Yöntem makalesi

Koloni Düzeyde Bireysel olan Bal Arısı Kalkınma Çevre Kimyasalların Etkisinin Değerlendirilmesi

DOI:

10.3791/55296

⸱

1 Nisan 2017

 ,  , 
1Department of Biotechnology and Animal Science, National Ilan University

Bu makalede

Özet

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Burada sunduğumuz Bir metot, bireysel bir bal arısı ve arı koloni hem pestisit kirlenmiş gıda yem için. Yöntem basit larva diyet in vivo besleme yoluyla ve aynı zamanda arı kovanı koloni doğal koşuluyla bağımsız bal arıları üzerinde pestisit etkisi değerlendirilmektedir.

Özet

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Arıcılık ortamında pestisitlerin varlığı, bir bal arısının yaşamını etkileyen en ciddi sorunlardan biridir. Pestisitler, arılar pestisit püskürtülmüş çiçekleri aradıktan sonra arı kovanına geri getirilebilir. Pestisitle kontamine olmuş yiyecekler, daha sonra larvaları besleyen işçiler arasında değiştirilebilir ve bu nedenle bal arılarının gelişimini potansiyel olarak etkileyebilir. Bu nedenle, çevredeki artık pestisitler, bal arısı popülasyonları için kronik bir zarar verici faktör haline gelebilir ve yavaş yavaş koloni çöküşüne yol açabilir. Sunulan protokolde, bal arısı besleme yöntemleri tarif edilmekte ve ya tek bir bal arısına ya da bir koloniye uygulanmaktadır. Burada, pestisit olarak haşere böceklerini kontrol etmek için yaygın olarak kullanılan ve bal arısı larvalarının ve pupalarının gelişimi için zararlı olan böcek büyüme düzenleyicisi (IGR) pyriproxyfen (PPN) kullanılmaktadır. Sunum prosedürü, daha ileri çalışmalar için diğer potansiyel olarak zararlı kimyasallara veya bal arısı patojenlerine uygulanabilir.

Giriş

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Çevrede pestisit varlığı en ciddi sorunlardan biri olduğunu etkileri bir bal arısı 1, 2, 3 yaşamı. Çeşitli çalışmalar, bal arısı kolonilerine ve arı ürünlerde pestisit artıklarının ortak varlığını göstermiştir. Tayvan'da, pestisitlerin ortalama uygulama 11-12 kg / (2005 2013) her yıl ha oldu. Tayvan'da kullanılan pestisitlerin miktarı, 5 AB ülkesinin daha yüksek olması ve Latin Amerika ülkeleri 4. Başka bir deyişle, arıcılık ortam özellikle Tayvan ve muhtemelen diğer ülkelerde, ciddi pestisit stresi çekiyoruz.

Bal arısı Apis mellifera tarımsal sistemlerde 6 önemli tozlayıcı biridir ve aynı zamanda bal gibi değerli ürünler üretmektedir. Ancak, bal arıları fuarlara olanÇeşitli pestisit ve bu pestisitlere ed nektar ve polen 7, 8 toplarken pestisitler ile püskürtüldüğü çiçekler kazarak sonra kovan geri getirilebilir. Onlar da kendilerini kovan 9, 10, 11 iç haşere kontrol problemlerine yönelik arıcılar tarafından pestisit maruz kalabilir. Bal arısı larva gelişim, larva, uçaklar için hemşire arıların beslenir ve çünkü daha kraliçe bu pestisit kirlenen nektarı ve polen 12 maruz kalabilir. Bal arıları için çeşitli pestisitlerin toksisite 13 ele alınması gerekmektedir.

