Locust Antenlerinde Odorant Reseptör Genlerinin RNA ile Lokalizasyonu Yerinde Hibridizasyon

En önemli kemoterapi organları olan böcek antikaları, Olfaktör Reseptör Nöronları (ORN'ler) tarafından innerve edilen, sensilla adı verilen, birçok saç benzeri yapılarla kaplıdır. Böcek ORN'lerin zarında, yedi transmembran alanı içeren bir protein türü olan Odorant Reseptörleri (OR'ler), bir odorant-kapılı iyon kanalı ^{1 , 2 , 3} olarak işlev gören bir heteromer oluşturmak için bir kollektör (ORCo) ile ifade edilir. Farklı OR'ler, kimyasal bileşikler ^{4 , 5 , 6'nın} farklı kombinasyonlarına tepki verir.

Locusts ( Locusta migratoria ) esas olarak önemli davranışları tetiklemek için koku alma ipuçlarını kullanır ⁷ . Locust OR'leri moleküler koku mekanizmalarını anlamak için önemli faktörlerdir. Belirli bir çekirge OR genini a. Nöronuna lokalize etmek.RNA tarafından morfolojik olarak spesifik sensillum tipi In Situ Hibridizasyon (RNA ISH), OR'lerin fonksiyonunu keşfetmenin ilk adımıdır.

RNA ISH, fizyolojik süreçler ve hastalık patogenezi ile ilgili bilgiler veren doku, hücreler ya da bütün yerinde belirli bir RNA sekansını ölçmek ve lokalize etmek için etiketli bir tamamlayıcı RNA probu kullanır. Digoxigenin etiketli (DIG etiketli) ve biyotin etiketli RNA probları, RNA hibridizasyonunda yaygın olarak kullanılmaktadır. Digoxigenin-11-UTP veya biotin-16-UTP ile RNA etiketleme, SP6 ve T7 RNA polimerazları ile in vitro transkripsiyonla hazırlanabilir. DIG ve biyotin etiketli RNA problarının şu avantajları vardır: non-radyoaktif; kasa; kararlı; Çok duyarlı; Son derece özeldir; PCR ve in vitro transkripsiyon kullanılarak üretilmesi kolaydır. DIG ve biyotin etiketli RNA probları kromojenik ve floresan olarak tespit edilebilir. DIG etiketli RNA probları, anti-digoksijin Alkali ile tespit edilebilir(NBT / BCIP) ile hassas ışıldayan kemilüminesan substratlar nitroblue tetrazolyum klorid / 5-bromo-4-kloro-3-indolil-fosfat toluidin tuzu veya optik mikroskop kullanılarak görüntülenebilen fosfataz (AP) konjüge antikorları veya 2 Konfokal bir mikroskop kullanılarak 4-kloro-2-metilbenzendiazonyum hemi-çinko klorid tuzu (Hızlı Kırmızı) ile birleştirilen bir 2-hidroksi-3-naftoik asit-2'-fenilanilid fosfat (HNPP). Biyotin etiketli RNA probları, anti-biyotin streptavidin at turp peroksidaz (HRP) konjuge antikorlarla, konfokal bir mikroskop kullanılarak fluorescein-tiramidlerle görselleştirilebilen antikorlarla tespit edilebilir. Böylece, DIG ve biotin etiketli RNA probları kullanılarak bir dilimdeki iki hedef geni saptamak için çift renkli floresan yerinde hibridizasyon gerçekleştirilebilir.

DIG ve / veya biyotin etiketli problarla RNA ISH, OR , iyonotropik reseptör, odorant bağlayıcı protein gibi olfaktöre bağlı genlerin lokalize edilmesi için başarıyla kullanılmıştırDrosophila melanogaster , Anopheles gambiae , L. migratoria ve çöl keçiboynuzu Schistocera gregaria ^{8 , 9 , 10 , 11 , 12 , 13 , 14 , 15 , 16'nın} böcek antenlerindeki duyu nöron membranı proteini. Bununla birlikte, böcek OR'ları için RNA ISH gerçekleştirirken iki önemli zorluk vardır: (1) OR genleri ( ORco hariç) düşük seviyelerde ve yalnızca birkaç hücrede ifade edilir, sinyal algılamayı çok zorlaştırır ve (2) böcek dokusunu korumak için Histoloji, morfolojinin korunması ve arka plan gürültüsünün düşük olması gibi zorlu olabilir. Bu yazıda böcekte OR genlerinin lokalizasyonu için RNA ISH'sini açıklayan ayrıntılı ve etkili bir protokolHem kromojenik hem de Tyramide Sinyali Yükseltme (TSA) algılama da dahil olmak üzere, antenler sunulmuştur.

