Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliğiniz gereklidir. Giriş yapın veya ücretsiz denemenizi bugün başlatın.

Yöntem makalesi

Akvaryumda Balıkların Üreme Ekolojisi Araştırmaları İçin Temel Yöntemler

11.5K görüntülenme

⸱

DOI:

10.3791/55964

⸱

20 Temmuz 2017

 , 
1Laboratory of Fish Behavioral Ecology, Tateyama Station, Field Science Center, Tokyo University of Marine Science and Technology

Bu makalede

Özet

Akvaryumda tutulan balıkların üreme ekolojisinin incelenmesini sağlayacak bir dizi temel yöntem anlatılmıştır. Bunlar, SCUBA kullanarak balık toplamak, canlı balık taşımak ve akvaryumda tutulan vahşi balıkların üreme davranışlarını gözlemlemek için yararlı protokollerdir.

Özet

Tutucu yetiştirme gözlemleri, sürekli saha araştırmaları imkansız olduğunda, balık davranışının ve ekolojinin özelliklerini ortaya çıkarmak için değerlidir. Burada, bir model olarak akvaryumda tutulan, vahşi yakalanmış gobiid bir balıkların üreme davranışlarının gözlemlenmesini sağlayacak bir dizi temel teknik açıklanmıştır. Yöntem, üç aşamaya odaklanır: bir substrat spawner'ın üreme ekolojisinin toplanması, taşınması ve gözlemlenmesi. Canlı balık toplama ve nakliyeyle ilgili temel unsurlar, (1) balıkların yaralanmalarının önlenmesi ve (2) akvaryumun dikkatli bir şekilde aklimalandırılmasıdır. Herhangi bir fiziki hasarın balıkların hayatta kalmasını ve daha sonraki davranışlarını olumsuz etkilemesi muhtemel olduğu için, canlı balık toplamak için çizik veya su basıncının ani bir şekilde değişmesi gibi yaralanmalarla zararı önlemek zorunludur. Akvaryuma dikkatli bir şekilde uyum, insidans ölümünü azaltır ve ulaşım şokunu hafifletir. Esir avcılığı sırasında gözlemlere şunlar dahildir: (1)Çift balık ve (2) balık veya yumurta olumsuz etkileri olmadan yumurta yumurta izleme, böylece çalışma türlerinin üreme ekolojisi ayrıntılı bir araştırma sağlar. Görünür bir implant elastomer (VIE) etiketinin subkutan enjeksiyonu, bireysel balıkların daha sonra tanımlanması için kesin bir yöntemdir ve hayatta kalma ve davranışları üzerinde asgari derecede etkili olan geniş bir balık yelpazesinde kullanılabilir. Çalışma türü, yapışkan yumurta bırakan bir substrat ise, çıkarılabilir bir su geçirmez tabaka eklenerek polivinil klorür (PVC) borudan yapılmış bir suni yuva yumurta sayımını ve izlenmesini kolaylaştıracak ve araştırmacının yuva tutma üzerindeki etkisini azaltacaktır Ve yumurta koruyan balık davranışları. Bu temel yöntem, araştırma makalelerinde nadiren bahsedilen teknikleri gerektirse de, vahşi balığın esir alınmasını gerektiren deneyler yapmak için temel önemdedirler.

Giriş

Muhteşem uyarlamalı evrim, balıkların morfolojisi, ekolojisi ve davranışında belirgindir 1 . Özellikle üreme ile ilgili ekolojik özellikler özellikle çeşitlidir ve bunların çoğu bireysel uygunluk 2 tarafından doğrudan etkilenebilir. Farklı balık türlerinde benzersiz özelliklerin gelişmesine yol açan seçici baskılar hakkında fikir edinmek için, canlı balık kullanarak üreme ve sosyal davranışların doğrudan gözlemlenmesi teorik hipotezleri doğrulamak için genellikle yararlıdır.

Bununla birlikte, balıkların kesintisiz saha gözlemleri, muhafaza edilmesi güç olan özel sualtı ekipman ve tesislerini gerektirebilir. Bu vakalarda, vahşi yakalanmış akvaryum yetiştirme balıklarının gözlemleri 3 , 4 , 5'e yardımcı olabilir . Buna ek olarak, aksi takdirde nadir veya farklı olan balık davranışlarının etkili gözlemleriAkvaryumdaki deneyleri manipüle ederek doğal koşullar altında gözlemlemek mümkün olabilir 6 , 7 , 8 . Yapay stres ve fiziksel hasarı en aza indirgemek suretiyle iyi koşullar altında balık yetiştirmek doğru ekolojik araştırmalar için kritik önem taşır.

