış tavşan kaldırdı OVA karşıtı poliklonal antikor kullanın.

OT-II 3. Nesil / Kırmızı Fare

  1. OT-II / Kırmızı fareler 37 üretmek amacıyla kırmızı floresan proteini ifade eden bir kadın / erkek fare ile bir erkek / kadın OT-II fare (hem suşlar piyasadan temin edilebilir) çapraz.

4. Dalak Hücre İzolasyonu

  1. Herhangi bir halojenli eter soluma yoluyla anestezi sonrası servikal dislokasyon OT-II / Kırmızı fareler Euthanize piyasada mevcut (yukarı indüksiyon için% 5).
  2. Farenin sol üstün karın bir bölümünü kesmek için makas kullanın. Bu karın kısmı altında dalak (koyu kırmızı renk ile oval) bulunmaktadır. kaldırmak için makas ve cımbız kullanın.
    1. OT-II / Kırmızı farelerin dalak ayıklayın ve bir 100 geçirinum hücre filtresi tek bir hücre süspansiyonu elde etmek için 1 ml şırınga pistonu kullanarak 50 ml'lik bir tüp yerleştirilmiştir. PBS ile iki kez 10 mi% 1 ısı ile inaktive edilmiş fetal büyükbaş hayvan serumu (FBS) ile desteklenmiş süzgeç yıkayın.
  3. Oda sıcaklığında 5 dakika boyunca 390 x g'de hücre süspansiyonu santrifüj. Kırmızı kan hücreleri lize etmek için önceden ısıtılmış liziz tamponu (144 mM NH4CI, 17 mM Tris, pH = 7.2) içinde 5 ml pelletini. 37 ° C'de 10 dakika kuluçkalayın.
  4. PBS, 25 ml% 1 FBS ile takviye edilmiş numune yıkanır. Oda sıcaklığında 5 dakika boyunca 390 x g'de santrifüjleyin. 10 ml PBS,% 1 FBS ile takviye pelletini.
  5. Bir Neubauer sayım odası kullanarak hücreleri sayın. % 0,4 Tripan Mavisi solüsyonu 10 ul hücre süspansiyonu, 10 ul karıştırın. 1-2 dakika boyunca inkübe edin.
    1. lekeli hücrelerin 10 ul hemositometre odasına doldurun. Dört 1 x 1 mm bir odacık ve determin 2 kareler mikroskop altında hücreleri saymakkare başına hücrelerin ortalama sayısını e. Canlı hücreler beyaz, ölü hücreler mavi görünür görünür. hücrelerin sayısını belirlemek için / seyreltme faktörü ile hücre çarpın ml. 2-4 kadran sayılır yapılıyorsa, kadranın sayısına göre bölün.