NOT: RNA bozunumunu sınırlamak için ıslak-otoklavlanmış damıtılmış su (60 dakika boyunca 121 ° C'de) ve ayrıca ıslak-otoklav malzemeleri kullanarak çözeltiler hazırlayın.

1. RNA ISH Antisens ve Sense Problarının Hazırlanması

1. Hedef gen amplifikasyonu ve saflaştırılması
   1. İlk olarak, fragmanların her iki ucuna adeneler ekleyen bir Taq DNA Polimerazı ile Lmigor1'in tam uzunlukta cDNA'sını ihtiva eden plazmitten L. migratoria OR1'in ( Lmigor1 , GenBank: JQ766965) 387 bp'lik iki katlı bir fragmanını üretin .
      1. 50 μL 2x reaksiyon karışımı, 4 μL duyu ve antisense primerler ( Tablo 1 ), 1 μL plasmid şablonu ve 41 μL RNaz içermeyen H ₂ O içeren 100 μL'lik son reaksiyon hacmi kullanın. Aşağıdaki PCR Protokol: 94 ° C'de 5 dakika, ardından 30 saniye için 94 ° C, 30 saniye boyunca 55 ° C ve 1 dakika boyunca 72 ° C'de 30 çevrim, Bunu 10 dakika boyunca 72 ° C takip etti.
      2. (: JQ766966 GenBank) ve LmigORco bölgesinin 1.251 bp'lik çift sarmallı fragmanı (GenBank: JN989549) LmigOR2 bölgesinin 1.303 bp'lik çift sarmallı fragmanını üretmek için aşağıdaki adımları tekrarlayın. Bu deneylerde kullanılan primerler Tablo 1'de sunulmuştur.
      3. 1x Tris-asetat-EDTA tamponu içerisinde PCR ürünlerini% 1.2 agaroz jel üzerinde çalıştırın ve etidyum bromid boyama kullanarak görselleştirin.
   2. Bu PCR ürünlerini bir jel özütleme kiti kullanarak ayıklayın.
      1. Elektroforezden sonra, jelden DNA bantlarını çıkarın ve jel dilimlerini 1.5 mL tüp içine yerleştirin. Ardından 0.1 g jel dilim başına 100 μL bağlama tamponu (Tampon PN) ekleyin. Hareketleyin ve jel dilim tamamen çözünene kadar 50 ° C'de inkübe edin.
      2. Toplama tüpüne bir CA2 adsorpsiyon sütunu yerleştirin ve 500 uL denge tamponu (Tampon BL) ekleyin. Bu, silika membranın soğurma kabiliyetini ve stabilitesini geliştirir. Centri1 dakika süreyle 12.400 xg hızla.
      3. Çözünmüş jel karışımını adsorpsiyon kolonu grubuna aktarın ve 2 dakika boyunca oda sıcaklığında inkübe edin. Ardından, 1 dakika için 12.400 xg'de tüpleri santrifüjleyin. Akışı atın ve adsorpsiyon sütununu toplama tüpüne tekrar takın.
      4. 600 μL yıkama solüsyonu (etanol ilave edildi, Tampon PW) iki kez ilave edin. 1 dakika için 12.400 xg'de santrifüjleyin. Akışı boşaltın ve adsorpsiyon sütununu toplama tüpüne tekrar takın.
      5. Toplama tüpünü boşaltın ve kalıntı etanolün buharlaşmasına izin vermek için 12.400 xg'deki sütun tertibatını 2 dakika yeniden santrifüjleyin.
      6. Adsorpsiyon sütununu temiz bir 1.5 mL santrifüj tüpüne dikkatlice aktarın. Pelleti 5-10 dakika havayla kurutun ve DNA'yı uygun bir hacimde ( örn. 30 mcL) nükleaz içermeyen suda yeniden çözün.
      7. Oda sıcaklığında 2 dakika inkübe edin. 2 dakika için 12.400 xg'de santrifüjleyin. Adsorpsiyon sütununu atın ve DNA'yı 4 ° C veya -20 ° C'de saklayın.
2. Rekombinant plazmidleri yapılandırın