Birçok çabalar çevresel pestisit kalıntı sorunları değerlendirmek için yapılmıştır. Yang ve diğ. bal arısı larvalarının gelişimi üzerine nörotoksik insektisit imidakloprid etkisini testarı kovanı ve imidakloprid bir subletal doz yetişkin arı 14 koku birleştirici davranışı ile sonuçlandığını bildirmiştir. Ayrıca, Urlacher ve diğ. laboratuvar koşullarında 15 altında bir bal arısı işçinin öğrenme performansı üzerinde organofosfat böcek ilacı, klorpirifos, alt öldürücü etkilerini inceledik. Daha önceki çalışmada, biz larva bal arılarına 16 (PPN) piriproksifen bir böcek büyümesi düzenleyici etkisini (IGR), değerlendirdi.

Bu makalede, bal arıları gelişimine kimyasal etkileri değerlendirmek için yöntemler sunuyoruz. Bal arısı besleme yöntemleri tarif ve ya tek tek ya da bal arıları için bir koloni uygulanmıştır. İlk başta, in vivo olarak, bireysel bal arıları üzerinde pestisit etkisini değerlendirmek için kolonilerde larva üzerinde pestisit kirlenmiş temel larva diyet (BLD) farklı konsantrasyonlarda test edilmiştir. Daha sonra doğal condit simüle devamkovan içinde pestisit kirlenmiş şurup kullanılarak pestisit iyonları. Bu yöntemde, yaygın zararlı böceklere karşı kullanılan 17 ve bal arısı larva ve pupa 16, 18, 19 gelişimine zararlı olduğu PPN, sahada pestisitin olumsuz etki temsil edecek bir göstergesi olacaktır.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. hazırlıklar

  1. % 50 şeker şurubu 1 L olun. 1 L'lik GKD 2 O 1 kg sukroz çözülür
  2. BLD piriproksifen (PPN) çözeltisi hazırlayın. 10,000 ppm PPN stok çözeltisi 1.1 L yapmak ve 4 ° C 'de GKD 2 O Mağazada steril 1 L için 100 mL PPN seyreltilir.
  3. Aşağıdaki deney için BLD içinde 0.1, 1, 10 ve 100 mg / kg (ppm) nihai konsantrasyonlara PPN stok çözeltisi ile seyreltilir.
  4. (Koloni düzeyi için) PPN-şurup yapın. Aşağıdaki deney için,% 50 şeker şurubu, 10 ve 100 ppm nihai konsantrasyonlara PPN stokunu.
  5. Bal arısı yetiştirme.
    Not: Burada, deneysel konum Ulusal İlan Üniversitesi (NIU) apiary Yi-Lan Şehir, Tayvan olduğu; (GPS koordinatları: N24.747278, E121.746200).
    1. Bal arısı (Apis mellifera L.) yiyecek miktarına haftalık kolonilerinin kontrol ve (bal depolama alanı boş) gerektiğinde 1 litre% 50 şeker şurubu ile beslenir. Sağlıklı bir tanımlaNormalde yumurtlamaya kraliçe her kolonideki bal arısı tarakların 9 kare gibi koloni.
  6. Temel larva diyet (BLD) 100 mL hazırlayın. (GKD 2 O) steril distile deiyonize su içinde% 6, D-glikoz,% 6 fruktoz ve% 1 maya ekstratı çözülür ve% 50 arı sütü ile tamamlar. 4 ° C'de saklayın ama en fazla 3 gün.
    deneyden önce 35 ° C'ye kadar Öncesi sıcak ve 3 gün içinde kullanın: Not.

İn Vivo Besleme Yöntem 2.

