Yöntem makalesi

Farelerde Transkraniyal doğru akım stimülasyon (tDCS)

DOI:

10.3791/58517

⸱

23 Eylül 2018

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Centro de Tecnologia em Medicina Molecular (CTMM), Faculdade de Medicina, Universidade Federal de Minas Gerais

Bu makalede

Özet

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Transkraniyal doğru akım stimülasyon (tDCS) psikiyatrik hastalıkları tedavi etmek için önerilen tedavi edici bir tekniktir. TDCS tarafından uyarılmış belirli biyolojik değişiklikler anlamak için gerekli hayvan bir modeldir. Bu iletişim kuralı bir kronik implante elektrot kullanan bir tDCS fare modeli açıklar.

Özet

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Transkraniyal doğru akım stimülasyon (tDCS) için birkaç nöropsikiyatrik hastalıkların bir alternatif veya tamamlayıcı tedavi olarak önerilen bir non-invaziv neuromodulation tekniktir. TDCS biyolojik etkileri tam olarak, kısmen insan beyin dokusu elde zorluk nedeniyle açıklandığı anlaşılır değil. Bu iletişim kuralı bir kronik implante elektrot tDCS biyolojik etkileri uzun süreli çalışma izin kullanan bir tDCS fare modeli açıklar. Bu deneysel modelde tDCS kortikal gen ekspresyonu değiştirir ve terapötik kullanımı için gerekçe anlayış belirgin bir katkı sunuyor.

Giriş

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Transkraniyal doğru akım stimülasyon (tDCS) kullanılarak düşük yoğunluktaki sürekli akımları1nöronal modülasyon üzerinde duruluyor bir non-invaziv, düşük maliyetli, tedavi tekniği kullanıyor. Şu anda tDCS için iki kurulumları (anodal ve cathodal) bulunmaktadır. Anodal uyarım giderek artan bir geçerli elektrik alanı Aksiyon potansiyelleri tetiklemek için çok zayıf olsa da, bu yöntem sinaptik plastisite2değişimler üretir Elektrofizyoloji çalışmalar göstermiştir. Örneğin, kanıt bu tDCS uzun vadeli kullanılmasının muhtemelen (LTP) etkileri artan pik genlik eksitatör postsinaptik potansiyeller3,4 ve modülasyon kortikal uyarılabilirlik5gibi indükler gösterir.

Tersine, cathodal stimülasyon inhibisyon, membran hyperpolarization6' kaynaklanan neden olmaktadır. Bu mekanizma için bir hipotez tDCS Aksiyon potansiyeli sıklığı ve süresi nöronal vücut3modüle açıklanan fizyolojik bulgular temel alır. Bu depolarizasyon eşik vardiya ve kolaylaştırmak ya da nöronal ateş7engel olsa da özellikle, bu etkiyi doğrudan Aksiyon potansiyelleri, uyandırmak değil. Bunlar etkileri zıt daha önce göstermiştir. Örneğin, anodal ve cathodal dürtme şartına yanıt kayıtlı üzerinden elektromiyografi faaliyet tavşan8karşı etkileri üretti. Ancak, çalışmalar da cathodal akımları artan öz zıt etkileri3sunulması uyarılabilirlik için neden olabilir iken uzun süreli anodal stimülasyon oturumları uyarılabilirlik düşebilir göstermiştir.

Anodal ve cathodal uyaranlara elektrot çiftleri kullanımı toplamak. Örneğin, anodal stimülasyon, "etkin" veya "anot" "referans" veya "katot" elektrot nerede akım etkisi önemsiz9olarak kabul edilir bir bölge üzerinde yer alır, ancak modülasyonlu için beyin bölgesi üzerinde elektrot yerleştirilir. Cathodal stimülasyon, elektrot eğilim ters. Elektrik etkiler elektrot boyutları farklı10alan ve stimülasyon yoğunluğu etkili tDCS için geçerli yoğunluğu üzerinde bağlıdır. En yayınlanmış çalışmalarda, ortalama geçerli yoğunluğu 0,10-2.0 arasında olan anne ve 0,1 mA 0.8 mA insan ve fare, sırasıyla6,11. 35 cm2 elektrot boyutu genellikle insanlarda kullanılmasına rağmen kemirgen için elektrot boyutları ile ilgili uygun hiçbir anlayış ve daha kapsamlı bir soruşturma gerekli6.