Pigmit gobi Trimma marinası 23-25 ​​mm toplam uzunluğa ulaşır ve 9-26 m 9 derinlikte sessiz, korunaklı koylarda bulunan batı Pasifik Okyanusunda dağıtılır. Bu çalışmada, T. marinae , kendine yeten sualtı nefes alma aparatı (SCUBA), balık nakli ve balıkların akvaryuma doğrudan gözlem için nihai olarak aklimasyonu ile balık toplama için bir dizi temel tekniği tanımlamak için bir model olarak kullanılır Çalışma türü 'üreme davranışı ve ekolojisi.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

1. Canlı Balık Toplama ve Taşıma

NOT: Bu protokol, ≥15 m'lik bir derinliğiyle yüzeye kadar bir gaz mesanesine sahip olan balıkların nasıl toplanacağını açıklamaktadır. Yüzeye hızlı nakliye, basınç değişimiyle gaz mesanesinin genişlemesine neden olur, bu da ciddi şekilde balıklara zarar verebilir veya balıkları öldürebilir. Dikkat gereklidir, çünkü bu ilk adım sırasında balıklara verilen zararlar hayatta kalmalarını ve daha sonraki davranışlarını olumsuz bir şekilde etkilemektedir.

  1. SCUBA ile dalmadan önce, aşağıdaki materyalleri toplayın: hedeflenen türlerin su altı yakalamak için uygun bir el ağı; Balık için yeterince geniş polietilen torbalar; Lastik bantlar (ø 80 mm x 6 mm); Toplama poşetlerini yüzeyde şişirmek için bir oksijen silindiri; Bir antimikrobiyal olan Elbagin% 10 sodyum nifurstirenat içerir; Toplama torbalarının yerleştirileceği polistiren köpük kutu; pipetler; Ve gerekirse (adım 1.4'e bakın), uzunluğaMaksimum dalış derinliğine eşdeğer, ayrıca en az 2 kg'lık bir ağırlık.
  2. Dalış yaparken hedeflenen balık türlerini bir el ağı kullanarak toplayın; Hala su altındayken yakalanan balıkları bir polietilen torba içine yerleştirin ve torbanın ağzını kauçuk bant ile bağlayın. Balıkları bir akvaryuma nakletmek için ≥1 gün sürecekse, balık tutma suyunun yenilenmesi için kullanılmak üzere suyu doğal ortamdan diğer torbalar içinde de saklayın.
    NOT: Güvenlik için, sualtı görevler en az iki kişi tarafından yapılmalıdır.
  3. Toplama noktasından balık poşetleri ile en fazla 1 m / dak.'lık bir hızda yüzey: 10 m veya daha fazla derinlikli iken, her 2 m'de 1-5 dakika artarken durun; Ve 10 m'lik bir dereden 1 m'lik yüzey durdurucusuna kadar her 1-5 m için 1 m. Yakalanan balık torbadaki kaldırma gücünü koruyamazsa ( yani , yine de alta doğru yüzmeye çalışırken genişleyen bir gaz mesanesi ile yüzdükleri zaman), aynı derinlik 1 ila 5 dakika boyunca veya aynı derinlikte tutulmalıdır1 - 2 m daha derin tarayın. Balıklar yüzdürme işlemini tamamladıktan sonra yüzeye çıkmaya devam edin.
    NOT: SCUBA tankındaki havanın artarken sönmesi ihtimali varsa, bir ipi polietilen torbaya bağlayın ve ≥ 2 kg ağırlığa takın; Sualtı operatörü güvenli bir şekilde yukarı çıktıktan sonra, bunu yukarıda belirtilen hızlarla yüzeyden çekin.
  4. Plajda veya teknede, yüzeye çıktıktan sonra her polietilen torbanın suyunda 10 ppm Elbagin çözünür.
    NOT: Bazı balıklar, yüzeye çıktıktan hemen sonra yüzdürme becerilerini koruyamazlarsa da, çoğu kişinin bir gün içinde iyileşmesi beklenebilir.
  5. Toplama torbasındaki boğmaca yoğunluğu yüksekse, balıkları nakliye esnasında birbirlerine sürtünerek birbirlerine zarar vermesini önlemek için balıkları daha fazla poşete bölün. Eğer balık agresif bir tür ise onları çantalar arasında ayrı ayrı bölün.
  6. Toplama torbasını oksijenle şişirin ve tekrar çantanın ağzını r kullanarak mühürleyin.ubberbands. Oksijeni torbaya yerleştirirken, çözünmüş oksijen içeriğini artırmak için memeyi torbanın suyuna indirin; Tamamen genişletilmiş torba su ile 1/4 oranında dolu olmalıdır.
  7. Kararlı bir su sıcaklığını korumak ve karanlık koşullar altında balıkların stresini azaltmak için, toplama torbalarını balıklarla bir polistiren köpük kutusunda tutun.
  8. Balıkları bir akvaryuma nakletmek için ≥1 gün sürecekse, günde bir kez, her bir balık tutma torbasında suyun 1 / 4'ü ile 1 / 3'ü arasında değişen hacimde eklenen suyla 10 ppm Elbagin , Ve her birine oksijen koyun. Her gün el altında ağ veya pipetle alttaki ölü balıkları ve dışkıları alın.
    NOT: Uçakla ulaşım söz konusuysa, balıkları taşımadan önce hava basıncına uyumlandırmak için en az 1 gün bekleyin, çünkü kısa vadede iki basamaklı basınç değişimi (sualtından yüzeye ve üstteki havadan yüzeye) olumsuz etkilenebilir Balıkların hayatta kalması. i>