Not: İn vivo besleme yöntemi Hanley ve arkadaşları modifiye edilmiştir. 20

  1. Bal arısı larvası seçimi ve etiketleme.
    1. 4 çerçeve bölümüne kraliçe sınırlandırırken 4 çerçeveleri ve 5 kare, sağlıklı bir koloni 9 kare bölmek için bir kraliçe dışlayıcı yerleştirin. yumurtalar için 4 çerçeve bölümünde en az bir adet boş çerçeve bırakın.
    2. Queen 1 gün için yumurtlamaya sonra, Yumurta görünüm için çerçeveler kontrol etmek ve 1 günlük bir larva kadar 72 saat (4. gün) için kovan içinde yumurta tutun. elle Test kovandan dışarı (24 saat içinde yumurtadan çıkartılmıştır) 1-günlük larvaları işçi içeren çerçevelerin birini alın ve bir arı fırça ile çerçeveden bal arısı işçi çıkarın.
    3. Şeffaf bir sürgünün (Boyut = Uzunluk x Genişlik x kalınlığında = 29.7 mm x 21 mm x 0,1 mm) ile çerçeve kapağı ve raptiyeler (Şekil 1A) ile çerçeve kenarında şeffaf slayt tırnak.
    4. Her bir muamele için, rasgele 50 adet günlük larva (4. gün) seçmek ve şeffaf bir slayt üzerinde kalıcı marker kullanılarak her kuluçka hücresi işareti (Şekil 1A ve 1B).
      Not: Farklı tedaviler arasında karışıklığı önlemek için kalıcı işaretleyici kalem kullanarak hem çerçeve ve şeffaf slaytta her tedavinin bilgisini yazın. İşaretli slaytları çıkarın ve in vivo tutmak </ Em> besleme ve gözlem.
  2. In vivo besleme olarak.
    1. emme miktarına göre, sırasıyla, 10 uL, 10 uL, 20 uL, günün 1, 2 ve 3 de pipetleme her etiketli kuluçka hücresine PPN-BLD (0.1, 1, 10 ve 100 ppm), farklı konsantrasyonlarda ekleme larvalar yaşı. Bir kontrol grubuna BLD (hayır PPN) aynı miktarda ekleyin. Bu şekilde, her bir etiketli kuluçka hücresine PPN-BLD toplam dozu 4, 40, 400 ve 4000 pg birikir.
      NOT: işaretli şeffaf slaytlar tarafından etiketli kuluçka hücrelerini tanır ve beslendikten sonra işaretli şeffaf slaytları çıkarın. işçi arılar tarafından kuluçka hücrelerinin temizlenmesi önlemek için beslenme için taze BLD kullanın.
    2. ayrıca gözlemler için orijinal kolonilerine PPN'ler ile tedavi kareleri döndürür.
      NOT: Her bir işlem dört kolonilerde dört biyolojik tekrarları vardır.
  3. 7. günde tedavi larva Gözlem.
    1. th gözlemlemekE etiketli kuluçka hücrelerinde ölüm ve kapatma oranları kaydedilmiştir çerçevelere etiketli şeffaf slaytlar dönün larvaları PPN ile tedavi.
  4. Gün 13 tedavi pupa ve eclosion oranlarının gözlenmesi.
    1. şapkalı kuluçka hücrelerinin arı mumu kaldırın.
    2. kuluçka hücre içine yumuşak uçlu cımbız koyun ve kelepçe pupa çok hafif sonra yavaşça pupa çıkar.
    3. her bir altındaki laboratuar dokuların çift tabaka ile 24 oyuklu doku kültürü plakalarına pupa aktarın. pupa transferi sırasında hasar ve mortalite kaydedin.
    4. (Yaklaşık 8 gün) ortaya çıkmasına kadar 34 ° C'de ve% 70 nispi nemde bir kuluçka makinesi içinde 24 oyuklu doku kültürü plakaları tutun.
    5. Gözlemleyin ve pupa ve ortaya çıkan bal arıları kaydedin.
  5. istatistik
    1. ± SD ortalaması olarak kaydedilmiş verileri ve mevcut hesaplama
    2. SA varyans analizi (ANOVA) analizini kullanarak verileri analizS ve farklı tedaviler arasında iki ortalama arasındaki farkları analiz en az önemli fark (LSD) testi kullanılır. P-değeri <0.05 istatistiksel olarak anlamlı tanımlar. tablonun aynı sütunda değişik harfler istatistiksel analizi ile belirgin bir etki gösterdi.

