$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Bu 4 PTMs etkili bir şekilde tespit ederek PTM crosstalk araştırmak için bu araçların kısmen benzersiz lizis tampon sistemi üzerinde bağımlı yeteneğidir. BlastR denaturing arabellek benzer şekilde diğer denaturing arabellekleri, protein tüm hücresel kompartmanlarda üzerinden tam protein profil (şekil 2A) sağlayan etkin bir şekilde izole ediyor. Ayrıca, son derece değişken PTM sinyalleri SUMO 2/3, hangi hızla radioimmunoprecipitation tahlil (RIPA) (şekil 2B) gibi sigara denaturing arabelleklerindeki azalır gibi korur. Önemlisi, ne zaman uygun şekilde seyreltilmiş, bu diğer denaturing arabellekleri (Örneğin, Laemmli arabellek) gibi benzeşme reaktifler bütünlüğünü etkilemez.
Denaturing arabellek ile çalışırken önemli bir engel etkili genomik DNA kirlenme kaldırmak için yeteneğidir. Viskozite azaltmak için geleneksel yöntemler kullanarak bir şırınga iğnesi veya örnek sonicating DNA kesme etmektir. Şekil 3A genomik DNA kirlenme A431 hücreye lysate tedaviden sonra BlastR filtre, şırınga iğne veya sonication gösterir. İşte durum böyle değil BlastR filtresini kullanarak genomik DNA'ın neredeyse tamamen kaldırılması bir geleneksel şırınga iğne veya sonication kullanarak. Genomik DNA kirlenme protein geçiş bir SDS-Akrilamid jel ile önemli ölçüde etkiler; Bununla birlikte, BlastR filtre ile tedavi uygun protein geçiş (şekil 3B) kaynaklanan genomik DNA kaldırır. Değiştirilmiş geçiş genomik DNA kirlenme tarafından neden Batı lekesi yorumlanması önemli ölçüde etkileyebilir; Örneğin, filtre uygulanmamış görülen lekeli EGFR desen lysate yanlış filtre uygulanmış örnek (şekil 3 c) göre artan ifadesi olarak yorumlanmalıdır.
Bu en iyi duruma getirilmiş PTM zenginleştirme ve algılama sistemi kullanarak, kimse hızla bir hedef protein bir tarafından değiştirilir ya da daha fazla soruşturma PTMs. PD-L1 PTM profil son zamanlarda bu tekniği kullanarak gerçekleştirilmiş ve sonuçları PD-L1 olduğunu gösterdi belirleyebilirsiniz ubiquitinated, acetylated ve tirozin fosforile yanıt olarak EGF (şekil 4). Önemlisi, bu veriler toplam PD-L1 tespit küçük bir yüzdesini temsil endojen PD-L1 PTM değişiklikleri bildirdi.

Şekil 1: lysate hücreden genomik DNA BlastR filtre ile filtre. (A) BlastR görüntü filtresi. (B) Lysate bir 15 mL toplama tüp yerleştirildi filtre yüklenir. (C) dalgıç şırınga yerleştirilir ve lysate sıkıştırma tarafından filtreden geçirilir. (D) herhangi bir kabarcık tam sıkıştırma yoluyla dahil olmak üzere lysate toplayın. (E) filtre lysate.

Şekil 2: alternatif lizis arabellekleri BlastR lizis arabelleğe karşılaştırılması. Horita ve ark. adapte şekil 2A 2017. Biosci. Rep. 31 (A) A431 hücre lysed BlastR, RIPA, mPER, IP lizis, (% 1 SDS), Denaturing ve Laemmli lizis arabellekleri. Tüm denaturing lysates BlastR filtre kullanarak kaldırıldı genomik DNA vardı. Yalıtım membran, sitoplazmik, mitokondri, ve nükleer işaretleri proteinlerin kendi bölme işareti proteinler karşı antikor kullanarak tespit. (B) A431 hücre BlastR, RIPA ve % 1 SDS denaturing arabellek ile lysed. Lysates immunoprecipitated SUMO 2/3 veya kontrol IgG benzeşme boncuk ile vardı. Örnekleri SDS-PAGE tarafından ayrılmış ve bir SUMO 2/3-horseradish peroksidaz (HRP) antikor kullanarak western blot tarafından analiz. Temsilcisi bağımsız deneyler gösterilir N≥3 engelliyor. Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.

Şekil 3: BlastR lizis filtredir genomik DNA etkin. (A) A431 hücreleri ile denaturing lizis tampon lysed. Genomik DNA kaldırılır veya BlastR filtre, şırınga iğne veya sonication için 5, 10, 20 veya 30 saniye ile sheared. lysate % 2 etidyum bromür, özel Jel Elektroforez tarafından analiz edildi. (B) Lysate A431 hücrelerden lysed ile denaturing bir tampon ya filtresiz veya filtre BlastR filtre ile. Örnekleri SDS-sayfa ile ayrıldık ve Coomassie leke kullanarak görüntülenir. (C) yinelenen örnekleri b SDS-sayfa, PVDF için transfer ayrılmış ve EGFR protein bir EGFR antikor kullanılarak incelenmiştir. N ≥3 bağımsız deneyler üzerinden temsilcisi lekesi gösterilir. Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.

