Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliğiniz gereklidir. Giriş yapın veya ücretsiz denemenizi bugün başlatın.

Yöntem makalesi

Yoluyla mantarlarda hızlı Silme Üretimi

9.6K görüntülenme

⸱

DOI:

10.3791/55239

⸱

12 Haziran 2017

 ,  ,  , 
1Toxicology and Mycotoxin Research Unit, NPRC, USDA-ARS, 2Hazera Seeds LTD, Brurim, 3Instituto de Hortofruticultura Subtropical y Mediterránea “La Mayora” - Universidad de Málaga - Consejo Superior de Investigaciones Científicas (IHSM-UMA-CSIC), Estación Experimental “La Mayora”

Bu makalede

Özet

Homolog rekombinasyon yoluyla üretilen gen silme mutantları, gen fonksiyonu çalışmaları için altın standarttır. Silme yapılarının hızlı oluşturulması için OSCAR (Agrobacterium-Rekombinasyona hazır plasmidler'in Bir Adımlı Yapısı) yöntemi anlatılmıştır. Agrobacterium aracılı fungal transformasyon izlenir. Son olarak, fungal transformantlarda gen çıkarılmalarının PCR tabanlı onay yöntemi.

Özet

Gereksinim genini geri kalanını değiştirmeden kesin bir şekilde çıkarmak, canlıdaki organizmada belirli bir genin işlevini belirlemek için ideal bir ürün sağlar. Bu protokolde, hassas ve hızlı silme plazmid konstrüksiyonu OSCAR yöntemi anlatılmıştır. OSCAR, ilgilenilen genin saflaştırılmış PCR ile güçlendirilmiş 5 've 3' yanları ve pA-Hyg OSCAR (işaretleyici vektör) ve pOSCAR (birleştirme grubu) olmak üzere tek bir rekombinaz reaksiyonunun gerçekleştirildiği klonlama sistemine dayanmaktadır. vektör). Doğru monte edilen silme vektörünün doğrulanması, kısıtlama sindirim haritalaması ve bunu takiben sıralama ile gerçekleştirilir. Agrobacterium tumefaciens daha sonra silme yapısının fungal sporlara (ATMT olarak anılacaktır) yönlendirilmesine aracılık etmek için kullanılır. Son olarak, silme yapısının homolog veya homolog olmayan rekombinasyon ile entegre edilip edilmediğini belirlemek için bir PCR testi tarif edilmiştir, bu, gen silinmesini veyaSırasıyla ektopik entegrasyon. Bu yaklaşım Verticillium dahliae'de ve Fusarium verticillioides'de diğer türler arasında çok sayıda genin silinmesi için başarıyla kullanılmaktadır .

Giriş

Genetik diseksiyon, bireylerin veya gen kombinasyonlarının fonksiyonel önemini belirlemek için güçlü bir metodolojidir. Spesifik genlerin rolünü anlamak için standart bir yaklaşım, başka herhangi bir gende değiştirilmemiş tek gen mutantlarının üretilmesidir. En güçlü ve en az potansiyel olarak karıştırıcı yaklaşım, başka bir gen fonksiyonuna zarar vermeden, ilgi alanının açık okuma çerçevesinin (GOI ORF) eksiksiz ve kesin bir şekilde silinmesidir.

Silme plasmidinin üretilmesi için standart ligasyon yaklaşımları çoklu adımları gerektirdiğinden, OSCAR 1 için rasyonel , in vitro daha hızlı bir yaklaşım üretmektir. Şekil 1 OSCAR yaklaşımındaki montaj sürecini göstermektedir. Burada açıklanan yöntem, bireysel gen silme vektörlerinin hızlı yapımını, tekli çok parçalı bir reaksiyonda, sonraki Agrobacterium tumefaciens aracılı transfo ile kombinasyon halinde birleştirmenin avantajına sahiptirRmation (ATMT). OSCAR çok hızlıdır ve maya 2'de Gibson grubunun kullanımı gibi diğer stratejilerle iyi bir karşılaştırma yapmaktadır. OSCAR yöntemi, birkaç Ascomycota mantar türü ile başarıyla kullanılmıştır. Bu türler şunları içerir: Fusarium verticillioides (yayımlanmamış), Verticillium dahliae 3 , Setosphaeria turcica 4 , Metarhizium robertsii 5 , Fusarium oxysporum f. sp. Vasinfectum 6 , Pestalotiopsis microspora 7 , Colletotrichum higginsianum 8 ve Dothistroma septosporum 9 ve Sarocladium zeae (yayınlanmamış) .