   1. LmigOR1'in 387 bp'lik fragmanını, LmigOR2'nin 1.303 bp'si fragmanını ve Lmigorco'nun 1,251 bp'lik fragmanını, T4 DNA ligazı kullanarak eklenen DNA'ya komşu olan T7 (upstream) ve SP6 (downstream) RNA polimerazları için promotörler içeren bir T vektörüne bireysel olarak bağlayın . Takip eden 10 μL reaksiyon hazırlayın: 2x ligasyon tamponu 5 uL, T vektörü 1 μL, eklenen genin DNA'sının 3 uL'si (~ 100 ng) ve T4 DNA ligazının 1 μL'si ve 4 ° C'de O / N inkübe edin.
   2. LmigOR1 387 bp'lik bir fragman, LmigOR2 bölgesinin 1.303 bp'lik fragmanı ve bir 1.5 mL steril tüplerde kompetan Escherichia coli DH5a hücrelerine 50 uL ayrı ayrı LmigORco bölgesinin 1.251 bp'lik bir fragman ihtiva eden her bir rekombinant plazmidin 5 uL ekleyin.
      1. Nazikçe karıştırın ve tüpleri 30 dakika boyunca buz içine koyun ve daha sonra 42 saat boyunca 90 s inkübe edin° C. Onları 3 dk buza geri aktarın.
      2. Her tübe ampisilin olmadan 450 uL Luria-Bertani (LB) sıvı ortam ekleyin ve 37 ° C'de 1 saat boyunca 150 rpm'de bir çalkalayıcıda inkübe edin, E. coli DH5α'yı geri getirin.
      3. Her bir transformantın 100 uL'lik bir bölümünü alın ve bunları 50 ug / mL ampisilin, 24 ug / mL izopropil β-D-l-tiogalaktopiranosid (IPTG) ve 40 ug / mL 5-bromo-4 içeren LB katı substrat plakalarını inoküle etmek için kullanın -kloro-3-indolil-β-D-galaktopiranozit (X-gal).
      4. Bu plakaları, 18 saat boyunca 37 ° C'de sabit inkübatörde inkübe edin. Mavi beyaz tarama yöntemini kullanarak hedef rekombinant plazmidleri tarayın. Sanger sekanslama kullanarak hedef rekombinant plasmidlerin sıralamasını yapın ve üç OR geninin ekleme yönlerini belirleyin.
3. Rekombinant plazmidleri lineer hale getirmek için kısıtlama endonükleazları seçin
   1. Kısıtlama endonükleazlarını kullanın tŞapka sadece vektörün çoklu klonlama bölgesinde sindirmekle kalmaz aynı zamanda ekleme DNA'sını kesmeyin. Bu deneyde, 3 genin tamamı, T vektörüne vektörünkine karşılık gelen yönde yerleştirilir.
   2. Antisens probları üretmek için LmigOR1'in 387 bp'si , LmigOR2'nin 1,303 bp'si ve Lmigorco'nun 1,251 bp'si fragmanını içeren rekombinant plazmidleri lineer hale getirmek için Nco I sınırlandırma endonükleazı kullanın. Duyu sondalarını üretmek için Sp e I kısıtlama endonükleazı kullanın.
      NOT: Ekleme yönü vektöre karşılık geliyorsa, T7 sonundan itibaren eşsiz bir kısıtlama bölgesi rekombinant plazmiti doğrusallaştırmak için seçilir ve SP6 RNA polimeraz antisens probunu hazırlamak için kullanılır. SP6'nın sonundan itibaren eşsiz bir kısıtlama bölgesi rekombinant plazmiti lineer hale getirmek üzere seçilir ve sense probu hazırlamak için T7 RNA polimeraz kullanılır. Aksi takdirde, ekleme yönü tO zaman, SP6'nın sonundan itibaren eşsiz bir kısıtlama bölgesi rekombinant plazmiti lineer hale getirmek üzere seçilir ve antisens probunu hazırlamak için T7 RNA polimeraz kullanılır. T7'nin sonundaki benzersiz kısıtlama alanı, rekombinant plazmiti lineer hale getirmek üzere seçilir ve SP6 RNA polimeraz, duyu sondası hazırlamak için kullanılır.
4. Doğrusallaştırılmış rekombinant plasmidlerin saflaştırılması