5. CD4 + CD62 T + T Hücre Zenginleştirme

  1. Negatif veya pozitif bir seçim prensiplerini kullanarak manyetik izolasyon kiti ile CD4 + CD62L + T hücreleri için dalak hücreleri zenginleştirmektedir. Burada, CD4 + T hücreleri izole ve daha fazla CD4 + T hücre havuzu içinde CD62L + nüfus için zenginleştirmek için olumlu bir seçim kullanmak için negatif bir seçim kullanın.
    Not: negatif seçim prosedürü, izole edilmiş olmayacaktır hücreleri, (burada bütün CD4 negatif hücreleri), manyetik mikro boncuklar ile birlikte özel antikorlar ile etiketlenir. Sütun yıkama adımları sırasında, EASİ olabilir, böylece, CD4 + T hücreleri, sütun üzerinden geçecekly topladı. pozitif seçim prosedürü hücrelerinde manyetik mikro-ile birleştiğinde uygun antikor ile etiketlenmiş izole edilmesi. Sütun yıkama adımları sırasında etiketli hücreler sütuna kalacak ve manyetik alandan kolon ayrılması ve tampon ile durulanarak toplanabilir.
  2. Negatif seçim işlemi için,% 0.5 büyükbaş hayvan serum albümini (BSA) ile takviye edilmiş, soğuk PBS 40 ul 10 7, toplam dalak hücrelerinin yeniden süspanse edin. (Non-CD4 + T hücreleri spesifik bağlanma antikorları), 10, manyetik izolasyon kitiyle birlikte verilen biyotin etiketli antikor kokteylinin ul ekleyin ve buz üzerinde 15 dakika inkübe edilir.
    1. soğuk PBS 30 ul,% 0.5 BSA ve anti-biyotin mikro-20 ul ile takviye ekleyin. Buz üzerinde 20 dakika inkübe edin.
    2. 10 ml PBS, 5 dakika boyunca 390 x g'de,% 0.5 BSA ve santrifüj ile takviye edilmiş numune ekleyin. İki kez bu adımı yineleyin. % 0.5 BS ile takviye edilmiş, soğuk 1 ml PBS hücrelerin tekrarA.
    3. Manyetik alan negatif seçim prosedürü için özel bir sütun yerleştirin ve soğuk PBS 3 ml ile yıkayın kolon üzerine% 0.5 BSA ile takviye edilmiştir. soğuk PBS 3 ml ile 3 kez sütun üzerine hücre süspansiyonu ekleyin ve yıkama,% 0.5 BSA ile takviye edilmiştir.
    4. 5 dakika boyunca 390 xg'de atık maddenin Santrifüj hücreleri. Sütun üzerinden Atık geçen etiketsiz CD4 + T hücreleri içerir. % 0.5 BSA ile takviye edilmiş 1 ml PBS pelletini ve hücreleri sayın.
    5. Bir Neubauer sayım odası kullanarak hücreleri sayın. % 0,4 Tripan Mavisi solüsyonu 10 ul hücre süspansiyonu, 10 ul karıştırın. 1-2 dakika boyunca inkübe edin.
      1. lekeli hücrelerin 10 ul hemositometre odasına doldurun. Dört 1 x 1 mm bir odanın 2 kareler mikroskop altında hücrelerin sayısı ve kare başına hücrelerin ortalama sayısını belirlemek. Canlı hücreler beyaz, ölü hücreler mavi görünür görünür. hücre / ml çarpma cel sayısını belirlemek içinseyreltme faktörü ile l numarası. 2-4 kadran sayılır yapılıyorsa, kadranın sayısına göre bölün.
  3. Pozitif seçim prosedürü için, 10 7, önceden zenginleştirilmiş CD4 + T hücresi ürünü kesimi başına CD62L mikro-10 ul ekle. Buz üzerinde 15 dakika kuluçkalayın.
    1. 10 ml PBS, 5 dakika boyunca 390 x g'de,% 0.5 BSA ve santrifüj ile takviye edilmiş numune ekleyin. İki kez bu adımı yineleyin. Soğuk 500 ul PBS içinde süspanse% 0.5 BSA ile takviye edilmiştir.
    2. Manyetik alan negatif seçim prosedürü için özel bir sütun yerleştirin ve kolon üzerine% 0.5 BSA ile takviye edilmiş, soğuk 500 ul PBS ile yıkayın. Soğuk 500 ul PBS ile 3 kez sütun üzerine hücre süspansiyonu ekleyin ve yıkama,% 0.5 BSA ile takviye edilmiştir.
    3. manyetik alandan sütun çıkarın ve uygun bir toplama tüpü üzerine yerleştirin. Kolon üzerine% 0.5 BSA ile takviye edilmiş PBS 1 ml ilave edilir ve CD4 + CD62L + T hücresi çalkalayınsıkıca sütuna pistonu iterek sütunda tutulan s.
      Not: İzole CD4 + CD62L + T hücrelerinin hemen örneğin in vivo deneyler gibi akış aşağı uygulamalar için hazırdır. CD4 + CD62L + T hücreleri izole kiti imalatçının talimatına göre, mikro-toksik değildir. Küçük boyutu (yaklaşık 50 nm) nedeniyle, onlar hücreleri aktive yoktur ve onlar hücre yüzey epitoplarını doyurmak olmayacaktır. Bu nedenle izole edilmiş hücreler, kolit 37,44,45 uyarılması için bağışıklık yetersizliği olan farelere aktarılabilir.
    4. Bir Neubauer sayım odası kullanarak hücreleri sayın. % 0,4 Tripan Mavisi solüsyonu 10 ul hücre süspansiyonu, 10 ul karıştırın. 1-2 dakika boyunca inkübe edin.
      1. lekeli hücrelerin 10 ul hemositometre odasına doldurun. Dört 1 x 1 mm bir odanın 2 kareler mikroskop altında hücrelerin sayısı ve kare başına hücrelerin ortalama sayısını belirlemek. Canlı hücreler appeabeyaz, ölü hücreler mavi görünür r. hücrelerin sayısını belirlemek için / seyreltme faktörü ile hücre çarpın ml. 2 Eğer - 4 kadran sayılır ediliyor, kadranın sayısına göre bölün.