Arı Kovanı koloni Düzeyde PPN 3. Toksisite

  1. bal arısı grupları oluşturun.
    1. 4 kare (Kısım A) ve 5 kare (Bölüm B) 4 kare bölümüne kraliçe sınırlandırırken, sağlıklı bir koloni 9 kare bölmek için dikey bir kraliçe dışlayıcı yerleştirin. yumurtalar için 4-çerçeve bölümünde en az bir adet boş çerçeve bırakın.
      Not: Başka bir kraliçe parçaları arasındaki hareket etmesini kraliçe önlemek için kraliçe kısmının üstüne Excluder koyun.
    2. Queen 1 gün için yumurtlamaya sonra, yumurtaların görünüm için çerçeveler edin. elle bölüm A'dan yumurta dışarı içeren uygun kareleri alın ve bal arısı işçileri çıkarmakArı fırça ile çerçeveden.
    3. Şeffaf slayt ile çerçeve kapağı ve Raptiye ile çerçeve kenarına şeffaf slayt tırnak.
    4. Rasgele yumurta içeren 100 kuluçka hücreleri seçmek ve şeffaf slayt üzerinde kalıcı bir kalem kullanarak her kuluçka hücreyi işaretleyin. Grup 1. farklı tedaviler arasında karışıklığı önlemek için kalıcı bir kalem kullanarak çerçeve ve şeffaf slaytta her tedavinin bilgi yaz olarak bu 100 yavru gözlerini atayın.
    5. 3 gün boyunca bölüm A'ya etiketli çerçeve dönün ve daha sonra yumurta bırakmaya bölüm B için kraliçe aktarın.
    6. 1 gün sonra, B kısmının çerçeve kontrol bir uygun çerçeve belirledikten aşama 3.1.4 tarif edildiği gibi yumurta içeren 100 kuluçka hücreleri etiketlemek. Grup 2 olarak bu 100 yavru gözlerini atayın.
    7. 3 gün boyunca kısım B etiketli çerçeve dönün ve yumurta bırakılması için bir bölüm için kraliçe aktarın.
    8. 6 kez daha Kısım A ve Kısım B arasındaki kraliçe alışverişini tekrarlayın ve sayısal olarak gruplarını atamak,sırasıyla (Şekil 2). 9 gruplarının toplam olmalıdır.
  2. 13. günde, PPN şeker şurubu T reat bal arısı kolonileri (Şekil 2).
    1. 1 L'lik bir plastik arı besleyici kutusunda 10 ya da 100 ppm (G x L x Y = 20 cm x 30 cm x 3.5 cm) içeren% 50 PPN şeker şurubu ekleyin ve deneysel koloniler çerçevelerin üstünde kutu koydu.
      Not: kuluçka hücreleri mühürlü edilmiş olarak Grup 1 13. günde PPN almaz.
    2. aşama 2.2 'de tarif edildiği gibi 1 L% 50 şeker şurubu (bir PPN) ile kontrol doyur.
  3. 5. günde (Şekil 2) her bir grup için, 100 etiketli kuluçka hücrelerinin yumurta kuluçka oranı olarak 1 günlük bir larva ve kayıt sayısı. Bal arısı yumurtaları genellikle 0 gün larva haline yumurtadan 3 gün sürebilir; Bu nedenle, kontrol ve 100 yumurta içeren 1. günde kuluçka hücreleri etiketlemek ve oranı kuluçka yüzdesi elde etmek için 5 gün Her grup için, 1 günlük bir larva sayısı.
  4. C11. günde (Şekil 2) her bir grup için, 100 etiketli kuluçka hücrelerinin larva kapatma hızı başlıklı kuluçka hücreleri ve kayıt İzahname'de. 6 ila 7 günlük bir larva kuluçka hücreleri larva, pupa haline gelmesi için bal arısı işçiler tarafından arı mumu ile sınırlandırılır.
  5. Pupa olgunlaşmasını gözlemleyin ve 17. günde (Şekil 2) her bir grup için, 100 etiketli kuluçka hücrelerinin eclosion oranı kaydetmek.
    1. şapkalı kuluçka hücrelerinin arı balmumu çıkarın ve yavaşça yumuşak uçlu cımbız ile pupa çıkar. her bir altındaki laboratuar dokuların çift tabaka ile bir 24 oyuklu doku kültürü plakalarına pupa aktarın.
    2. ortaya çıkıncaya kadar 34 ° C'de ve% 70 bağıl nemde bir kuluçka makinesi içinde 24 oyuklu doku kültürü plakaları tutun.
    3. Gözlemleyin ve pupa kaydetmek ve Grup 9 kadar her gruptan (49 deneysel gün) bal arıları ortaya çıktı.
      Not: Her bir işlem dört biyolojik tekrarları vardır.
  6. istatistik
    1. Kaydedilen veri hesaplama ve ortalama olarak mevcut± SD.
    2. Tedaviler çiftleri arasındaki önemli farklar analiz (örneğin, 0 ppm / 10 ppm, 10 ppm / 100 ppm ve 0 ppm / 100 ppm) Student iki-kuyruklu-testi kullanılarak her bir grupta. P-değeri <0.05 ise istatistiksel olarak anlamlı tanımlayın.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