   1. Özet 20 ug LmigOR1 387 bp'lik bir fragman, LmigOR2 bölgesinin 1.303 bp'lik fragmanı ve 10x tampon 10 uL ihtiva eden bir 100 uL reaksiyon Nco I kısıtlayıcı endonükleaz ile LmigORco bölgesinin 1.251 bp'lik bir fragman, 40 uL içeren üç rekombinant plazmidlerin her biri 37 ° C'de 3 saatlik bir inkübasyon takip 0.5 ug / uL plazmid, Nco I 3 uL ve RNaz içermeyen _H2O 47 uL.
   2. Benzer şekilde, bu üç rekombinant plazmitten her birinin 20 ug'sini sindirinSpe I restriction endonuclease'i söyleyin.
   3. Bu sindirilmiş plasmidleri, 1.1.2'de açıklandığı gibi bir jel özütleme kiti kullanarak saflaştırın. Bu özütlenmiş doğrusallaştırılmış rekombinant plasmidlerin konsantrasyonlarını spektrofotometri ile belirleyin ve 0.5 μg / μL'ye ayarlayın.
5. Antisens ve algılama probları hazırlayın
   1. Antisens ve duyu probları üretmek için T7 / SP6 RNA transkripsiyon sistemini kullanın. SP6 RNA polimeraz, in vitro olarak şablon olarak doğrusallaştırılmış rekombinant plazmidleri kullanarak bu üç OR geni için DIG ve biyotin etiketli antisens probları için çift sarmallı RNA'nın transkribasyonu için kullanılır. T7 RNA polimeraz, duyu sondaları üretmek için kullanılır. Reaksiyonu, 2 mcL 10x NTP karışımı, 2 μL 10X transkripsiyon tamponu, 1 uL RNaz inhibitörü, 2 μL T7 veya SP6 RNA polimeraz, 4 μL 0.5 μg / μL doğrusal hale getirilmiş plazmid ve 20 μL son hacim içinde gerçekleştirin. ardından 9 mL RNaz içermeyen _H2O37 ° C'de 3 saat süreyle inkübe edildi.
   2. DIG ve biotin etiketli antisens ve sensleri 37 ° C'de 1 μL DNaz ile 30 dakika inkübe edin. 2.5 μL 5 M LiCl ve 75 μL mutlak etanol ekleyin, sonra reaksiyonları -70 ° C'de 30 dakika inkübe edin.
   3. 15.000 xg'de 30 dakika boyunca 4 ° C'de santrifüjleyin. Süpernatanı dikkatle boşaltın. Çökeltiyi yıkamak için 150 μL% 70 etanol ekleyin. % 70 etanol (1 L), steril damıtılmış suya (263.2 mL)% 95 etanol (736.8 mL) ekleyerek hazırlayın.
   4. Yeniden 4 ° C'de 30 dakika süreyle 15.000 xg'de santrifüjleyin ve pelleti oda sıcaklığında 5-10 dakika boyunca hava ile kurutun. RNA antisens çözülür ve probları algılamak için RNaz içermeyen _H2O 25 uL ekleyin.
   5. Eklenen genin uzunluğu 1 kb'den fazla ise, daha sonra RNA antisensını parçalayın ve bir bikarbonat-karbonat tampon solüsyonlarında inkübe ederek ortalama 300 bp'lik bir uzunluğa kadar sondaları tarayın. Reaksiyonu, 50 μL son hacimde gerçekleştirin, cRNA, prob ontaining 25 uL ve bikarbonat, karbonat tamponu çözeltisi 25 uL (80 mM NaHCOj _3, 120 mM _{Na2 CO3,} pH 10.2) 60 ° C'de ilave edildi. Gerekli olan hidroliz süresi önceden yayınlanmış bir formül ^{17 ile verilmiştir} .
   6. Reaksiyonu durdurmak için 5 μL% 10 asetik asit ilave edin. Bu deneyde LmigOR2 ve Lmigorco antisens ve sense sondalarını sırası ile 24 ve 23 dakika boyunca parçalayın .
      T = (L _o -L _f ) / kXL _o XL _f
      L _o = başlangıç ​​fragman uzunlukları kb olarak
      L _f = son fragman uzunlukları kb cinsindendir
      K = hidroliz için hız sabiti, yaklaşık 0.11 kb ^-1 dak ^-1
      T = dakikada hidroliz süresi
   7. Son olarak, 250 μL hibridizasyon tamponu ekleyin ve -80 ° C'de saklayın.