Bu protokol, primer tasarımı, flank PCR amplifikasyonu, OSCAR BP reaksiyonu, silme yapısı yapısı onayı, transformat gibi yöntem için adım adım talimat sağlarİyonunu Agrobacterium'un yapısı ile, ardından da silme konstruktunun mantar hücrelerine ATMT'ye dayalı olarak aktarılmasını ve nihayet mantar delesyon mutantlarını ektopik olarak entegre edilmiş silme yapılarıyla olanlardan ayırt eder.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

1. Gen Flanlarının PCR Amplifikasyonu için Primer Tasarım

  1. Açık okuma çerçevesi (ORF) de dahil olmak üzere ilgili genin (GOI) genomik bölgesini ve diğer taraftan geni çevreleyen en az 2 kb'yi, FungiDB'den veya diğer genomik veri kaynağından gelen bir kelime işlem dosyasına indirin.
  2. Silme ve etiketi başlatma ve durdurma kodonları için amaçlanan ORF'yi vurgulayın.
  3. İndirilen sekans içinde bitişik ORF'leri belirleyin ve vurgulayın.
  4. 1 kb'lik asgari bir ürün üretmek için PCR primer çifti O1 ve O2'yi tasarlamak için GOI ORF'nin ve primer tasarım aracının 2 kb'lik 5 'ucunu kullanın (bkz. Malzeme Listesi). Bitişik ORF'leri etkilemeye dikkat edin.
    1. 2 kb 5 'kenarını "Sıra Giriş" penceresine yapıştırın. "Özel Parametreleri Göster" kutusunu tıklayın. Aşağıdaki özel tasarım parametrelerini girin: primer TM 58 (dak), 60 (opt) ve 62 (maks.); Astar GC 40 (dak), 50 (opt) ve 60 (maks.); Astar Boyu 22 (dak), 24 (opt) ve 26(Maks); Amplikon Boyutu 1250 (min), 1500 (opt) ve 2000 (maks.).
    2. ORF'ye en yakın ters primeri (O2) yerleştiren sonucu seçin. Testlerin bir ekran görüntüsünü çekin ve astar dizilerini kopyalayıp kelime işlem belgesine yapıştırın.
    3. O3 ve O4 primerleri oluşturmak için 3 'kenar için işlemi tekrarlayın, bu sefer hedef ORF'ye en yakın ileri primeri (O3) yerleştiren sonucu seçin.
  5. 1'den 4'e kadar olan primerlerin 5 'uçlarına uygun bağlantı yerleri ekleyin (bkz. Tablo 1 ).
  6. Ayrıca aşağıdaki bölüm 4'te silme doğrulaması için kullanılacak ORF'ye özgü primerler tasarlayın ve sipariş edin. Gerekirse ORF uzunluğu için ayarlanan Amplicon Boyut 500 (min), 750 (opt) ve 1000 (maks.) Değerlerini kullanmak dışında, parametreler adım 1.4.1'deki ile aynı olmalıdır. Son olarak, homolog rekombinantların doğrulanması için, kromozomun içindeki kanadın hemen dışında bulunan 5 'çıkış ve 3' çıkış primerleri üretin. Bu "dışarı" primerleri ile birlikte kullanılacaktır.Sırasıyla hygR (210) ve hygF (850) ( Şekil 2 ).
  7. Astar sipariş et.