2. Balıkları bir Akvaryuma Acclimate

  1. Su sıcaklığını eşitlemek için 30 dakika boyunca bir akvaryumda bulunan balık çantasını yüzdür.
  2. 10 dakikalık bir süre zarfında, su kimyasında ani bir farklılık ( örn ., PH, tuzluluk) nedeniyle oluşan şoklardan kaçınmak için çanta suyunu akvaryum suyu ile aşamalı olarak değiştirin.
    NOT: Su kimyasında çok büyük bir farkla şoklanan bir balık, vücut renginde ve / veya davranışta anormal bir değişiklik gösterebilir. Aklimasyon sırasında bunu dikkatle izleyin.
  3. Akvaryum suyunda 10 ppm Elbagin çözünür.
  4. Bundan sonra, günde bir kez 3 gün, yedek suya 10 ppm Elbagin ekleyerek akvaryum suyunun 1 / 3'ünü yenileyin.
  5. Sonunda, renk kayboluncaya kadar günde bir kez akvaryum suyunun yarısını değiştirerek Elbagin'i atmaya başlayın.

3. Bireysel Balıkları Tanımlamak için Görünür İmplant Elastomer (VIE) Etiketi Enjekte Etme

T "> NOT: Bu çalışmada, bireysel balıklar VIE etiketleri kullanılarak tanımlanır, örnek olarak Frederick 10 , Olsen ve Vøllestad 11 ve Leblanc ve Noakes 12'ye bakınız . Ayrıca, çalışma türü elinde tutabilecek kadar büyükse , Adım 3.2'de kullanılan cerrahi tablo gerekli olmayacaktır.