2. Kriyostat Bölümlerinin Hazırlanması

1. Önceden soğutun-24 ° C'ye kadar mikrotom.
2. Aktif olan ve bozulmamış anteni bulunan yeni çıkma yetişkin çekirge seçin. Steril usturalar kullanarak antenleri 2-3 mm'lik parçalara kesin.
3. OCT bileşimini dondurucu mikrotom tutucuya koyun ve bileşime yatay olarak bir veya iki örnek koyun. Ardından, tutucu donma mikrotomuna -24 ° C'de aktararak bileşik donana kadar dengeye getirin. Tutacağı çıkarın ve örnekleri küçük bir bileşik ile örtün. Tutacağı, -24 ° C'de tekrar en az 10 dakika boyunca donma mikrotomuna aktarın ( Şekil 1 ).
   NOT: Bileşikte kabarcıklarıkullanmaktan kaçının.
4. Tutucuyı örneklerle birlikte dondurma mikrotomuna sabitleyin, ardından donmuş örnekleri -24 ° C'de 12 um kalınlığında kesitlere bölün.
5. Dilimleri teker teker slaytlara (25 x 75 mm, nükleaz içermeyen) çözün ve 10 dakika hava ile kurutun.

3. Sabitleme Bölümleri

1. Kriyostat hazırlandıktan sonraSlaytları plastik bir kutuya (~ 100 x 40 x 80 mm) koyun ve 4 ° C'de 30 dakika süreyle% 4 paraformaldehit solüsyonu (PFA) içinde slaytlar kuluçkaya yatarak dokuları düzeltin.
2. Slaytları 1X Fosfat Tamponlu Tuz (PBS) 1 dakika yıkayın.
3. Alkalin proteinleri ortadan kaldırmak için, slaytları 0.2 M HC1'ye 10 dakika boyunca aktarın.
4. Nükleik asidin yüzey proteinini ortadan kaldırmak için, slaytları 1 dakika boyunca% 1 Triton X-100 ile 1XPBS'ye aktarın.
5. Slaytları 1x PBS'de 30 saniye süreyle iki kez yıkayın.
6. Son olarak, slaytları formamid solüsyonunda 10 dakika süreyle 4 ° C'de durulayın.