Antijen odaklı Kolitin 6. İndüksiyon

  1. - / - Farelerde CX 3 CR1 GFP / + x RAG intraperitonal 3 x 10 5 OT-II / kırmızı CD4 + CD62L + T hücreleri enjekte edilir. Antijene spesifik kolit, E. yönetmek E. coli pCFP OVA ön dişlerin arkasına sonda ya da ağızdan instilasyon ile, hayvan başına 100 ul PBS içinde 1 x 10 8 koloni oluşturan birimi (CFU) bir dozda her iki günde bir.
  2. haftada iki kez vücut nakledilen farelerin kilo ve klinik durumunu (farelerin dışkı, dışkı kıvamı ve aktivitede kan bulunması) izleyin.

Histopatolojik Sınav 7. Doku Örnekleri

  1. inci doku örnekleri almakDaha önce 36,46 açıklandığı gibi farelerin e kalın bağırsak, parafin nötr tamponlu formalin (% 10) ve embed düzeltmek.
  2. Bölüm bir mikrotom üzerinde parafin örnekleri, kızaklar üzerinde monte ve H & E boyama 47,48 gerçekleştirin.
  3. Daha önce 47,48 yayınlanan kalın bağırsağın histoloji kategorize: Normal (0 puan); Hafif kolit (1 puan), orta kolit (2 puan) ve şiddetli kolit (3 puan).

Kolon Lamine Propria Hücreleri 8. İzolasyon

  1. piyasada mevcut servikal dislokasyon herhangi halojenli eter soluma yoluyla anestezi sonrası (indüksiyon için% 5) tarafından nakledilen fareler Euthanize.
  2. karın yukarı bakacak şekilde hayvan aşağı gelecek şekilde yerleştirin. üretral açılış öne cildi kapmak için forseps kullanabilir. göğüs kasık ventral orta hat boyunca cildi kesmek için makas kullanın. tarafta cilt geri çekin.
  3. şeffaf periton kas duvarından kesin vevücut boşluğuna açılması. Çekum 49. anüs gider kolon tanımlayın. 2 ekstremitelerde kesin ve herhangi bir yağ dokusu serbest.
  4. uzunlamasına bir diseksiyon makas kullanılarak kolon açın. PBS, 25 ml ihtiva eden bir petri enkaz ve mukus kaldırmak için% 1 FBS ile takviye edilmiş, kolon dokusu sallamak için cımbız kullanarak. 8 mm parçalar - 5 içine kolon kesin.
  5. Yıkama Tamponu 20 ml içeren 50 ml'lik bir tüp içinde kolon bölümleri yerleştirin. Yıkama tamponu 500 mi DPBS, 10 mM HEPES ve 5 mM etilendiamintetraasetik asit (EDTA) içerir.
  6. maksimum hızda 30 saniye boyunca tüp vorteksleyin.
  7. 200 rpm'de 10 dakika boyunca çalkalama ile 37 ° C'de bir su banyosu içinde kolon bölümleri ile tüp inkübe edin.
  8. İnkübasyondan sonra, maksimum hızda 30 saniye boyunca tüp vorteks.
  9. Süpernatantlar atın ve Yıkama Tamponu 20 ml ihtiva eden yeni bir 50 ml tüp içinde doku örnekleri yerleştirin. Tekrarlayın 6-9 üç defa adımları
  10. s atınupernatants PBS, 25 ml ihtiva eden bir petri doku örnekleri yerleştirin. Birkaç saniye kalan epitel hücreleri çıkarmak için petri yavaşça doku örnekleri sallamak için bir cımbız kullanın. Bu adımı üç kez tekrarlayın.
  11. 2 x 2 mm 2 parçalar halinde kolon dokuları kesin ve Roswell Park Memorial Institute (RPMI), Clostridium histolyticum'dan 0.5 mg / ml kollajenaz tip VIII ve DNasel 10 U / ml ortamı 10 ml kuluçkalama ile bunları sindiremez.
  12. maksimum hızda 30 saniye boyunca tüp vorteksleyin.
  13. 200 rpm'de 35 dakika boyunca çalkalama ile 37 ° C'de bir su banyosu içinde kolon parçacıkları inkübe ve maksimum hızda, 30 saniye, her 5 dakika boyunca tüp vorteks.
  14. İnkübasyonun sonunda maksimum hızda 30 saniye boyunca tüp vorteks.
  15. Yeni bir 50 ml tüp üzerinde bulunan bir 70 mikron hücre süzgecinden geçirilmesiyle sindirilmiş parçalarını toplamak.
  16. 5 dakika boyunca 400 g'de 20 DPBS ile yıkanır ve santrifüj ekleyerek örnek yıkayın. Sonra tekrar süspansiyon tDPBS 1 ml o hücreleri.
  17. Bir Neubauer sayım odası kullanarak hücreleri sayın. % 0,4 Tripan Mavisi solüsyonu 10 ul hücre süspansiyonu, 10 ul karıştırın. 1-2 dakika boyunca inkübe edin.
    1. lekeli hücrelerin 10 ul hemositometre odasına doldurun. Dört 1 x 1 mm bir odanın 2 kareler mikroskop altında hücrelerin sayısı ve kare başına hücrelerin ortalama sayısını belirlemek. Canlı hücreler beyaz, ölü hücreler mavi görünür görünür. hücrelerin sayısını belirlemek için / seyreltme faktörü ile hücre çarpın ml. 2-4 kadran sayılır yapılıyorsa, kadranın sayısına göre bölün.