tDCS çeşitli nörolojik ve Nöropsikiyatrik bozukluklar11 epilepsi gibi12, bipolar bozukluk13, kontur5 için bir alternatif veya tamamlayıcı tedavi sunan girişimi ile klinik çalışmalarda teklif edildi , major depresyon14, Alzheimer hastalığı15, multipl skleroz16 ve Parkinson hastalığı17. TDCS ilgi ve kullanımı klinik çalışmalarda, detaylı hücresel ve moleküler uyarılmış değişiklikler beyin dokusunda, kısa ve uzun süreli etkileri yanı sıra davranışsal sonuçları ile büyüyen rağmen daha derin olmak18, soruşturma henüz vardır 19. tDCS iyice çalışmaya doğrudan bir insan yaklaşımı uygun olmadığından, tDCS hayvan modeli kullanımını tDCS için erişilebilirlik nedeniyle tedavi mekanizmaları temel hücresel ve moleküler olayların içine değerli bakış açısı sunabilir hayvanın beyin dokusu.

Eldeki kanıtlar farelerde tDCS modelleri ile ilgili olarak sınırlıdır. Rapor modelleri farklı Reproduction düzenler, elektrot boyutları ve malzemeler kullanılır. Örneğin, Winkler vd. (2017) serum dolu kafa elektrot (Ag/AgCl, çapı 4 mm) implante ve akrilik çimento ve vidalar20ile kafatası için sabit. Yaklaşımımız farklı, onların göğüs elektrot implante (Platin, 20 x 1.5 mm) yapıldı. Nasehi vd. (2017) kullanılan bizim için çok benzer bir yordam torasik elektrot salin batırılmış sünger (dolu, karbon 9.5 cm2)21kimden çekilmesine rağmen. Başka bir çalışmada her iki elektrot kullanarak sabit plakalar ve hayvanın kafasını hidrojel iletken22ile kapsayan elde hayvanın kafası içine yerleştirdim. Burada, bir kronik implante elektrot basit cerrahi prosedürler ve tDCS kurulumu ile (Şekil 1) kullanan bir tDCS fare modeli açıklar.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Erkek yetişkin (8-12 hafta) C57BL/6 fareler tek tek yer bu deneyde kullanılmıştır. Hayvanlar alınan uygun bakım öncesinde, sırasında ve sonra deneysel yordamlar yiyecek ve su ile ad libitum. Tüm yordamları Federal Üniversitesi Minas Gerais hayvan Etik Komite tarafından onaylanmış (protokol sayısı 59/2014).