  1. Her birey için enjeksiyon pozisyonunu ve etiket rengini belirleyin. En güvenli seçenek vücudun kalın kas dorsal veya kaudal kısmında bir enjeksiyon noktası seçmek ve iç organları deldi olabilir karın içine enjekte etmekten kaçınmaktır.
    NOT: Şekil 1'de bir numaralandırma sistemi tanımlanmıştır: Çalışma türü 8 olası konuma enjeksiyon için yeterince büyükse, bu sistem tek bir renk kullanarak 154 kişinin tanımlanmasına izin verecektir. On renk VIE etiketi ticari olarak mevcuttur. Balıkların vücut rengine göre ayırt edilebilen renkleri seçin.
  2. Elde tutulandan daha küçük olan balıklar için aşağıdaki gibi bir cerrahi tablo hazırlayın (bkz. Kinkel ve ark ., 13 ) ( Şekil 2 ).
    1. 5 cm L x 5 cm W ölçülerinde ve bir Petri kabının yüksekliğinden en az 5-10 mm daha düşük yumuşak bir sünger kesin.
    2. Süngeri yaklaşık 5 - 10 mm derinliğinde bir oluk kesin ve genişliğini balıkların yaklaşık vücut genişliğine ayarlayın. Polivinil klorür (PVC) levhasını (0,3 mm kalınlıkta) 5 cm L x 5 cm W'ye kadar kesin ve bir vadi katına (veya M-şeklinde) bükün.
    3. Yivli PVC karton yivli süngerin üzerine yerleştirin ve ardından süngeri Petri kabına (ø 160 mm, 30 mm derinlik) ayarlayın. PVC tablası yeterince dalınana kadar Petri kabını doldurmak için kurtarma tankındaki suyu kullanın.
  3. VIE etiketlerini VIE etiketleme kılavuzuna göre hazırlayın. Elastomer malzemeleri karıştırın ve karışım 3 mL syriye ilave edilir.Kitte bulunan 29 gauge iğne ile nge.
  4. Etiket enjeksiyonlarını yaparken kullanılacak iki su tankı hazırlayın: biri anestezi için, biri kurtarma için; Yetiştirme akvaryumundaki suya uyacak şekilde sıcaklık ve tuzluluk konsantrasyonlarını ayarlayın. Geri kazanım tankındaki suyu hafifçe sirküle etmek için hava taşı olan bir hava pompası kullanın.
  5. 2-metilkuinolin ile eşit hacimde% 99.5 etanol karıştırılarak anestezi sıvısı hazırlayın; 18 ppm'lik bir konsantrasyonu sağlamak için bunu anestezi deposuna ekleyin.
    NOT: Anestezi sıvısının optimum konsantrasyonu, kişilerin türüne ve vücut boyutuna bağlı olacaktır. Bu nedenle, çalışma türleri için optimum konsantrasyonu önceden peşin olarak inceleyin.
  6. Bireysel balıkları anestezi deposuna aktarın ve anestezi altına almalarına izin verin. Diğer bir deyişle, balıkların dokunulduğuna tepki vermeyinceye kadar bekleyin veya tankın dışına dokunulduğunda titreşimleri bekleyin. Anestettiğinde vücut rengi değiştikçeBirçok balığın zed'i, ayrıca vücut rengini dikkatli bir şekilde izler ve balıkların değişikliklerinden anestezi edilip edilmediğini değerlendirir. Balıkların anestezi deposundan atlamaları ihtimali olduğundan, en azından yavaşça balık hareketleri görene kadar şeffaf bir akrilik tahta kullanarak örtün.
    NOT: Anestezi ve / veya anestezi sıvısının konsantrasyonunu ayarlamak için gereken zamanı, çalışma türüne ve vücut boyutuna göre ince ayarlayın. Operculum hareketi anestezi ile durdurulursa, balık ölüm riski altındadır.
  7. Bedenleri ısıtılır balıklar zayıflarken, balıkları anestezi ederken parmaklarınızı nispeten soğuk suda tutun.
  8. Anestezi deposundan bir balığı kaldırın ve hızlı bir şekilde ölçün veya gerekli verileri kaydedin (toplam uzunluk, cinsiyet vb .). Ölçüm sırasında bir balık iyileşirse, hemen anestezi deposuna geri gönderin.
  9. Balıkları bir cerrahi masaya aktarın. Balıkların ventral yanını tO PVC oluk. Vücut boyutu çok küçükse, enjeksiyon yapılırken binoküler bir mikroskop kullanın. Çalışma türü elinde tutulacak kadar büyükse, tutulurken VIE etiketini enjekte edin.
  10. İğnenin eğimli yüzünü dışa doğru konumlandırın ve balık kafasına doğru baktı. İğneyi subkutan olarak, vücuda az çok paralel olarak ve cildin mümkün olduğunca yakınına sokun. Balık gövdesinin boyutuna ve etiketin nihai olarak görülme kolaylığına bağlı olarak ekleme derinliğini ayarlayın.
  11. İğneyi çekerken VIE etiketini enjekte edin ve iğne eğimi iğne giriş noktasına ulaşmadan önce enjeksiyonu durdurun (etiketi nispeten geniş bir alana enjekte ederseniz ayırt etmek kolaydır).
  12. Etiket enjeksiyonunu tamamladıktan sonra derhal balıkları geri kazanım tankına nakletin. Kurtarma çok yavaş görünüyorsa, su hafifçe elle dolaştırın.
  13. Toparlanma sonrasında, balıkları yetiştirme akvaryumuna geri döndürün ve 10 ppm El3 gün boyunca suya batırın.
    NOT: VIE etiketleri için düşük görünürlük koşullarında, UVA filtrelenmiş ışık etiketleri tanımayı kolaylaştıracaktır.