FCM Analizi 9. Hücre dışı Boyama

  1. Santrifüj 390 x g'de CLP hücreleri 5 dakika. FACS 1 ml hücrelerin tekrar (PBS,% 1 BSA ve% 0.1 sodyum azid ile takviye edilmiş)
    NOT: Sodyum azit son derece toksiktir. Bu hipotansiyon, hipotermi, baş ağrısı konvülsiyonlar veya ölüme yol açabilir. (0 sodyum azid seyreltik çözeltiler0,1% 1,0), genellikle kullanıcıya olağanüstü tehlike arz, ancak göz ve cilt tahriş edicidir yok. Bir laboratuvar önlüğü ve tek kullanımlık nitril eldiven çift çifti giyerek Bu nedenle, sadece kimyasal kaput sodyum azit kullanın.
  2. FACS A'da seyreltildi FcyRIII / II CD16 / CD32 karşı yönlendirilen tek klonlu bir antikor (mAb) 2.4G2 (0.5-1 ug mAb / 10 6 hücre) ile oda sıcaklığında 15 dakika boyunca inkübe hücreleri
  3. 390 x g'de hücreleri ve santrifüj 5 dakika FACS A 200 ul ekleyin. İki kez bu adımı yineleyin. 0.5, 4 ° C'de 20 dakika hakkında mAb'nin / 10 6 hücre ng hücreleri inkübe edin. FACS A'da antikorlar seyreltilir
  4. 390 x g'de hücreleri ve santrifüj 5 dakika FACS A 200 ul ekleyin. İki kez bu adımı yineleyin. FACS A 100 ul numuneler yeniden süspanse
  5. CX 3 T hücreleri analiz CR1 GFP / + x RAG - / - OT-II / 37 akış sitometresi Red CD4 T hücreleri ile yeniden fareler.
  6. piyasada mevcut yazılım kullanarak verileri analiz edin.

10. Konfokal Mikroskop Analizi

  1. OT-II / Kırmızı CD4 + CD62L + T hücre ile yeniden veya CX 3 CR1 GFP / + farelerin kolon Analiz ve E. 1 x 10 8 CFU ile her ikinci gün ağızdan beslenir coli suşu DH10B pCFP OVA.
  2. makas ve cımbız kullanarak farelerden alınan kolon çıkarın. uzunlamasına bir diseksiyon makas kullanarak açın.
  3. makas kullanılarak kolon örnek bir 5-8 mm parça kesin, cam slaytlar üzerine koymak ve lamelleri ile kaplayın.
  4. 40 / 1.30 büyütülerek konfokal mikroskop ile kolon örnekleri analiz edin.
  5. 509 nm'de 488 nm 'de bir eksitasyon ve emisyon ile belirlenen bir filtre kullanılarak, yeşil floresan proteini (GFP) ile etiketlenmiş CX 3 CR1 + milletvekillerine algılar.
  6. 58 C 554 nm 'de bir eksitasyon ve emisyon ile belirlenen bir filtre kullanılarak kırmızı proteini eksprese eden CD4 + T hücresi Algılama6 nm.
  7. 480 nm'de 450 nm 'de bir eksitasyon ve emisyon ile belirlenen bir filtre kullanılarak E. coli pCFP-OVA algılar.
  8. Ilgi alanı tanımlayabilir ve daha önce co-lokalizasyon analiz yürütmek için 50 açıklandığı gibi dağılım diyagramları oluşturmak. Manders ve Pearson Katsayısı göre Overlap katsayısı: 2 farklı formüller kullanın.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