1. elektrot yerleştirme

  1. Sedatif ve hayvan stereotaksik aparatı üzerine düşünüp
    1. Tüm gerekli cerrahi aletler sterilize.
      Dikkat edin. Cerrahi aletler 440 ° C'de 3 dakika sterilize Pamuk temizleme bezi 20 dk için 121 ° C'de 20 psi (inç kare başına pounds) adlı autoclaved.
    2. 37 ° c termal platformu denetleyiciye ayarlamak
    3. Hayvan tartmak ve anestezi indüksiyon için uygun doz hesaplayın. İntraperitoneally verilen 100 mg/kg ketamin ve 8 mg/kg xylazine, (iğne boyutu, 31 G) bir doz ketamin ve xylazine karışımı kullanın. Hayvan 2-3 dk içinde uykuya.
    4. Cerrahi sitesi tıraş için bir elektrikli tıraş makinesi veya jilet kullanın.
    5. Yer hayvan stereotaksik aparatı önceden ısıtılmış üzerinden üzerine tabak Isıtma.
    6. Hayvanın kafa tutun ve ucu kulak çubuklarını her hayvanın kulak stereotaksik platforma düzeltebilirim takabilirsiniz.
    7. Hiçbir yan kafa değişen ve küçük dikey hareketi sonrası yavaş yavaş hayvanın kafası konumlandırma ilerletmeniz olduğunu doğrulayın.
    8. Yavaşça fare burun üzerinde anestezi maskesi slayt ve vida sıkma tarafından yerinde tamir.
    9. İsoflurane %1 1.0 L/dk O2ile ayarlayın.
    10. Ameliyat sırasında kornea kurutma önlemek için hayvanın gözleri göz merhem uygulamak.
  2. Hayvanın başına implant takılması
    1. Pamuk temizleme bezi povidone-iyot (veya %2 KLORHEKSİDİN) üç alternatif scrubs ile cerrahi sitesi hazırlamak için kullanın ve % 70 etanol.
    2. Anestezi derinliği hafifçe hayvanın ayak sıkma ve hayvanın pedal çekilme (ayak tutam) refleks kaybı doğrulama doğrulamak için bir çift cımbız kullanın.
    3. Bir kesik yaklaşık 3 mm hayvanın kulak hattına arka yapmak ve göz satırında durdurmak. Kesi sitenin implant almak için yeterli büyüklükte olmasını uzunluğu yaklaşık 1 cm olmalıdır.
    4. Yavaşça kafatası tutkal geliştirmek ve bağlılık çimento kemik sıyırıcı kazı. Başına mikro çizikler oluşturma niyeti ile bu ışık yapmak.
    5. Dikkatli bir açık cerrahi alan korumak ve engelleri deri ve kürk gibi ücretsiz gevşek cilt için cerrahi kanca yerleştirin.
    6. Hayvanın derisi kuru steril pamuklu çubukla kullanın.
    7. Diseksiyon mikroskop hayvanın kafatası tepesine görselleştirmek için kullanın.