2. OSCAR Yapılarının Üretimi

  1. Bir yüksek doğruluğa sahip Taq kullanarak, bir reaksiyonda primerler (100 uM) O1 ve O2 ve ikinci sırada O3 ve O4 primerleri kullanarak, her biri 5 've 3' kenarlar için iki reaksiyon gerçekleştirin. Reaksiyon karışımı aşağıdakileri içerir: 29.5 uL steril damıtılmış su (SDW), 5 uL 10x LA PCR tamponu, 8 uL 2.5 mM dNTP karışımı, 5 uL 25 mM MgCl2, 1 uL şablon (50 ng / μL), 0.5 uL hi- Fidelite Taq , 0.5 μL Primer O1 ve 5 'kenar için 0,5 μL Primer O2 (veya 3' kenar için 0.5 μL Primer O3 ve 0.5 μL Primer O4) Kullanım reaksiyon koşulları aşağıdaki gibidir: 94 ° C'de 1 dakika, daha sonra 30 çevrim 94 ° C 30 saniye, 60 ° C 30 saniye, 72 ° C 2 dakika sonra nihai adımlar 72 ° C'de 5 dakika ve daha sonra süresiz olarak 10 ° C'de tutulur.
  2. Çalıştırma% 0,8Ürün boyutunu ve göreceli konsantrasyonu belirlemek için standart bir minigel aparatında yaklaşık 125 Vh için agaroz 1x TAE (40 mM Tris asetat pH 8.3, 1 mM EDTA) jel elektroforezi. Post, üreticinin talimatlarına uygun olarak etilyumum lekeli jel boyayı verin. UV aydınlatıcı üzerinde görselleştirin.
  3. 5 've 3' kanatlı ürünler kabaca konsantrasyonda ise bunları birleştirin ve bir afinite kolonu kiti (veya PEG çökeltisi 90 μL kombine PCR ürünleri, 240 μL TE tampon pH 7.5, 160 μL% 30 polietilen glikol PEG8000 30 mM MgCl2 2 ) PCR ürünlerini üreticinin protokolüne göre birlikte saflaştırmak için. Eğer eşit konsantrasyonda değillerse, düşük konsantrasyonlu ürünlerin hepsini yüksek verim reaksiyonundan tahmini eşit miktarda ürünle birleştirin.
  4. Saf DNA konsantrasyonunu ölçmek için bir spektrofotometre kullanın.
  5. Aşağıdakileri karıştırarak BP tepkimesini gerçekleştirin: 1 ng / mL'lik 60 ng / ml'lik bir pOSCAR, 2 ngL'lik 60 ng /ΜL pA-Hyg-OSCAR, 1 μL 60 ng / μL kombine kenarlar, 1 uL klonaz. 25 ° C'de 16 saat inkübe edin. 0.5 uL proteinaz K ekleyerek reaksiyonu durdurun ve 37 ° C'de 10 dakika inkübe edin.
  6. Yüksek yeteneği dönüştürme E. Coli hücreleri. Hem piyasada bulunan yetkili hücreler hem de ev yapımı DH5α CaCl 2 yetkili hücreleri, imalatçının talimatlarına göre alıcılar olarak başarıyla kullanılmıştır. 100 μg / mL spektinomisin (Spek) içeren düşük sodyum (0.5 g / L NaCl) LB plakası.
  7. Yukarıda oluşturulan kolonilerin 10'unu DNA minipreps 10 uygulayarak doğru yapıyı belirleyin. Hin dIII ve Kpn I ile aşağıdaki gibi iki sindirim gerçekleştirin: pipet 5 mcL DNA, her bir enzimden 2 U, 20 mcL toplam hacim için SDW ile 2 mcL uygun 10x tampon. Bu, vektörden ( yaklaşık 7 kb) insert'i (yaklaşık 1.5 kb gen yanları ile 4.5 kb) serbest bırakır veÖngörülebilir bant boyutları verebilen kenarlar.
  8. Sıra 11 , uygun bir bantlama kalıbı gösteren klonları seçin.

3. Mantarlar Agrobacterium tumefaciens Aracı Dönüşüm (ATMT)

  1. Agrobacterium tumefaciens AGL1 soyunu OSCAR silme yapısı ile değiştirin 12 .
  2. GOI OSCAR silme plasmidini içeren AGL1 ile mantarları dönüştür. Bunu yapmak için aşağıdaki adımları uygulayın:
    1. 2 x 10 6 spor / mL'de steril su ile mantar spor süspansiyonu hazırlayın. Bir hemositometre veya otomatik hücre sayacı üzerinde sporları ölçün. 1.5 mL mikrosantrifüj tüpüne 500 μL yerleştirin. Bu ayar, 4 dönüşüm plakası içindir.
    2. 2-3 günlük eski LB-Spec 100 ortamından AGL1 ihtiva eden silme plazmidinin görünür bir tıkaç (halka çapının% 20'sini kaplaması gerekir) eklemek için mavi steril tek kullanımlık bir halka kullanın (bkz. MAterials Kompozisyon listesi) içeren plakaları karıştırın ve spor süspansiyonuna karıştırın. Bakteri hücreleri iyi dağılıncaya kadar ( yaklaşık 5 dakika orta hız) girdap.
    3. Birlikte yetiştirme ortamı içeren dört adet 6 cm'lik Petri kaplarının her birine yerleştirilen bir selüloz zar filtresinin merkezine konidya-Agro süspansiyonundan 100 uL pipetleyin.
    4. Süspansiyonu membran filtrenin tüm yüzeyini kaplayacak şekilde steril cam boncuklar (yaklaşık 4) ile yayın. Alternatif olarak, süspansiyonu geleneksel bir yayma aracı kullanarak yayabilirsiniz. Zar filtresinin bir kaputta yaklaşık 10 dakika kurumasını bekleyin, parafin filmle sarın. Birden fazla dönüştürme kurmak için 3.2.2 ve 3.2.3 adımlarını yineleyin.
    5. Plakayı, oda sıcaklığında 2 gün inkübe edin, ters çevirin.
    6. Membran filtreyi, higromisin B (Hyg) 150 ug / mL, 200 mM sefotaksim ve 100 ug / mL içeren 6 cm Aspergillus seçim ortamı 12 plakasına aktarınmoxalactam. Hig dirençli kolonileri izole etmeden önce oda sıcaklığında 5-7 gün inkübe edin.
    7. Steril kürdan ile, tahmin edilen transformantları, 150 μg / mL Hyg, 100 ug / mL kanamisin içeren 6 cm Potato Dextrose Agar (PDA) plakalarına aktarın.