4. Demersal Yapışkanlı Yumurtaların Sayımı

  1. Balıkların yapışkan yumurta bırakabilecekleri yapay bir yumurtlama yuvası oluşturmak için opak bir PVC boruyu (ø 5 cm, 6 cm uzunluğunda) yarıçapı çapa dik olarak kesin.
    NOT: Yukarıdaki boru büyüklüğü, nispeten küçük gürültüsü olan T. marina'ları yumurtlamak için uygundur. Bu nedenle, PVC boru boyutunu ve formunu, çalışma türleri için uygun olacak şekilde ayarlayın.
  2. Su geçirmez bir tabaka üzerine 5 mm x 5 mm'lik bir ızgara yazdırın ve PVC borunun içerisine uyacak şekilde kesin.
  3. Bir lastik bant kullanarak su geçirmez tabakayı PVC borusunun içine sabitleyin.
    NOT: Dişiler su geçirmez tabakaya yumurta takmak ve yumurtalar tabakadan düşmek zor ise, yaprağı zımpara kağıdıyla dokuya dönüştürün.
  4. Akvaryum tabanını bir tabaka kumla örtün, 1- 2 cm kalınlığında. PVC borunun yaklaşık üçte birini tabaka sabit tarafı aşağı bakacak şekilde kuma eğikçe yerleştirin.
  5. Balık tarafından başarılı bir şekilde yumurtalandıktan sonra yumurta kütlesi bulunan tabakayı PVC borudan çıkarın ve bir akvaryum suyu ile bir Petri kabına koyun. PVC borunun içine yeni bir sayfa yapıştırın ve bunu akvaryumun altına yerleştirin. Son olarak, yumurta kütlesini fotoğraflayarak yumurtaları sayın.
    1. Alternatif olarak, ebeveyn yumurta bakımı gözlemleri yumurtlamadan sonra yapılacak ise, yumurtaları suyun dışına çıkarmamak için dikkatli olun. Daha ziyade yumurta ve tabakayı akvaryum suyu ile birlikte toplayıp yumurta kütlesini çabucak fotoğraflamak için bir Petri kabını kullanın ve daha sonra yumurta kütlesi bulunan tabakayı aynı PVC borusuna geri koyarak hepsini orijinal konumuna getirin. Akvaryumun dibi. Sonunda resmi kullanarak yumurtaları sayın.
  6. ImageJ kullanarak yumurtaları sayın ( Şekil 3 ). Bu otomatik ve manuel hücre sayım yöntemleri aşağıda detaylı olarak açıklanmıştır: Temel hücre sayımı (Chicago Üniversitesi, Integrated Light Microscopy Core Facility, http://digital.bsd.uchicago.edu/image_j.php); Parçacık Analizi (http://imagej.net/Particle_Analysis); Hücre Sayacı (https://imagej.net/Cell_Counter).
    1. Yumurta yoğun yatırılır, aksi halde, alan yoğunluğu oranının hesaplanmasıyla yumurta sayısını tahmin: yumurta yoğunluğunu hesaplamak ImageJ tarafından yumurta kaplı yüzey alanı ölçmek için basılı bir 5 x 5 mm 2 'ızgara yumurta sayısı, Ve ünite ve yüzey alanı başına yüksek yoğunluktan gelen toplam yumurta sayısını hesaplayın. ImageJ'nin yukarıdaki yüzey alanı ölçüm yöntemi aşağıda açıklanmıştır: Ölçeği ayarla ... (Araştırma Hizmetleri Şubesi, https://imagej.nih.gov/ij/docs/menus/analyze.html); Görüntünün mekansal ölçeğini nasıl tanımlayacağınızı açıklar; Yüzey Alanını Ölçmek için ImageJ Kullanımı (Keene State college, AkademikTeknoloji, https://dept.keene.edu/at/2011/04/15/by-matthew-ragan/).
      NOT: Yumurta şeffaf ise, otomatik su sayma yöntemi için siyah su geçirmez tabaka daha uygundur, çünkü ImageJ yumurtaların dış çizgilerini ayrı ayrı tanıyabilir.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