Antijen tahrik kolit modeli, bir E. kurmak coli suşu güçlü yapısal promotör P hiper (Şekil 1A) kontrolü altında ifade edilir CFP gen tavuk ovalbümin proteininin füzyon yapısı için kodlama dizisine kaynaşmış olduğu bir plazmidi içeren inşa edilmiştir. Floresan mikroskopi gösterir Rekombinant E. E. coli pCFP OVA, fakat ana E. E. coli DH10B, CFP (Şekil 1B) ifade eder. E. ür...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

her modelde olduğu gibi, yukarıda tarif edilen antijen odaklı kolit modeli tekniği gerçekleştiren araştırmacı farkında olmalıdır birkaç sorunları ortaya çıkabilir. OT-II hosts / Kırmızı +, CD4 + T CD62L + hücreleri enjekte zaman araştırmacı periton boşluğuna iğneyi çok nazik ve dikkatli olmak gerekir. Aksi takdirde, ölüme yol açabilecek bir fare ya da bir hastalık oluşturmak olmaz hücre deri altına bağırsak yırtılabilir.

Tipik olarak, fareler, hücr...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

Yazarların açıklayacak hiçbir şeyi yoktur.

Teşekkürler

JHN, İsviçre Ulusal Vakfı (SNSF 310030_146290) tarafından desteklenmektedir.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
LB Et Suyu, Miller (Luria-Bertani)Difco244620
Döner SallamaReiss Laborbedarf e. K.Model 3020 GFL
2 mm boşluklu couvette Peqlab Biotechnologie GmbH71-2020
GliserolSigma-AldrichG5516-100ML
Gen Pulser Xcell sistemi BioRad Laboratories GmbH1652660
LB Agar, Miller (Luria-Bertani)Difco244510
AmpisilinSigma-AldrichA9393-5G
SOC OrtaSigma-AldrichS1797-100ML
Yüksek Saf Plazmid İzolasyon KitiRoche11754777001
AgaroseCarl Roth GmbH & Co3810.1
EDTASigma-AldrichE9884-100G
Tris-HClSigma-AldrichT5941
Buzlu asetik asitSigma-Aldrich537020 ve nbsp;
Jel odası PEQLAB Biotechnology GmbH40-0708
Yükleme BoyasıThermo FisherR0611
GeneRuler 1 kb DNA Merdiveni Thermo FisherSM0312
Etidyum bromür çözeltisiCarl Roth GmbH & Co. KG2218.3
Fotoğraf dokümantasyon sistemi Decon Science Tech GmbHDeVision G 
DNA dizilimi MWG-Biotech GmbH
Fosfat tamponlu salin (PBS)BiochromL182-50
Floresan mikroskobu ZeissHBO 100
Mini-PROTEAN Tetra SystemBio-Rad Laboratories GmbH1658005
PageRuler Boyalı Protein Merdiveni Fermentas, St. Leon-Rot, Almanya
IstanBlue SolutionExpedeon, Cambridgeshire, Birleşik Krallık
Nitroselüloz membran Macherey-Nagel GmbH & Co. KG741280
Elektro kurutma kağıdı& nbsp;Biometra GmbH846-015-600
Sığır Serum Albüminleri (BSA)Sigma-AldrichA6003-25G
Anti-Ovalbumin antikoru Abcamab181688
Anti-tavşan IgG  HRPSigma-AldrichA0545 
Pierce ECL Plus Western Blotting SubstratePierce Biotechnology, Thermo Fischer Scientific Inc32132
ForeneAbbott2594.00.00
FBSInvitrogen10500-064
Falcon Hücre SüzgeçleriFischer Scientific 08-771-2
Amonyum klorürSigma-Aldrich254134-5G
Tris BazSigma-Aldrich10708976001
CD4+< / sup> CD62 L + < / sup> T izolasyon kiti ve nbsp;Miltenyi Biotec130-093-227 
MACS LS Sütunları Miltenyi Biotec130-042-401
MACS MS Sütunları Miltenyi Biotec130-042-201
MidiMACS AyırıcıMiltenyi Biotec130-042-302
MiniMACS AyırıcıMiltenyi Biotec130-042-102
MACS MultiStandMiltenyi Biotec130-042-303
Besleme İğnesi 20GSouthPointe Surgical Supply, IncFN-7903
Formalin çözeltisi, nötr tamponlu, %10Sigma-AldrichHT501128
ParafinSigma-Aldrich1496904
HematoksilenSigma-AldrichH9627
Eozin YSigma-Aldrich230251 
DithiothreitolSigma-AldrichD9779 
Kollajenaz tip VIIISigma-AldrichC-2139
Roswell Park Memorial Institute (RPMI) ortamıAppliChemA2044, 9050
Sodyum azidSigma-Aldrich438456
Fare BD Fc BlokBD Pharmingen553141
FITC konjuge mAb bağlayıcı V & szlig; 5.1, 5.2 & nbsp;BD Pharmingen553189
APC konjuge mAb bağlayıcı CD4 GK1.5 eBioscience17-0041-83
FACS Calibur BD Biosciences
FCS Express V3 yazılımıDeNovo
Meta taramalı konfokal mikroskop ZeissLSM 710 
Zeiss İş İstasyonuZeissLSM 7
Zeiss ZEM yazılımı Zeissv4.2.0.121
Maxisorp immün plakalar NUNC, Roskilde442404
Streptavidin konjuge alkalin fosfatazJackson İmmüno Araştırmaları016-050-084
Alkalin fosfataz substratı 4-Nitrofenil fosfat disodyum tuzu hekzahidratSigma-Aldrich71768-5G
mAb R4-6A2BD Biosciences551216
mAb XMG1.2 BD Biosciences554410
TECAN mikroplaka-ELISA okuyucuTecan
EasyWin yazılımıTecan
DNase I rekombinant4536282001