Şekil 4: PD-L1 translasyonel modifikasyonlar EGF kaynaklı olarak algılanmasını. Horita ve ark. adapte şekil 2017. neoplazi30(A). Serum sınırlı A431 hücreleri ya da unstimulated (UT) ya da bir saat önce BlastR lizis arabelleği ile lizis EGF ile uyarılmış. WCL PD-L1 düzeyleri (şerit 1,2) analiz edildi. Ubikuitin bağlama boncuk (UBA01) IP ubiquitinated proteinler (şerit 3,4) kullanılmıştır. Phosphotyrosine bağlama boncuk (APY03) IP tirozin fosforile proteinlerin (şerit 5,6) kullanılmıştır. SUMO 2/3 bağlama boncuk (ASM24) IP SUMOylated 2/3 proteinler (şerit 7,8) kullanılmıştır. Asetil lizin bağlaması boncuk (AAC01) acetylated IP proteinler (şerit 9,10) kullanılmıştır. Bağlama denetimi boncuk IgG IP non-spesifik proteinler için (şerit 11,12) kullanılmıştır. Örnekleri SDS-PAGE tarafından ayrılmış ve PD-L1 antikor kullanarak western blot tarafından analiz. Temsil edici bir leke N ≥3 bağımsız deneyler üzerinden gösterilir. Beyaz Yıldız PD-L1 pY ve Ac protein bantlar vurgulamak için kullanılmıştır. Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.
| BlastR lizis arabellek için hesaplamaları | |
| 1.0 mL | 2.0 mL | 5.0 mL | 10.0 mL |
| BlastR lizis arabellek | 965 ΜL | 1930 ΜL | 4.825 mL | 9.650 mL |
| Tirozin fosfataz inhibitörü | 5 ΜL | 10 ΜL | 25 ΜL | 50 ΜL |
| de-ubiquitinase/de-sumoylase inhibitörü | 10 ΜL | 20 ΜL | 50 ΜL | 100 ΜL |
| HDAC inhibitörü | 10 ΜL | 20 ΜL | 50 ΜL | 100 ΜL |
| Proteaz inhibitörü kokteyl | 10 ΜL | 20 ΜL | 50 ΜL | 100 ΜL |
| BlastR seyreltme arabellek için hesaplamaları | |
| 4.0 mL | 8.0 mL | 20.0 mL | 40.0 mL |
| BlastR lizis arabellek | 3,86 mL | 7,72 mL | 19.3 mL | 38,6 mL |
| Tirozin fosfataz inhibitörü | 20 ΜL | 40 ΜL | 100 ΜL | 200 ΜL |
| de-ubiquitinase/de-sumoylase inhibitörü | 40 ΜL | 80 ΜL | 200 ΜL | 400 ΜL |
| HDAC inhibitörü | 40 ΜL | 80 ΜL | 200 ΜL | 400 ΜL |
| Proteaz inhibitörü kokteyl | 40 ΜL | 80 ΜL | 200 ΜL | 400 ΜL |
Tablo 1: Lizis ve seyreltme tampon hazırlama grafik. Hazırlarken bir verilen lizis ve seyreltme arabellek birim hücre lizis için arabelleği için eklemek için inhibitörleri konsantrasyonları sağlayan grafik.
| Plaka Protein içeriği | Önerilen BlastR lizis arabellek birim | Önerilen BlastR seyreltme arabellek birim |
| < 1 mg | Birden çok tabak protein birleştirmek | 1.5 mL son hacim yapmak |
| 1-2 mg | 300 ΜL | 1.5 mL son hacim yapmak |
| 2-4 mg | 600 ΜL | 3 mL son hacim yapmak |
| 4-6 mg | 900 ΜL | 4.5 mL son hacim yapmak |
Tablo 2: BlastR lizis/seyreltme arabellek grafik. Grafik sağlayan lizis ve seyreltme arabellek birimleri lysate edinirken önerilir.
| Hücre lysate hacmi 1 ml hassas kırmızı Protein tahlil reaktif (µL) eklendi | OD600 okuma örnek ile kullanmak için çarpanı |
| 10 | 10 |
| 20 | 5 |
| 30 | 3.3 |
| 40 | 2.5 |
| 50 | 2 |
Tablo 3: Mg/mL Spektrofotometre okuma dönüştürmek çarpanları Lysate. Grafik dönüştürme numaraları protein konsantrasyonu hesaplama ile Yardımcısı sağlamak.
| benzeşme boncuk | boncuk Bulamaç/IP (mL) hacmi |
| Ubiquitination | 20 |
| Phosphotyrosine | 30 |
| SUMOylation 2/3 | 40 |
| Asetilasyon | 50 |
| Denetim boncuk | boncuk Bulamaç/IP (mL) hacmi |
| Ubiquitination denetim boncuk | 20 |
| Phosphotyrsoine denetim boncuk | 30 |
| SUMOylation 2/3 kontrol boncuk | 40 |
| Asetilasyon denetim boncuk | 50 |
Tablo 4: Boncuk/IP grafik hacmi önerilir. Grafik sağlayan IP tepki kullanmak için benzeşme boncuk miktarda önerilir.