Yukarıdaki yöntemlerin ardından, T. marinee'lerin 41, 15 ve 96'sı Japonya, Kagoshima Bölgesi, Amami Oshima'nın kıyıları sırasıyla 2014 Nisan 2015 ve 2016 yıllarında toplanmıştır ( Tablo 1 ). Her bir vakada, akvaryumda yumurta bırakılana kadar 25 (% 61), 14 (% 93) ve 91 (% 95) kişi yaşıyordu. Fukuda ve ark . Şekil 3'de görüldüğü gibi, 2014 yılında gözlem döneminin bitiminden önce yalnızca bir balık öldü ve...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

Çok sayıda balıkların üreme ekolojisi genellikle deneysel yetiştirme yoluyla ortaya çıkarılmıştır. Özellikle cinsiyet değişimi 6 , 8 , 14 , eş seçimi 15 , 16 ve özel spesifik rekabet 7 , 17 , akvaryumda tutulan balıkları kullanarak detaylı incelemelerde sıkça yer alan konular olmuştur. Ayrıca, akvaryumda gözleml...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

Yazarların açıklayacak bir şeyi yok.

Teşekkürler

Balık toplama konusunda yardım için S. Yokoyama'ya teşekkür ediyoruz. Yetiştirme yöntemleri hakkında yararlı tavsiyeler için W. Kawamura'ya da minnettarız. Bu çalışma, TS'ye verilen hibelerle (No 24370006 ve 16K07507), Japonya Bilim Teşvik Derneği (KAKENHI) tarafından desteklenmiştir.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
El ağıNissoAQ-17Hedef tür boyutu için seçin.
Polietilen torbaSan-U Balık Çiftliği8194
Lastik bantESCO Co., LTD.78-0420-64ø 80 mm x 6 mm
Oksijen silindiriN/AN/ADalış ekipmanı takımları için Oxgen silindiri.
ElbaginJaponya Pet Design Co., Ltd.75950Pafurazin F (aynı şirketten sağlanan) Elbagin'e eşdeğer bir ilaçtır.
Polistiren köpük kutuN/AN/A
PipetAS ONE1-8625-04
HalatMizukami Kinzoku Co., LTD.
AğırlıkN/AN/ADalış ekipmanı takımları için ağırlık.
Su deposuN/AN/A
Hava pompasıKOTOBUKI4972814 062115
Hava taşıKOTOBUKI4972814 232204
2-Metilkinolin Wako170-00376
Etanol (99.5)Wako057-00456
Görünür implant elastomer etiket kitiKuzeybatı Denizcilik TeknolojisiN/Ahttp://www.nmt.us/products/vie/vie.shtml
Yumuşak süngerN/AN/A
PVC levhaN/AN/A0,3 mm kalınlık kullanımı kolaydır.
Petri kabıN/A N/A160 mm ve 30 mm derinlik gibi   ø büyük olanı, VIE etiketinin enjeksiyonu için uygundur.
Şeffaf akrilik levhaN/AN/A
UVA filtreli ışık N/AN/A
PVC boruN/AN/AØ 5 cm
Su geçirmez levhaSOMAR Corp.3EKW03Düz fotokopi makinesi için film.
KumN/AN/A
Stereo mikroskopN/AN/A
KameraN/AN/A
95301601