Kaynaklar

  1. Backhed, F., Ley, R. E., Sonnenburg, J. L., Peterson, D. A., Gordon, J. I. Host-bacterial mutualism in the human intestine. Science. 307, 1915-1920 (2005).
  2. Cario, E., Podolsky, D. K. Intestinal epithelial TOLLerance versus inTOLLerance of commensals. Mol Immunol. 42, 887-893 (2005).
  3. Sartor, R. B., Mazmanian, S. K. Intestinal Microbes in Inflammatory Bowel Diseases. Am J Gastroenterol Suppl. 1, 15-21 (2012).
  4. Sekirov, I., Russell, S. L., Antunes, L. C., Finlay, B. B. Gut microbiota in health and disease. Physiol Rev. 90, 859-904 (2010).
  5. Metges, C. C. Contribution of microbial amino acids to amino acid homeostasis of the host. J Nutr. 130, 1857S-1864S (2000).
  6. Rossi, M., Amaretti, A., Raimondi, S. Folate production by probiotic bacteria. Nutrients. 3, 118-134 (2011).
  7. Ley, R. E., Peterson, D. A., Gordon, J. I. Ecological and evolutionary forces shaping microbial diversity in the human intestine. Cell. 124, 837-848 (2006).
  8. Sleator, R. D. The human superorganism - of microbes and men. Med Hypotheses. 74, 214-215 (2010).
  9. Kumar, H., Kawai, T., Akira, S. Pathogen recognition by the innate immune system. Int Rev Immunol. 30, 16-34 (2011).
  10. Kumar, H., Kawai, T., Akira, S. Pathogen recognition in the innate immune response. Biochem J. 420, 1-16 (2009).
  11. Smith, P. M., Garrett, W. S. The gut microbiota and mucosal T cells. Front Microbiol. 2, 111(2011).
  12. Fava, F., Danese, S. Intestinal microbiota in inflammatory bowel disease: friend of foe? World J Gastroenterol. 17, 557-566 (2011).
  13. Mazmanian, S. K., Liu, C. H., Tzianabos, A. O., Kasper, D. L. An immunomodulatory molecule of symbiotic bacteria directs maturation of the host immune system. Cell. 122, 107-118 (2005).
  14. Muzes, G., Molnar, B., Tulassay, Z., Sipos, F. Changes of the cytokine profile in inflammatory bowel diseases. World J Gastroenterol. 18, 5848-5861 (2012).
  15. Koboziev, I., Karlsson, F., Grisham, M. B. Gut-associated lymphoid tissue, T cell trafficking, and chronic intestinal inflammation. Ann N Y Acad Sci. 1207 Suppl. 1207, Suppl 1. E86-E93 (2010).
  16. Ostanin, D. V., et al. T cell transfer model of chronic colitis: concepts, considerations, and tricks of the trade. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 296, G135-G146 (2009).
  17. Elson, C. O., Sartor, R. B., Tennyson, G. S., Riddell, R. H. Experimental models of inflammatory bowel disease. Gastroenterology. 109, 1344-1367 (1995).
  18. Boismenu, R., Chen, Y. Insights from mouse models of colitis. J Leukoc Biol. 67, 267-278 (2000).
  19. Powrie, F., Leach, M. W., Mauze, S., Caddle, L. B., Coffman, R. L. Phenotypically distinct subsets of CD4+ T cells induce or protect from chronic intestinal inflammation in C. B-17 scid mice. Int Immunol. 5, 1461-1471 (1993).
  20. Rivera-Nieves, J., et al. Emergence of perianal fistulizing disease in the SAMP1/YitFc mouse, a spontaneous model of chronic ileitis. Gastroenterology. 124, 972-982 (2003).
  21. Ostanin, D. V., et al. T cell-induced inflammation of the small and large intestine in immunodeficient mice. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 290, G109-G119 (2006).