    8. Bir iğne ekleme stereotaksik sahibine ve bregma bulun. Doğrudan biraz bregma dokunmadan hayvanın başının üstünde iğne getirin.
    9. Dijital kaydedici üzerinde tüm koordinatları dışarı sıfır ve iğne yükseltmek.
    10. TDCS implant stereotaksik tutucu düzeltmek. İmplant hayvanın başının üzerine getirin ve yavaşça uygun stereotaksik koordinatları kullanarak ilgi bölgesine indirin.
    11. Süper Tutkal implant'ın Bankası üzerine 1 damla (yaklaşık 35 μL) yaymak için bir iğne kullanın.
    12. Kafatası dokunana kadar yavaş yavaş sahibi aşağı doğru hareket ettirin. İmplant Bankası tamamen yüzeyi ile temas halinde olduğundan emin olun.
    13. Üreticinin yönergelerine göre cerrahi çimento hazırlayın.
    14. 3 ince, hassas konumlandırma sonra uygulama çimento kafatası boyunca ve implant alt kısmı üzerine bile tabakası. Damla damla bir uygulama fırça kullanarak başına uygulama. Katmanları daha yapısal destek implant için tepe şeklinde bir yapı oluşturması gerekir.
    15. İmplant'ın vida dişi temiz çimento pürüzsüz, engelsiz bir bağlantıya izin vermek için bırakın.
    16. Yaklaşık 4 dakika boyunca kurumaya her katmanı sağlar.
    17. İmplantın tamamen müstakil kadar kuru dikkatle sahibi kaldırdığınızda. Her zaman o yanlışlıkla hayvanın kafatasından elde edilebilir bu yana implantın ele alırken çok dikkatli olun.
  3. Ameliyat ve ameliyat sonrası bakım bitirme
    1. Hidrat hayvanın cilt kesi sitesindeki bir serum batırılmış pamuk bez ile.
    2. Ceket deri tDCS implant tabanın üzerinde saklayın.
    3. Doku bir araya getirmek ve bir damla ile kesi cerrahi doku yapıştırıcısı doku 0.2 cm başına kapatmak için bir çift cımbız kullanın.
    4. % 1-2 lidokain kesi sitedeki sızmak ve doku altında yatan.
    5. Fare ile laktat zil'ın çözüm 500 µL subkutan hidrat.
    6. Fare önceden ısıtılmış (37 ° C) temiz, tek yer alan kafesin içine yerleştirin.
    7. Islak yiyecek parçaları ile küçük bir çanak içinde belgili tanımlık kafes kolay erişim için ilerleyen saatlerde yemek için koymak.
    8. Hayvanın ameliyat sonrası ağırlık kayıt.
    9. Hayvan ketoprofen (5 mg/kg) subkutan ameliyattan sonra ve sonraki 2 gün verin.
    10. Hayvan kurtarma en az 1 hafta yakından izlemek. Sıkıntı, piloerection, damat, azaltılmış hareket, yarayı kaşıma ve cerrahi sitesi iltihabı gibi iz değerlendirmek.