4. PCR ile silme mutant tanımlanması

  1. Termoliz ile transformantlardan PCR için DNA çıkarın 13 .
    1. Dönüşümcüler, adım 3.2.7'den itibaren PDA üzerinde koloniler oluşturduktan sonra, koloni içindeki küçük miktarda (2 mm x 2 mm) miselyum veya maya hücrelerini lizis çözeltisinin 100 μL'sine (50 mM sodyum fosfat, pH) aktarmak için steril bir kürdan kullanın. 7.4, 1 mM EDTA,% 5 gliserol) ilave edildi.
    2. Karışımı 85-90 ° C'de 20-30 dakika inkübe edin. Adım 4.2'de kullanılıncaya kadar, genomik DNA içeren ham özütü -20 ° C'de saklayın.
  2. Dönüştürücü başına 4 PCR reaksiyonu gerçekleştirin;Seçilebilen markör (bu durumda higromisin fosfotransferaz) ve bir tane de GOI ORF için, 5 've 3' yanlarının sırasıyla homolog yeniden birleştirilmesi.
    NOT: Genellikle bu reaksiyonlar için düşük maliyetli, ucuz Taq kullanırız. Tepkime koşulları yukarıdaki 2.1 adımında tarif edildiği gibidir ve SDW 20 uL, 10x Taq tampon 2.5 uL, dNTPS (10 mM) 0.5 uL, ev yapımı Taq 14 , 0.5 uL, Primer A (100 uM) 0.5 uL, Primer B (100 uM) ) 0.5 uL, Şablon 0.5 uL. Daha düşük konsantrasyonda primer stokları (10 uM) eşit derecede kullanılabilir.
  3. PCR ürünlerinin agaroz jelini ( örn. % 0.8) çalıştırın. Silme mutantları, bir ORF ürününü değil, Hyg bandını üretir. Ektopik bütünleştiriciler iki bandı gösterecek. Vahşi tip sadece ORF bandı üretecektir.
  4. Silinme mutantlarını (ve ektopik transformant veya kontroller için ikisi) gelecekte kullanmak üzere kalıcı olarak saklayın.
    NOT:% 15 gliserol,Suşlarımızı -80 ° C'de uzun vadeli yırtıyorduk.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

Tek bir reaksiyonda OSCAR yöntemi, seçilebilir işaretleyici kaseti çevreleyen silinilecek hedef genin yanlarını içeren bir plazmid üretir. OSCAR kullanarak silme yapılarının üretilmesi çok etkilidir. Bununla birlikte, sistem, bazı parçacıkları içermeyen kısmi yapılar (iki gen kenarı ve seçilebilir işaretleyici) üretebilir. Genellikle, E. coli transformantlarının çoğunluğu doğru OSCAR yapısını içerir. Örneğin, Şekil 2 , Verticillium dahliae geni VDAG_068...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

Bir Adım Agrobacterium Yapısı -Rekombinasyona hazır plazmid (OSCAR), gittikçe artan sayıda Ascomycota mantarları ile başarıyla kullanılmıştır. Yöntem, Basidiomycota'ya ve diğer fungal filumlardan (seçilebilir markör genleri sürükleyen uygun promotörler ile birlikte) olan türlere, Agrobacterium aracılı transformasyon ve homolog rekombinasyonun mümkün olduğunu varsayarak kolayca uygulanabilir olmalıdır. Anti-mantar bileşiğinin seçeneklerini çeşitlendirmek ve çift ve daha yüksek dereceli mutantların ü...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

Yazarların açıklayacak bir şeyi yok.