4. Hibridizasyon

1. Antisens ve duyu sondalarını hazırlayın
   1. 1.5 mL nükleazsız tüplerde RNA antisensini veya duyu sondalarını seyreltmek için hibridizasyon tamponu kullanın. Bu deneyde, tüm antisens ve algılama probları ( Lmigor1, LmigOR2 ve LmigOrco ) için 1 μL prob ekleyerek 99 μL hibridizasyon tamponu. Genel olarak, 1: 100 seyreltme antisens problarının kullanılması bu protokolü kullanarak önemli pozitif sinyaller ve düşük arka planlar üretir.
   2. Kromojenik tespit için, DIG etiketli probları ayrı ayrı sulandırın.
   3. TSA tespiti için, biyotin etiketli LmigOR1 ile biotin etiketli LmigOrco problar veya DIG-labeled LmigOR2 ile LmigOR1 DIG etiketli hibridizasyon tamponu içinde bir araya probları seyreltin.
   4. Seyreltileri 65 ° C'de 10 dakika boyunca ısıtın ve buz üzerinde en az 5 dakika bekletin.
2. melezleme
   1. Slaytları boşaltın ve doku bölümlerine seyreltilmiş antisens ve duyu probları (Adım 4.1) 100 uL ekleyin. Daha sonra, doku bölümleri üzerine lamelleri (24 mm x 50 mm, nükleaz içermez) yerleştirin.
   2. Kaplamalı yatakları yatay olarak nemli bir kutuya (~ 300 x 180 x 50 mm ³ ; Şekil 2 ) yerleştirin ve55 ° C'de 22 saat. Ortamı nemli tutmak için kutusunun altına formamid solüsyonu veya 1X PBS ekleyin, ancak slaytları sıvıya daldırmayın.
3. Yıkama ve bloke etme.
   1. Hibridizasyon sonrasında, lamelleri dikkatlice çıkarın. Slaytları 60 ° C'de 0.1x Salin Sodyum Sitrat (SSC) içinde 30 dakika boyunca iki kez yıkayın.
      NOT: Yıkama, slaytları plastik bir kapa yerleştirilen ve hafifçe bir rocker (~ 50 dev / dak; Şekil 2 ) üzerinde çalkalanan bir slayt tutucusuna yerleştirme anlamına gelir.
   2. Slaytları 30 saniye boyunca 1x Tris Tamponlu Tuz (TBS) içinde durulayın.
   3. Her slaytta% 0.03 Triton X-100 takviyeli TBS'de 1 mL engelleyici reaktif ekleyin ve 30 dakika inkübe edin. Daha sonra engelleme çözümünü atın.
4. İmmünohistokimya.
   1. Kromojenik saptama için 750 ünite (U) / mL anti-digoxigenin AP-konjuge antikoru seyreltmek için TBS'de bloke etme reaktifi kullanın1.5 U / mL AP çözeltisinden dy. Kaplanmış (24 mm x 50 mm) slayt başına 100 μL AP çözeltisi ekleyin.
   2. TSA saptaması için 750 u / mL anti-digoksigenin AP-konjüge antikoru ve anti-biotin streptavidin HRP-konjuge antikoru AP / HRP çözeltisine seyreltmek için TBS'de bloke etme reaktifini kullanın. Kaplanmış (24 mm x 50 mm) slayt başına 100 μL AP / HRP çözeltisi ekleyin.
   3. Slaytları nemli bir kutu içinde inkübe edin ( Şekil 2 ), 60 dakika boyunca 37 ° C'de. Kutuyu nemli tutmak için formamid solüsyonu veya 1X PBS kullanın, ancak hantal değil.

5. Boyama

1. Lamelleri dikkatlice çıkarın. Slaytları,% 0.05 Tween-20 ile takviye edilmiş 1x TBS'de 5 dakika boyunca üç kez yıkayın. Slaytları DAP-tamponunda durulayın (kromojenik saptama: pH 9.5; TSA saptama: pH 8.0) 5 dakika boyunca yıkayın.
2. Boyama (kromojenik tespit)
   1. 100 uL NBT (375 μg / mL) / BCIP (188 μg / mL) substrat çözeltisi (DAP içinde seyreltilmiş;PH 9.5) her slayta. Slaytlara lamelleri (24 x 50 mm) dikkatlice yerleştirin.
   2. Slaytları, nemli bir kutuya substrat solüsyonuyla 10 dakika boyunca inkübe edin - O / N, 37 ° C'de.
      NOT: Mikroskop altında zaman zaman slaytlara bakarak gelişimini kontrol edin.
   3. Gelişme hazır olduğunda, slaytları suya aktararak reaksiyonu durdurun.
3. Boyama (TSA algılama)
   1. Şırınga filtresinden (0.22 μm; Şekil 2 ) HNPP (100 μg / mL) / Hızlı Kırmızı (250 μg / mL) substratını taşımak için bir şırınga kullanın.
   2. Bir lamel ile kaplı başına 100 uL HNPP / Hızlı Kırmızı substrat ekleyin (24 x 50 mm). Slaytları, oda sıcaklığında HNPP / Hızlı Kırmızı substrat ile 30 dakika inkübe edin.
   3. Lamelleri dikkatlice çıkarın ve slaytlar, 0.05% Tween-20 ile takviye edilmiş 1X TBS'de 5 dakika süreyle üç kez yıkayın.
   4. 100 uL TSA substratı / kaplanmış (24 x 50 mm ² ) kaydırın. Slaytları TSA substratı ile oda sıcaklığında 10 dakika inkübe edin.
   5. Lamelleri dikkatlice çıkarın ve slaytlar, 0.05% Tween-20 ile takviye edilmiş 1x TBS'de 5 dakika boyunca üç kez yıkayın.
4. Slaytları PBS / gliserol (1: 3) içine gömün.
   NOT: Bu prosedürleri tamamladıktan sonra, floresan sinyalinin çabucak söndürüleceği için, slaytlar en kısa sürede gözlemlenmelidir.