2. tDCS kurulum ve stimülasyon

  1. tDCS kurulum (bkz. Şekil 2)
    Dikkat edin. TDCS uyarıcı dolu olduğundan emin olun.
    1. TDCS uyarıcı için anot ve katot kabloları takın ve yakın stimülasyon bölgesi kullanılabilmesini sağlayın. Tipi elektrot stereotaksik sahibine iliştirin.
    2. 37 ° C'ye termal platformu ayarla
    3. 1 L/dk inhalasyon anestezi sistemdeki oksijen Flowmetre açın.
    4. Fareyi anestezi indüksiyon odasına getirin.
    5. % 3 isoflurane Buharlaştırıcı açın. İsoflurane etkileri 4 dakika geçmesi hayvan izin.
    6. Hayvan indüksiyon odasında, steril enjektör vücut elektrot % 0,9 serum fizyolojik çözüm ile doldurmak için kullanın.
    7. Hayvan indüksiyon odasından kaldırın ve göğüs kafesini açar vücut elektrot üzerinde konumlandırın.
    8. Yavaşça fare burun üzerinde anestezi maskesi slayt ve yerde düzeltebilirim. % 1.5 isoflurane çıktısına indirin.
    9. İmplant ve tipi elektrot serum doldurmak ve dikkatli bir şekilde ekleyebilirsiniz.
    10. Stimülasyon zaman ve geçerli yoğunluğunu ayarlayın.
    11. TDCS uyarıcı kişi kalitesine doğrulayın. En uygun kişi 7'den 10'a 1-10 ölçeğinde gider.
  2. Stimülasyon
    1. Stimülasyon başlatın.
    2. 30 kadar ramping geçerli gözlemlemek s seçilen değeri ve kendisini korumak için sürekli kurulan süre sonra tekrar aşağı ramping oturum sonunda.
    3. Sham düğmesini kontrol fareler için etkinleştirebilirsiniz.
    4. 30 kadar ramping geçerli gözlemlemek s seçilen değeri ve sonra stimülasyon döneminin son bir rampa ile dinlenmek için ardışık bir rampa ile sonunda seçilen değeri için 1.
    5. Dikkatle stimülasyon oturum tamamlandıktan sonra 10 dakika önceden ısıtılmış (37 ° C) kafes hayvan aktarın.
      Dikkat edin. Hayvanlar 3 dk sonra uyandırmaya başlayın.
    6. İnhalasyon anestezi sistemi devre dışı.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Cerrahi protokol inflamatuar hiçbir sinyalleri uyarılmış sitesinde ne de herhangi bir istenmeyen etkisi ile en az bir ay için uzun vadeli implant istikrar sundu. Cerrahi prosedür ve tDCS oturumları tüm hayvanlar hayatta (n = 8). Bu deneyde, tDCS implantlar M1 ve M2 cortices (+ 1.0 mm ön-arka ve 0.0 mm lateral bregma için) üzerinde konumlandırılmış. Bir hafta sonra tDCS (n = 3-4) ve sham (n = 3) fareler teşvik için beş ardışık gün boyunca 10 min 0,35, anne. İmplant viability değerlendirmek...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Son yıllarda, neurostimulation teknikleri klinik pratikte Nöropsikiyatrik bozukluklar23tedavisi için umut verici bir prosedür olarak girerek. Neurostimulation mekanizmaları bilgisi eksikliği tarafından dayatılan kısıtlama azaltmak için burada beyin bölgeleri hedefleyebilirsiniz bir elektrot taşıyan bir tDCS fare modeli sundu. Elektrot kronik implante edilebilir olduğundan, bu hayvan modeli uzun ömürlü biyolojik etkileri karmaşık stimülasyon desen (en az 1 ay için) tDCS tarafından uyarılmış incelen...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Teşekkürler