Teşekkürler

Yazarlar, Fusarium verticillioiodes'de OSCAR mutantları üretmek için yaptıkları çalışmalar için aşağıdaki lisans ve lise öğrencilerine teşekkür ederler : Anjellica Miller, Athar Naseer, Xiu Lin, Katelyn Woodburry, Chelsea Patterson, Kathleen Robertson, Krystina Bradley, Ashton Rogers, Alexis McKensie, Manny Hernandez , Ashle Crepsac, Jeff Delong, Christie Burre, Christie Burre, Daniel O'Meara, Lauren (Victoria) Cook, Jake Goodman, Sampriti De, Oge Okoye, Alyssa Beckstead, Garrett Hibbs, Nick Goldstein, Caroline Twum , Chris Benson, Louis Stokes, Jane Hulse, Jasim Mohammed, James Loggins, Kelli Russell, Gre'Nisha Jones, Kristin Sheaffer, Mariam Hammady, Ava Wilson, Katrina Bazemore, Toney Harper, Karlin McGhee, Mohmed Momin, Rima Momin , Thi Ngoc Le ve Angel Pham.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
FungiDBVeritabanı/ http://fungidb.org/fungidb/
IDT PrimerQuestIDTPrimer tasarımı çevrimiçi yazılım/ http://www.idtdna.com/Primerquest/Home/Index
Microsoft WordDizisi dosya manipülasyonu
Düşük Na LB Spec 100 ortaE. coli dönüştürücü seçimi, bileşim: %1 tripton, %0.05 NaCl, %0.5 maya özütü, katı ortam için ise %1.5 agar
Birlikte yetiştirme ortamıATMT dönüşüm indüksiyonu (Referans 12)
HigromisinMantar dönüştürücü seçimi
PDA ortamıAcumedia7149A
Tek spor eğimli tüplerPDA-Hyg-Kan ortaFungal ransformant izolasyonu, 150 & mu içeren PDA; g / mL higromisin B ve 100 μ g / mL Kanamisin
Cam boncuklarGenlantisC400100Plaka yayma
Nitroselüloz filtreler (47 mm)Fisher09-719-555ATMT için ortak kültürleme
Çeşitli kırlangıç tüpleriçoklu hazırlıklar
Petri plakaları (çeşitli)Bakteri ve Mantarların Kültürü
pA-Hyg OSCARAddgene29640Seçilebilir işaretleyici vektör
pOSCARAddgene29639Montaj vektörü
DH5α Tek Atım Yetkin E. coli cellsYaşam Teknolojileri 12297-016BP reaksiyon dönüşümü
ccdB sağkalım E. coli hücreleriYaşam Teknolojileri A10460pOSCAR'ın bakımı
Ahşap transfer çubuklarıKoloni çizgili
KürdanKoloni toplama
MikrosantrifüjPeletleme Bakteriler, etc.
Hazırlayıcı santrifüjMantar sporları toplama
Diseksiyon mikroskobuTek spor izolasyonu
Otomatik Hücre SayacıSpor süspansiyon hesaplaması
Bileşik mikroskopHemositometre hücre sayımı
QIAquick PCR Saflaştırma Kiti Qiagen28104PCR geni yan ürün saflaştırması
TaKaRa LA Taq Takara Bio USARR002AOSCAR kanat üretimi için Hi Fidelity taq polimeraz
Higromisin BInvivoGenant-hg-5
SpektinomisinSigma22189-32-8
SefotaksimTCI AmerikaC2224
Kanamisin11815032
MokzalaktamSigma-Aldrich43963
JelRed  Phoenix Araştırma ÜrünleriRGB-4103Boyama sonrası agaroz jeller
Qiagen QIAquick PCR Saflaştırma Kiti (Kat. No. 28104) 
(OneShot_ Mach1TM T1R veya One Shot_ OmniMAX™ Invitrogen'den 2 T1R) Thermo Fisher ScientificC862003
Gateway BP Clonase II Enzim karışımıThermo Fisher Scientific11789020pOSAR'da delesyon yapısını birleştirmek için kullanılır
ile Aspergillus minimal ortamı