  22. Barnett, M., Fraser, A. Animal Models of Colitis: Lessons Learned, and Their Relevance to the Clinic. Ulcerative Colitis - Treatments, Special Populations and the Future. O'Connor, M. , InTech. (2011).
  23. Reindl, W., Weiss, S., Lehr, H. A., Forster, I. Essential crosstalk between myeloid and lymphoid cells for development of chronic colitis in myeloid-specific signal transducer and activator of transcription 3-deficient mice. Immunology. 120, 19-27 (2007).
  24. Yoshida, M., et al. CD4 T cells monospecific to ovalbumin produced by Escherichia coli can induce colitis upon transfer to BALB/c and SCID mice. Int Immunol. 13, 1561-1570 (2001).
  25. Eun, C. S., et al. Induction of bacterial antigen-specific colitis by a simplified human microbiota consortium in gnotobiotic interleukin-10-/- mice. Infect Immun. 82, 2239-2246 (2014).
  26. Nell, S., Suerbaum, S., Josenhans, C. The impact of the microbiota on the pathogenesis of IBD: lessons from mouse infection models. Nat Rev Microbiol. 8, 564-577 (2010).
  27. Chinen, T., Rudensky, A. Y. The effects of commensal microbiota on immune cell subsets and inflammatory responses. Immunol Rev. 245, 45-55 (2012).
  28. Dimmitt, R. A., et al. Role of postnatal acquisition of the intestinal microbiome in the early development of immune function. J Pediatr Gastroenterol Nutr. 51, 262-273 (2010).
  29. Cebra, J. J., Periwal, S. B., Lee, G., Lee, F., Shroff, K. E. Development and maintenance of the gut-associated lymphoid tissue (GALT): the roles of enteric bacteria and viruses. Dev Immunol. 6, 13-18 (1998).
  30. Ohkusa, T., Nomura, T., Sato, N. The role of bacterial infection in the pathogenesis of inflammatory bowel disease. Intern Med. 43, 534-539 (2004).
  31. van Lierop, P. P., Samsom, J. N., Escher, J. C., Nieuwenhuis, E. E. Role of the innate immune system in the pathogenesis of inflammatory bowel disease. J Pediatr Gastroenterol Nutr. 48, 142-151 (2009).
  32. Kaur, N., Chen, C. C., Luther, J., Kao, J. Y. Intestinal dysbiosis in inflammatory bowel disease. Gut Microbes. 2, 211-216 (2011).
  33. Trobonjaca, Z., et al. MHC-II-independent CD4+ T cells induce colitis in immunodeficient RAG-/- hosts. J Immunol. 166, 3804-3812 (2001).
  34. Brimnes, J., Reimann, J., Nissen, M., Claesson, M. Enteric bacterial antigens activate CD4(+) T cells from scid mice with inflammatory bowel disease. Eur J Immunol. 31, 23-31 (2001).
  35. Cong, Y., et al. CD4+ T cells reactive to enteric bacterial antigens in spontaneously colitic C3H/HeJBir mice: increased T helper cell type 1 response and ability to transfer disease. J Exp Med. 187, 855-864 (1998).
  36. Niess, J. H., et al. CX3CR1-mediated dendritic cell access to the intestinal lumen and bacterial clearance. Science. 307, 254-258 (2005).
  37. Rossini, V., et al. CX3CR1(+) cells facilitate the activation of CD4 T cells in the colonic lamina propria during antigen-driven colitis. Mucosal Immunol. 7, 533-548 (2014).
  38. Vallon-Eberhard, A., Landsman, L., Yogev, N., Verrier, B., Jung, S. Transepithelial pathogen uptake into the small intestinal lamina propria. J Immunol. 176, 2465-2469 (2006).
  39. Chieppa, M., Rescigno, M., Huang, A. Y., Germain, R. N. Dynamic imaging of dendritic cell extension into the small bowel lumen in response to epithelial cell TLR engagement. J Exp Med. 203, 2841-2852 (2006).