6. Gözlem

1. Kromojenik tespit
   1. Optik mikroskop kullanarak doku bölümlerine dikkat edin. Kromojenik tespitin sonuçlarını gözlemlemek için 10X, 20X ve 40X objektif lensleri seçin.
   2. Sonuçları analiz etmek ve görüntüleri yakalamak için DP-BSW yazılımını kullanın.
2. TSA algılama
   1. Konfokal mikroskop kullanarak doku bölümlerine dikkat edin. DIG etiketli genler 543 nm ışık altında kırmızı renkte gözlemlenmeli ve biyotin etiketli genler488 nm ışık altında gözlemlendi, yeşil bir renk ortaya çıktı. Ortaya çıktıklarında sarı renkte.
   2. Sırasıyla TSA bulgularının gözlemlenmesi için 20X ve 40X objektif lensleri seçin.
   3. Sonuçları analiz etmek ve görüntüleri yakalamak için FV1000 yazılımını kullanın.

Kromojenik tespit ile, her yetişkin antenal kesitteki antennal hücrelerin küçük bir alt grubu, DIG etiketli LmigOR1 ve LmigOR2 antisens probları ile gösterildi ( Şekil 3 ). Lmigor1 ve LmigOR2'yi lokalize etmek için ardışık kesitlerdeki RNA ISH, iki geni eksprese eden antennel hücrelerin , Lmigorco'yu eksprese eden ORN kümelerinde bulunduğunu gösterdi; bu, varsayılan LmigOR1 ve LmigOR2'nin aslında ORN'lerde eksprese edildiğini gösteriyor ( Şekil 4a- 4d ). Ara sıra, etiketli dendritik benzeri yapılar görselleştirildi ( Şekil 4e- 4f ). Lmigor1 ve LmigOR2 , hem bazikonik sensilla'da nöronal olarak lokalizedir ( Şekil 5a-5b ), fakat bireysel sensilla'da birlikte ifade edilmediğinden, bunlar farklı basico'da mevcut olduklarını göstermektedir NIC sensillium alt tip (Şekil 5c-5 d).

TSA saptamasında, çift renkli floresan yerinde hibridizasyon, Lmigor1 eksprese eden hücrelerin (kırmızı renk), Lmigorco'yu (yeşil renk) ifade eden ORN kümelerine yerleştirildiğini ve bu da varsayılan Lmigor1'in ORN'lerde sentezlendiğini gösterdiğini gösterdi ( Şekil 6a ). Şekil 6a'daki kutulu alanların yakından görünüşü Şekil 6b'de gösterilmektedir. LmigOR1 - ifade eden nöronlar (yeşil renk, Şekil 7a ) ve LmigOR2 eksprese eden nöron (kırmızı renk, Şekil 7b ), farklı bazikonik sensillium alt tiplerine yerleştiler ( Şekil 7c ).

4 / 55924fig1.jpg "/>
Şekil 1: İn Situ Hibridizasyona Böcek Anten Bölümlerinin Hazırlanması. ( A ) Dondurucu mikrotom; ( Bc ) Örnekler dondurucu OCT Bileşiği içine gömülmüştür. Bu rakamın daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen tıklayınız.

Şekil 2: In Situ Hibridizasyon RNA Deneysel Öğeler . ( A ) Sürgü tutacağı ve plastik kap. ( B ) Nemli kutu. ( C ) Salıncak. ( D ) Membran filtresi. ( E ) Konfokal mikroskop. .jpg "target =" _ blank "> Bu rakamın daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen tıklayınız.

Şekil 3: Koku Giderici Organlarda Lmigor1 ve Lmigor2'nin Hücresel Lokalizasyonu. ( A ) Bir keçiboynuzu antennal segmentte Lmigor1 ekspresyonu yapan hücrelere genel bakış. ( B ) Bir keçiboynuzu antennal segmentteki LmigOR2 eksprese eden hücrelere genel bakış. Ok başları LmigOR1 ( a ) ve LmigOR2 ( b ) eksprese eden hücreleri göstermektedir. Ölçek çubukları = 100 μm (a ve b). Şekiller, Xu ve diğ. 12 Bu rakamın daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen tıklayınız.