bal arısı alan testinde, bir kraliçe yumurtalar için 4-çerçeve bölümünün sınırlıydı. Bu aşama, bir çerçevede kuluçka yoğunluğunu artırmak ve sonraki gözlemlerin kolaylaştırabilir. Her tedavi etiketlendi ve bal arıların gelişim açıkça şeffaf slayt aracılığıyla gözlendi. Arı kovanı bal arısı larvası PPN'i-BLD vivo besleme olarak kesin kolonideki bal arılarına gelişimi üzerinde PPN'nin etkisini değerlendirmek amacıyla yapıldı. In vivo besleme yöntemini kullanarak ...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

kraliçe sınırlı yumurtlama yöntemi ve kraliçe değişimi yöntemi bu protokol dahilinde saha testleri için bal arısı gruplarının oluşturulması kritik adımlardır. kraliçe sınırlı yumurtlama yöntemi bal arılarının yaşam döngüsünün senkronizasyonunu sağlar. Sonuç olarak, araştırmacılar pestisit farklı dozlarda tedavi için aynı yaşta 1 günlük bir larvaları seçebilir. kraliçe değiştirme metodu için, kraliçe bölüm A (4 kare) ve pestisit ve pestisit artıklarının etkilerini değerlendirmek için alan testleri için Bal arısı farklı g...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Yazarlar hiçbir rakip mali çıkarları olduğunu beyan ederim.

Teşekkürler

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bu araştırma Grant 105AS-13.2.3-BQ-B1 Bakanlığı'ndan Hayvan Bürosu ve Bitki Sağlığı Teftiş ve Karantina, Tarım Konseyi, Yürütme Yuan ve Grant 103-2313-B-197-002-My3 dan destek verdi Bilim ve Teknoloji (EN) ait.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
Bal arısı kutusuSAN-YI Bal FabrikasıW1266Bal arıları yetiştirme
Kraliçe dışlayıcı (çerçeveler arasında)SAN-YI Bal FabrikasıI1575Kraliçe sınırlaması 
Ana arı hariç (üstte)SAN-YI Bal FabrikasıI1566Kraliçe sınırlaması üstte 
Arı fırçasıSAN-YI Bal Fabrikası, TayvanW1414çerçevedeki arıları nazikçe temizleyin
Arı besleyiciSAN-YI Bal Fabrikası, TayvanP0219koloniye şeker şurubu besleyin
Şeffaf slaytWan-Shih-Chei, Tayvan (http://www.mbsc.com.tw/a01goods.asp?s_id=40)1139Çerçevelerdeki larva alanını işaretleyin (Malzeme: Polietilen Tereftalat, PET) (Boyut = Uzunluk*Genişlik*kalınlık = 29,7 mm * 21 mm * 0,1 mm)
24 kuyulu tissu kültür plakasıGuangzhou Jet Bio-Filtration Co., LtdTCP011024Ekstraksiyondan pupa
OtoklavTomin medical equipmenco., LTD.TM-321Sterilize edilmiş damıtılmış deiyonize su yapın (ddH2O)
P20 pipetçiGilsonF123600Arı larva besin havuzuna PPN ekleyin
Kuluçka makinesi Yihder Co., Ltd.LE-550RDEkstraksiyondan pupa yetiştirme
KimwipesCOW LUNG INSTRUMENT CO., LTDEkstraksiyondan pupa yetiştirme
Arı sütüUlusal Ilan Üniversitesi (NIU)NIUTemel larva diyeti yapın (BLD)
D-(+)-GlikozSigmaG8270Temel larva diyeti yapın (BLD)
D-(-)-FruktozSigmaF0127Temel larva diyeti yapın ( BLD)
Maya özüCONDA, pronadisa1702Temel larva diyeti yapın (BLD)
SükrozTayvan şeker işbirliğiE01071010Arı yemi için şeker şurubu yapın
Pyriproxyfen (% 11)LIH-NUNG CHEMICAL CO.., LTD.Kayıt No. 1937Deneyde kullanılan böcek büyüme düzenleyicisi (IGR)
yetiştirme KCS34155