  40. Farache, J., et al. Luminal Bacteria Recruit CD103(+) Dendritic Cells into the Intestinal Epithelium to Sample Bacterial Antigens for Presentation. Immunity. , (2013).
  41. Farache, J., Zigmond, E., Shakhar, G., Jung, S. Contributions of dendritic cells and macrophages to intestinal homeostasis and immune defense. Immunol Cell Biol. 91, 232-239 (2013).
  42. Schirmbeck, R., et al. Translation from cryptic reading frames of DNA vaccines generates an extended repertoire of immunogenic, MHC class I-restricted epitopes. J Immunol. 174, 4647-4656 (2005).
  43. Balestrino, D., et al. Single-cell techniques using chromosomally tagged fluorescent bacteria to study Listeria monocytogenes infection processes. Appl Environ Microbiol. 76, 3625-3636 (2010).
  44. Ortega-Gonzalez, M., et al. Validation of bovine glycomacropeptide as an intestinal anti-inflammatory nutraceutical in the lymphocyte-transfer model of colitis. Br J Nutr. 111, 1202-1212 (2014).
  45. Capitan-Canadas, F., et al. Fructooligosaccharides exert intestinal anti-inflammatory activity in the CD4+ CD62L+ T cell transfer model of colitis in C57BL/6J mice. Eur J Nutr. , (2015).
  46. Salazar-Gonzalez, R. M., et al. CCR6-mediated dendritic cell activation of pathogen-specific T cells in Peyer's patches. Immunity. 24, 623-632 (2006).
  47. Niess, J. H., Leithauser, F., Adler, G., Reimann, J. Commensal gut flora drives the expansion of proinflammatory CD4 T cells in the colonic lamina propria under normal and inflammatory conditions. J Immunol. 180, 559-568 (2008).
  48. Radulovic, K., et al. CD69 regulates type I IFN-induced tolerogenic signals to mucosal CD4 T cells that attenuate their colitogenic potential. J Immunol. 188, 2001-2013 (2012).
  49. Mowat, A. M., Agace, W. W. Regional specialization within the intestinal immune system. Nat Rev Immunol. 14, 667-685 (2014).
  50. Manta, C., et al. CX(3)CR1(+) macrophages support IL-22 production by innate lymphoid cells during infection with Citrobacter rodentium. Mucosal Immunol. 6 (3), 177-188 (2013).
  51. Feng, T., Wang, L., Schoeb, T. R., Elson, C. O., Cong, Y. Microbiota innate stimulation is a prerequisite for T cell spontaneous proliferation and induction of experimental colitis. J Exp Med. 207, 1321-1332 (2010).
  52. Mazzini, E., Massimiliano, L., Penna, G., Rescigno, M. Oral tolerance can be established via gap junction transfer of fed antigens from CX3CR1(+) macrophages to CD103(+) dendritic cells. Immunity. 40, 248-261 (2014).
  53. Fitzpatrick, L. R. Novel Pharmacological Approaches for Inflammatory Bowel Disease: Targeting Key Intracellular Pathways and the IL-23/IL-17 Axis. Int J Inflam. 2012, 389404(2012).
  54. Danese, S. New therapies for inflammatory bowel disease: from the bench to the bedside. Gut. 61, 918-932 (2012).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Etiketler

T Hücresi Transfer ModeliKolonik Lamina PropriaOT-II CD4 T HücreleriCFP-OVA Eksprese Eden E. coliAkış Sitometrisi AnaliziKonfokal Mikroskopi GörüntülemeHücre İzolasyon ProtokolüDoku Sindirme Yöntemi
Bir Antijen odaklı Kolit Modelinin Geliştirilmesi Antijen T hücreleri için Hücreler sunulması ile Antijen Sunumu Eğitim için
Bize Ulaşın
Kütüphaneye Öner

Gizlilik

Kullanım Koşulları

Politikalar

Telif Hakkı © 2026 MyJoVE Corporation. Tüm hakları saklıdır.