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bay Rodrigo de Souza fare kolonileri korumak yardım için teşekkür. L.A.V.M bir burunları doktora sonrası adam var. Bu eser grant PRONEX tarafından desteklenmiştir (FAPEMIG: APQ-00476-14).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
BD Ultra-İnce 50U ŞırıngaBD10033430026İntraperitonik enjeksiyon için.
Tıraş makinesi (Philips Multigroom)Philips (Brezilya)QG3340/16Cerrahi alan düzeltme için.
Cerrahi Ekipman
Model 940 Dijital Ekranlı Küçük Hayvan Stereotaksik AletKOPF940Hayvan cerrahi kısıtlama ve konumlandırma için.
Model 922 Yırtılmayan 60 Derece Uçlu Kulak ÇubuklarıKOPF922Hayvan cerrahi kısıtlaması ve konumlandırması için.
Kanül TutucuKOPF1766-APİmplant konumlandırma için.
Bom Standı Üzerinde Hassas Stereo Zoom Binoküler Mikroskop (III)WPIPZMIII-BSBregma lokalizasyonu ve implant konumlandırması için.
Sıcaklık Kontrol Sistemi Modeli KOPFTCAT-2LVHayvan termal kontrolü için.
Soğuk Işık Kaynağı WPIWA-12633Odak parlaklığı için
Süpürme ile Masa Üstü Laboratuvar Hayvanı Anestezi SistemiVetEquip901820İzofluran dağıtımı ve güvenliği için.
VaporGuard Aktif Karbon Adsorpsiyon FiltresiVetEquip931401Dağıtım sistemi güvenlik önlemleri.
Model 923-B Fare Gazı Anestezi Baş TutucuKOPF923-BHayvan kısıtlaması ve O2 ve izofluran dağıtımı için.
Oksijen regülatörü, E-silindir VetEquip901305O2 düzenleme ve teslimat için.
Oksijen hortumu – yeşil O2 ve izofluran iletimi içinVetEquip931503
Kızılötesi Sterilizatör 800 >m; CMarconiMA1201Alet sterilizasyonu için.
Cerrahi Aletler
İnce Makas - ToughCutFine Science Tools14058-11İnsizyon için.
Cerrahi KancalarINJEX1636Evde Fabrikasyon - Cerrahi bölgeyi deri ve kürkten temizlemek için kullanılır.
Standart Cımbız veya Forseps-Cildi kavramak için.
Cerrahi Sarf Malzemeleri
Vetbond3MSC-361931Kesi kapatma için.
Çimento ve Katalizör KİTİ (Duralay)Reliance2OZİmplant fiksasyonu için.
Steril Pamuklu Çubuklar (Otoklavlanmış)JnJ75UCerrahi alan antisepsi için.
24 Kuyulu Plaka (Doku Kültürü Plakası)SARSTEDT831,836Çimento hazırlığı için.
Uygulama FırçasıparkellS286Çimento karıştırma ve uygulama için.
Eczacılık< / güçlü >
Xylazin (ANASEDAN %2)Ceva Pharmaceutical (Brezilya)P10160Anestezi indüksiyonu için.
Ketamin (DOPALEN %10)Ceva Pharmaceutical (Brezilya)P30101Anestezi indüksiyonu için.
İzofluran (%100)Cristá lia (Brezilya)100MLAnestezi bakımı için.
Lidokain (KSİLESTESİN% 5)CristalPharma-Ameliyatsonrası bakım için.
Ketoprofen (PROFENID 100 mg)Sanofi Aventis20MLAmeliyat sonrası bakım için.
Ringer'ın Laktat ÇözeltisiSANOBIOL LAB7898153652145Ameliyat sonrası bakım için.
TobraDex (Deksametazon 1 mg/g)Alcon631Göz yağlanması ve korunması için.
Stimülasyon< / güçlü >
Hayvan Transkraniyal StimülatörüSoterix Medical2100Mevcut nesil için.
Pim tipi elektrot Tutucu (Silindirik Tutucu Taban)Soterix Medical2100Elektrot desteği (İmplant).
Pim tipi elektrot (Ag/AgCl)Soterix Medical2100Akım iletimi için (elektrot). 
İmplant koruması içinpim tipi elektrot kapağıSoterix Medical2100
Gövde Elektrodu (Ag/AgCl Kaplı)Soterix Medical2100Akım iletimi için (elektrot). 
Tuzlu Çözelti (%0,9)FarmaX7896902206441Mevcut teslimat için iletken ortam.
Standart Cımbız veya Forseps-tDCS kurulumu için.
Gerçek Zamanlı Polimeraz Zincir Reaksiyonu
BioRad CFX96 Gerçek Zamanlı SistemBioRadC1000qPCR
için SsoAdvancedTM Evrensel SYBR Yeşil Süper Karışım (5 X 1 mL)BioRad1725271qPCR
Sert Kabuk PCR Plakaları için PCT COM 50 p/ CFX96BioRadHSP9601qPCR
Microseal "B" conta pct c / 100qPCR içinBioRadMSB1001
.. için