Kaynaklar

  1. Paz, Z., García-Pedrajas, M. D., Andrews, D. L., Klosterman, S. J., Baeza-Montañez, L., Gold, S. E. One step construction of Agrobacterium-Recombination-ready-plasmids (OSCAR), an efficient and robust tool for ATMT based gene deletion construction in fungi. Fungal Genet Biol. 48 (7), 677-684 (2011).
  2. Gibson, D. G., Young, L., Chuang, R. Y., Venter, J. C., Hutchison, C. A., Smith, H. O. Enzymatic assembly of DNA molecules up to several hundred kilobases. Nat Methods. 6 (5), 343-345 (2009).
  3. Klosterman, S. J., et al. Comparative genomics yields insights into niche adaptation of plant vascular wilt pathogens. PLoS Pathog. 7 (7), (2011).
  4. Xue, C., Wu, D., Condon, B. J., Bi, Q., Wang, W., Turgeon, B. G. Efficient gene knockout in the maize pathogen Setosphaeria turcica using Agrobacterium tumefaciens-mediated transformation. Phytopathology. 103 (6), 641-647 (2013).
  5. Xu, C., et al. A high-throughput gene disruption methodology for the entomopathogenic fungus Metarhizium robertsii. PloS One. 9 (9), (2014).
  6. Crutcher, F. K., Liu, J., Puckhaber, L. S., Stipanovic, R. D., Bell, A. A., Nichols, R. L. FUBT, a putative MFS transporter, promotes secretion of fusaric acid in the cotton pathogen Fusarium oxysporum f. sp. vasinfectum. Microbiology. 161, 875-883 (2015).
  7. Yu, X., Wang, Y., Pan, J., Wei, D., Zhu, X. High frequency of homologous gene disruption by single-stranded DNA in the taxol-producing fungus Pestalotiopsis microspora. Ann Microbiol. 65 (4), 2151-2160 (2015).
  8. Korn, M., Schmidpeter, J., Dahl, M., Müller, S., Voll, L. M., Koch, C. A Genetic Screen for Pathogenicity Genes in the Hemibiotrophic Fungus Colletotrichum higginsianum Identifies the Plasma Membrane Proton Pump Pma2 Required for Host Penetration. PloS One. 10 (5), e0125960(2015).
  9. Chettri, P. Regulation of dothistromin toxin biosynthesis by the pine needle pathogen Dothistroma septosporum: a thesis presented in the partial fulfilment of the requirements for the degree of Doctor of Philosophy (PhD) in Genetics at Massey University, Manawatu, New Zealand . , Massey University. Manawatu, New Zealand. (2014).
  10. Chen Zhou,, Yujun Yang,, Jong, A. Y. Mini-prep in ten minutes. Biotechniques. 8 (2), 172(1990).
  11. Sanger, F., Nicklen, S., Coulson, A. R. DNA sequencing with chain-terminating inhibitors. P Natl Acad SciUSA. 74 (12), 5463-5467 (1977).
  12. Khang, C. H., Park, S. Y., Rho, H. S., Lee, Y. H., Kang, S. Filamentous fungi (Magnaporthe grisea and Fusarium oxysporum). Agrobacterium Protocols. Wang, K. an 2, Humana Press Inc. Totowa, NJ. 403-420 (2007).
  13. Zhang, Y. J., Zhang, S., Liu, X. Z., Wang Wen, H. A., M, A simple method of genomic DNA extraction suitable for analysis of bulk fungal strains. Lett Appl Microbiol. 51 (1), 114-118 (2010).
  14. Pluthero, F. G. Rapid purification of high-activity Taq DNA polymerase. Nucleic Acids Res. 21 (20), 4850-4851 (1993).
  15. McCluskey, K. Boosting Research and Industry by Providing Extensive Resources for Fungal Research. Gene Expression Systems in Fungi: Advancements and Applications. , Springer International Publishing. 361-384 (2016).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Etiketler

Gen DelesyonuPlazmit KonstrüksiyonuFungal SporlarPCR AnaliziRestriksiyon SindirimiHomolog RekombinasyonEktopik İntegrasyonHigromisin DirenciOSCAR Yöntemi
Yoluyla mantarlarda hızlı Silme Üretimi
Bize Ulaşın
Kütüphaneye Öner

Gizlilik

Kullanım Koşulları

Politikalar

Telif Hakkı © 2026 MyJoVE Corporation. Tüm hakları saklıdır.