Kaynaklar

  1. Helfman, G., Collette, B. B., Facey, D. E., Bowen, B. W. The Diversity of Fishes: Biology, Evolution, and Ecology. , Wiley-Blackwell. Oxford. (2009).
  2. Davies, N. B., Krebs, J. R., West, S. A. An Introduction to Behavioural Ecology. , 4th ed, Wiley-Blackwell. Oxford. (2012).
  3. Fukuda, K., Manabe, H., Sakurai, M., Dewa, S., Shinomiya, A., Sunobe, T. Monogamous mating system and sexuality in the gobiid fish, Trimma marinae (Actinopterygii: Gobiidae). J Ethol. 35 (1), 121-130 (2017).
  4. Manabe, H., Matsuoka, M., Goto, K., Dewa, S., Shinomiya, A., Sakurai, M., Sunobe, T. Bi-directional sex change in the gobiid fish Trimma sp.: does size-advantage exist? Behaviour. 145 (1), 99-113 (2008).
  5. Sakurai, M., Nakakoji, S., Manabe, H., Dewa, S., Shinomiya, A., Sunobe, T. Bi-directional sex change and gonad structure in the gobiid fish Trimma yanagitai. Ichthyol Res. 56 (1), 82-86 (2009).
  6. Sunobe, T., Nakazono, A. Sex change in both directions by alteration of social dominance in Trimma okinawae (Pisces: Gobiidae). Ethology. 94 (4), 339-345 (1993).
  7. Wong, M. Y., Munday, P. L., Buston, P. M., Jones, G. P. Monogamy when there is potential for polygyny: tests of multiple hypotheses in a group-living fish. Behav Ecol. 19 (2), 353-361 (2008).
  8. Kuwamura, T., Suzuki, S., Tanaka, N., Ouchi, E., Karino, K., Nakashima, Y. Sex change of primary males in a diandric labrid Halichoeres trimaculatus: coexistence of protandry and protogyny within a species. J Fish Biol. 70 (6), 1898-1906 (2007).
  9. Winterbottom, R. Two new species of the Trimma tevegae species group from the Western Pacific (Percomorpha: Gobiidae). Aqua J Ichthyol Aquat Biol. 10, 29-38 (2005).
  10. Frederick, J. L. Evaluation of fluorescent elastomer injection as a method for marking small fish. Bull Mar Sci. 61 (2), 399-408 (1997).
  11. Olsen, E. M., Vøllestad, L. A. An evaluation of visible implant elastomer for marking age-0 brown trout. N Am J Fish Manag. 21 (4), 967-970 (2001).
  12. Leblanc, C. A., Noakes, D. L. Visible implant elastomer (VIE) tags for marking small rainbow trout. N Am J Fish Manag. 32 (4), 716-719 (2012).
  13. Kinkel, M. D., Eames, S. C., Philipson, L. H., Prince, V. E. Intraperitoneal injection into adult zebrafish. J Vis Exp. (42), e2126(2010).
  14. Reavis, R. H., Grober, M. S. An integrative approach to sex change: social, behavioural and neurochemical changes in Lythrypnus dalli (Pisces). Acta Ethol. 2 (1), 51-60 (1999).
  15. Milinski, M., Bakker, T. C. Female sticklebacks use male coloration in mate choice and hence avoid parasitized males. Nature. 344, 330-333 (1990).
  16. Basolo, A. L. Phylogenetic evidence for the role of a pre-existing bias in sexual selection. Proc R Soc Lond B Biol Sci. 259 (1356), 307-311 (1995).
  17. Milinski, M. Optimal forging: the influence of intraspecific competition on diet selection. Behav Ecol Sociobiol. 11 (2), 109-115 (1982).
  18. Manabe, H., Ishimura, M., Shinomiya, A., Sunobe, T. Field evidence for bidirectional sex change in the polygynous gobiid fish Trimma okinawae. J Fish Biol. 70 (2), 600-609 (2007).
  19. Stammler, K. L., Corkum, L. D. Assessment of fish size on shelter choice and intraspecific interactions by round gobies Neogobius melanostomus. Environ Biol Fishes. 73 (2), 117-123 (2005).
  20. Matsumoto, Y., Tawa, A., Takegaki, T. Female mate choice in a paternal brooding blenny: the process and benefits of mating with males tending young eggs. Ethology. 117 (3), 227-235 (2011).
  21. McCormick, M. I. Behaviorally induced maternal stress in a fish influences progeny quality by a hormonal mechanism. Ecology. 79 (6), 1873-1883 (1998).
  22. Knaepkens, G., Bruyndoncx, L., Coeck, J., Eens, M. Spawning habitat enhancement in the European bullhead (Cottus gobio), an endangered freshwater fish in degraded lowland rivers. Biodivers Conserv. 13 (13), 2443-2452 (2004).
  23. Shiogaki, M., Dotsu, Y. The life history of the gobiid fish, Zonogobius boreus. Bulletin of the Faculty of Fisheries, Nagasaki University. 37, 1-8 (1974).
  24. Meunier, B., Yavno, S., Ahmed, S., Corkum, L. D. First documentation of spawning and nest guarding in the laboratory by the invasive fish, the round goby (Neogobius melanostomus). J Great Lakes Res. 35 (4), 608-612 (2009).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Daha fazla makale keşfet

VIE EtiketlemeBalık TanımlamaSubkutan EnjeksiyonAnestezi ProtokolüCerrahi MasaYumurta İzlemeAkvaryum GözlemiYaban Balığı NakliBalık Alıştırma
Akvaryumda Balıkların Üreme Ekolojisi Araştırmaları İçin Temel Yöntemler
Bize Ulaşın
Kütüphaneye Öner

Gizlilik

Kullanım Koşulları

Politikalar

Telif Hakkı © 2026 MyJoVE Corporation. Tüm hakları saklıdır.