Kaynaklar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Filmer, H. L., Dux, P. E., Mattingley, J. B. Applications of transcranial direct current stimulation for understanding brain function. Trends in Neurosciences. 37 (12), 742-753 (2014).
  2. Nitsche, M. A., Paulus, W. Sustained excitability elevations induced by transcranial DC motor cortex stimulation in humans. Neurology. 57 (10), 1899-1901 (2001).
  3. Kronberg, G., Bridi, M., Abel, T., Bikson, M., Parra, L. C. Direct Current Stimulation Modulates LTP and LTD: Activity Dependence and Dendritic Effects. Brain Stimulation. 10 (1), 51-58 (2017).
  4. Pelletier, S. J., Cicchetti, F. Cellular and Molecular Mechanisms of Action of Transcranial Direct Current Stimulation: Evidence from In Vitro and In Vivo Models. International Journal of Neuropsychopharmacology. 18 (2), pyu047(2015).
  5. Chang, M. C., Kim, D. Y., Park, D. H. Enhancement of cortical excitability and lower limb motor function in patients with stroke by transcranial direct current stimulation. Brain Stimulation. 8 (3), 561-566 (2015).
  6. Lefaucheur, J. P., et al. Evidence-based guidelines on the therapeutic use of transcranial direct current stimulation (tDCS). Clinical Neurophysiology. 128 (1), 56-92 (2017).
  7. Monai, H., et al. Calcium imaging reveals glial involvement in transcranial direct current stimulation-induced plasticity in mouse brain. Nature Communications. 7, 11100(2016).
  8. Marquez-Ruiz, J., et al. Transcranial direct-current stimulation modulates synaptic mechanisms involved in associative learning in behaving rabbits. Proc. Natl. Acad. Sci. 109, 6710-6715 (2012).
  9. Jackson, M. P., et al. Animal models of transcranial direct current stimulation: Methods and mechanisms. Clinical Neurophysiology. 127 (11), 3425-3454 (2016).
  10. Cambiaghi, M., et al. Brain transcranial direct current stimulation modulates motor excitability in mice. The European journal of neuroscience. 31 (4), 704-709 (2010).
  11. Monte-Silva, K., et al. Induction of late LTP-like plasticity in the human motor cortex by repeated non-invasive brain stimulation. Brain Stimulation. 6 (3), 424-432 (2013).
  12. San-Juan, D., et al. Transcranial Direct Current Stimulation in Mesial Temporal Lobe Epilepsy and Hippocampal Sclerosis. Brain Stimulation. 10 (1), 28-35 (2017).
  13. Brunoni, A. R., et al. Transcranial direct current stimulation (tDCS) in unipolar vs. bipolar depressive disorder. Progress in Neuro-Psychopharmacology and Biological Psychiatry. 35 (1), 96-101 (2011).
  14. Brunoni, A. R., et al. Trial of Electrical Direct-Current Therapy versus Escitalopram for Depression. New England Journal of Medicine. 376 (26), 2523-2533 (2017).
  15. Boggio, P. S., et al. Prolonged visual memory enhancement after direct current stimulation in Alzheimer's disease. Brain Stimulation. 5 (3), 223-230 (2012).
  16. Cosentino, G., et al. Anodal tDCS of the swallowing motor cortex for treatment of dysphagia in multiple sclerosis: a pilot open-label study. Neurological Sciences. , 7-9 (2018).
  17. Kaski, D., Dominguez, R. O., Allum, J. H., Islam, A. F., Bronstein, A. M. Combining physical training with transcranial direct current stimulation to improve gait in Parkinson's disease: A pilot randomized controlled study. Clinical Rehabilitation. 28 (11), 1115-1124 (2014).
  18. Monai, H., et al. Calcium imaging reveals glial involvement in transcranial direct current stimulation-induced plasticity in mouse brain. Nature Communications. 7, 11100(2016).
  19. Fritsch, B., et al. Direct current stimulation promotes BDNF-dependent synaptic plasticity: potential implications for motor learning. Neuron. 66 (2), 198-204 (2010).
  20. Winkler, C., et al. Sensory and Motor Systems Anodal Transcranial Direct Current Stimulation Enhances Survival and Integration of Dopaminergic Cell Transplants in a Rat Parkinson Model. New Research. 4 (5), 17-63 (2017).
  21. Nasehi, M., Khani-Abyaneh, M., Ebrahimi-Ghiri, M., Zarrindast, M. R. The effect of left frontal transcranial direct-current stimulation on propranolol-induced fear memory acquisition and consolidation deficits. Behavioural Brain Research. 331 (May), 76-83 (2017).
  22. Souza, A., et al. Neurobiological mechanisms of antiallodynic effect of transcranial direct current stimulation (tDCS) in a mice model of neuropathic pain. Brain Research. 1682 (14-23), (2018).
  23. Woods, A. J., et al. A technical guide to tDCS, and related non-invasive brain stimulation tools. Clinical Neurophysiology. 127 (2), 1031-1048 (2016).
  24. Cogan, S. F., et al. Tissue damage thresholds during therapeutic electrical stimulation. Journal of Neural Engineering. 13, 2(2017).
  25. Podda, M. V., et al. Anodal transcranial direct current stimulation boosts synaptic plasticity and memory in mice via epigenetic regulation of Bdnf expression. Scientific reports. 6 (October 2015), 22180(2015).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya şekillerini yeniden kullanmak için izin iste

İzin iste

Etiketler

tDCS Fare ModeliElektrot mplantasyonuKortikal Gen EkspresyonuAnodal Katodal Stim lasyonStereotaksik D zenekzofluran AnestezisiKetamin Ksilazin Kar mCerrahi imento UygulamasDavran sal Molek ler Analiz

İlgili makaleler