Kaynaklar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Ruffi nengo, S. R., et al. Integrated pest management to control Varroa destructor and its implications to Apis mellifera colonies. Zootecnia Trop. 32 (2), 149-168 (2014).
  2. Mullin, C. A., et al. High levels of miticides and agrochemicals in North American apiaries, implications for honey bee health. PLoS One. 5, e9754(2010).
  3. Lu, C. A., Chang, C. H., Tao, L., Chen, M. Distributions of neonicotinoid insecticides in the Commonwealth of Massachusetts, a temporal and spatial variation analysis for pollen and honey samples. Environ. Chem. 13, 4-11 (2016).
  4. Tsai, W. T. Analysis of coupling the pesticide use reduction with environmental policy for agricultural sustainability in Taiwan. Environ. & Pollut. 2, 59-65 (2013).
  5. Weng, Z. H. Pesticide market status and development trend (in Chinese). PRIDE. , https://pride.stpi.narl.org.tw/ (2016).
  6. Kevan, P. G. Pollinators as bioindicators of the state of the environment, species, activity and diversity. Agric. Ecosys. Environ. 74 (1-3), 373-393 (1999).
  7. Kevan, P. G. Forest application of the insecticide fenitrothion and its effect on wild bee pollinators (Hymenoptera: Apoidea) of lowbush blueberries (Vaccinium SPP.) in Southern New Brunswick, Canada. Biol. Conserv. 7, 301-309 (1975).
  8. Crane, E., Walker, P. The impact of pest management on bees and pollination. , IBRA. Cardiff, UK. (1983).
  9. Haouar, M., Decormis, L., Rey, J. Fluvalinate applied to flowering apple trees-contamination of honey-gathering bees and hive products. Agronomie. 10 (2), 133-137 (1990).
  10. Chauzat, M. P., et al. A survey of pesticide residues in pollen loads collected by honey bees in France. J. Econ. Entomol. 99 (2), 253-262 (2006).
  11. Bonzini, S., Tremolada, P., Bernardinelli, I., Colombo, M., Vighi, M. Predicting pesticide fate in the hive (part 1), experimentally determined τ-fluvalinate residues in bees, honey and wax. Apidologie. 42 (3), 378(2011).
  12. Sanchez-Bayo, F., Goka, K. Pesticide residues and bees-a risk assessment. PLoS One. 9 (4), e94482(2014).
  13. Johnson, R. M., Ellis, M. D., Mullin, C. A., Frazier, M. Pesticides and honey bee toxicity-USA. Apidologie. 41, 312-331 (2010).
  14. Yang, E. C., Chang, H. C., Wu, W. Y., Chen, Y. W. Impaired olfactory associative behavior of honeybee workers due to contamination of imidacloprid in the larval stage. PLoS One. 7, e49472(2012).
  15. Urlacher, E., et al. Measurements of chlorpyrifos levels in forager bees and comparison with levels that disrupt honey bee odor-mediated learning under laboratory conditions. J. Chem. Ecol. 42 (2), 127-138 (2016).
  16. Chen, Y. W., Wu, P. S., Yang, E. C., Nai, Y. S., Huang, Z. Y. The impact of pyriproxyfen on the development of honey bee (Apis mellifera L.) colony in field. J. Asia Pac. Entomol. 19 (3), 589-594 (2016).