">
Şekil 4: Antikor Hücrelerinin Lymorları Kromojenik Algılama İle Düzelten Nöronal Kimliği. ( Ab ) Locust antenin ardışık kesitleri üzerindeki LmigOR1 ( a ) ve Lmigorco ( b ) antisens probunun etiketleme modeli. ( Cd ) Locust antenin ardışık kesitleri üzerindeki Lmigorco ( c ) ve LmigOR2 ( d ) antisens probunun etiketleme modeli. ( Ef ) Ara sıra etiketli dendritik yapıların (kırmızı oklarla gösterilen) illüstrasyonu. Ölçek çubukları = 50 μm (reklam); 20 μm (e ve f). Şekiller, Xu ve diğ. 12 Bu rakamın daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen tıklayınız. Nt "fo: keep-together.within-sayfa =" 1 ">
Şekil 5: Lizor1 ve Lmigor2 , Basiconik Sensilla'da bulunan ORN'lerde Vurgulanır. (Ab) Basiconic Sensillum LmigOR1 ifade ORNs yerleştirilmiş (a) ve LmigOR2 (b). ( Cd ) Anteni ORN'lerin farklı alt kümesindeki LmigOR1 ve LmigOR2'nin ifadesi ardışık kesitler üzerinde doğrulanmıştır (cd). Ok başları , LmigOR1 (a, c) ve LmigOR2 (b, d) ifade eden antennal hücreleri belirtir. Ba: bazikonik sensillum. Ölçek çubukları = 20 μm (a ve b); 50 um (c ve d). Şekiller, Xu ve diğ. 12 Bu rakamın daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen tıklayınız.

Şekil 6: Antiginal Hücrenin LMIGOR1'u TSA Algılama Yöntemiyle Ekspresleyen Nöronal Kimlik. ( A ) Lmigor1 (Kırmızı) ve Lmigorco (Yeşil) ekspresyonunu göstermek için uzunlamasına antenli kesitte iki renkli in situ hibridizasyon gerçekleştirildi. LmigOR1 LmigORco eksprese eden hücre kümeleri hücreleri eksprese eden lokalizasyonu nöral kimliklerini teyit etmiştir. ( B ) Kutulu alanların yakın görünümünü a. Bazen etiketli dendritik yapılar okla gösterilmiştir. Çemberli alanlar, Lmigorco'yu ifade eden ve aynı sensillumu paylaşan ORNs kümelenmesini göstermektedir. Ölçek çubukları = 50 μm (a); 20 um (b). Şekiller, Xu ve diğ. 12 Lütfen cBu şeklin daha büyük bir versiyonunu görmek için yalamak.

Şekil 7: Lmigor1 ve LmigOR2 , TSA Algılama Yöntemiyle Farklı Basikonik Sensilla ORN'lerine Yerleştirilmiştir. Floresan sinyalleri, Lmigor-işaretli nöronları yeşil flüoresan ( a ) ile belirten ve kırmızı mülk hücrelerinde LmigOR2 pozitif hücreleri ( b ) farklı bazikonik sensilla alt tiplerinde eksprese eden tespit sistemleri kullanılarak görselleştirildi ( c ). Ok başları, Lmigor1 ve LmigOR2'yi ifade eden antennal hücreleri belirtir . Ölçek çubukları = 20 μm. Şekiller, Xu ve diğ. 12 Görüntülemek için lütfen tıklayınız.Bu rakamın daha büyük versiyonu.

isim	Diziler
Lmig OR1-prob-s	5'-AAGGGGTGGGAGACGGCCTG-3'
Lmig OR1-prob-as	5'-CAGCTCCTCCCCAACGACAGC-3'
Lmig OR2-probu	5'-ATGGGTGAGCGTGGAGAGGC-3'
Lmig OR2-prob-as	5'-GGTCATCGCTGTGGACGTGG-3'
Lmig Orco-probe-s	5'-CTCGTCTGACAGCGTAACTCAC-3'
Lmig Orco-prob-as	5'-AAGACGCAGAAGAGGAAGACCT-3'

Tablo 1: PCR Primerlerinin Dizileri.

Yazarların ifşa etmesi gereken hiçbir şey ya da başka herhangi bir çıkar çatışması yok.