  17. Dennehy, T. J., DrGain, B. A., Harpold, V. S., Brink, S. A., Nichols, R. L. Whitefly Resistance to Insecticides in Arizona: 2002 and 2003 Results. , San Antonio, TX, USA. http://ag.arizona.edu/crop/cotton/insects/wf/whiteflyresistance0204.pdf 1926-1938 (2004).
  18. Yang, E. C., Wu, P. S., Chang, H. C., Chen, Y. W. Effect of sub-lethal dosages of insecticides on honey bee behavior and physiology. Proceedings of international seminar on enhancement of functional biodiversity relevant to sustainable food production, ASPAC, Tsukuba, Japan, , http://www.niaes.affrc.go.jp/sinfo/sympo/h22/1109/paper_06.pdf (2010).
  19. Fourrier, J., et al. Larval exposure to the juvenile hormone analog pyriproxyfen disrupts acceptance of and social behavior performance in adult honey bees. PLoS One. 10, e0132985(2015).
  20. Hanley, A. V., Huang, Z. Y., Pett, W. L. Effects of dietary transgenic Bt corn pollen on larvae of Apis mellifera and Galleria mellonella. J. Apicult.Res. 42 (4), 77-81 (2003).
  21. Kaftanoglu, O., Linksvayer, T. A., Page, R. E. Rearing honey bees, apis mellifera, in vitro 1, effects of sugar concentrations on survival and development. J. Insect Sci. 11 (96), 1-10 (2011).
  22. Vandenberg, J. D., Shimanuki, H. Technique for rearing worker honey bees in the laboratory. J. Apicult. Res. 26 (2), 90-97 (1987).
  23. Peng, Y. S. C., Mussen, E., Fong, A., Montague, M. A., Tyler, T. Effects of chlortetracycline on honey bee worker larvae reared in vitro. J. Invertebr.Pathol. 60 (2), 127-133 (1992).
  24. Bitondi, M. M., Mora, I. M., Simoes, Z. L., Figueiredo, V. L. The Apis mellifera pupal melanization program is affected by treatment with a juvenile hormone analogue. J. Insect Physiol. 44 (5-6), 499-507 (1998).
  25. Zufelato, M. S., Bitondi, M. M., Simoes, Z. L., Hartfelder, K. The juvenile hormone analog pyriproxyfen affects ecdysteroid-dependent cuticle melanization and shifts the pupal ecdysteroid peak in the honey bee (Apis mellifera). Arthropod Struct. Dev. 29 (2), 111-119 (2000).
  26. Santos, A. E., Bitondi, M. M., Simoes, Z. L. Hormone-dependent protein patterns in integument and cuticular pigmentation in Apis mellifera during pharate adult development. J. Insect Physiol. 47 (11), 1275-1282 (2001).
  27. Brouwers, E. V. M. Glucose/Fructose ratio in the food of honeybee larvae during caste differentiation. J. Apicult.Res. 23 (2), 94-101 (1984).
  28. Howe, S. R., Dimick, P. S., Benton, A. W. Composition of freshly harvested and commercial royal jelly. J. Apicult. Res. 24 (1), 52-61 (1985).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya şekillerini yeniden kullanmak için izin iste

İzin iste

Etiketler

Pestisit MaruziyetiPyriproxyfen TedavisiKoloni Besleme Y ntemiLarva Evresi AnaliziPupa leme Tekni ik Oran l mKulu ka H cresi Tedavisievresel Kimyasal TestleriBal Ar s Kolonisi De erlendirmesi

İlgili makaleler