Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliğiniz gereklidir. Giriş yapın veya ücretsiz denemenizi bugün başlatın.

Yöntem makalesi

Site yönettiği Mutagenesis in Vitro ve Escherichia Coli etkileşimlerde RNA ile örneği Vivo deneyler için

20.4K görüntülenme

⸱

DOI:

10.3791/58996

⸱

5 Şubat 2019

 ,  , 
1Department of Biochemistry and Molecular Biology, University of Southern Denmark

Bu makalede

Özet

Mutagenesis site yönettiği belirli mutasyonların Deoksiribonükleik asit (DNA) tanıtmak için kullanılan bir tekniktir. Bu iletişim kuralı site yönettiği mutagenesis ile 2 adım nasıl açıklar ve ilgi herhangi bir DNA parçası geçerlidir yaklaşım 3 adımlı polimeraz zincir tepkimesi (PCR) dayalı.

Özet

Site yönettiği mutagenesis küçük kodlamayan ribonükleik asit (sRNA) molekülleri ve hedef haberci RNA (mRNA) arasındaki etkileşimi araştırmak için DNA belirli mutasyonların tanıtmak için kullanılan bir tekniktir. Buna ek olarak, site yönettiği mutagenesis belirli protein bağlayıcı siteleri için RNA eşlemek için kullanılır. 2-adım ve 3-adım dayalı PCR giriş mutasyonların açıklanmıştır. Tüm protein-RNA ve RNA, RNA-RNA etkileşim çalışmaları ile ilgili bir yaklaşımdır. Kısacası, teknik astar istenen mutation(s) ile 2 veya 3 adımda bir PCR ürünü mutasyon ile sentezleme PCR aracılığıyla tasarlama üzerinde dayanır. PCR ürünü daha sonra klonlama için kullanılır. Burada, nasıl site yönettiği mutagenesis mutasyonlar sRNA, McaS ve mRNA, RNA, RNA-RNA ve RNA-protein etkileşimleri araştırmak için csgD, tanıtmak için her iki 2 ve 3 adım yaklaşım ile gerçekleştirileceğini açıklar. RNA etkileşimleri araştırmak için bu tekniği uygulamak; Ancak, tüm mutagenesis çalışmaları (örneğin, DNA-protein etkileşimleri, amino asit ekleme/değiştirme/silme) için uygun bir tekniktir. Mutasyon doğal olmayan üsler dışında herhangi bir tür tanıtmak mümkün ama tekniği yalnızca PCR ürünü aşağı akım uygulama (örneğin, klonlama ve daha fazla PCR için şablon) için kullanılması durumunda geçerlidir.

Giriş

Tüm yapılar hücrenin DNA'sının sırayla kodlanır ettiği DNA kez için bir yaşam hücre planı denir. Doğru çoğaltma ve DNA tamir mekanizmaları mutasyonların sadece çok düşük oranları, doğru kodlanmış genler fonksiyonların sürdürülmesi için gerekli olduğu ortaya emin olun. Değişiklikleri DNA dizisinin farklı düzeylerde DNA'sını (transkripsiyon faktörleri ve enzimleri tarafından tanınması), sonra RNA (ikincil yapı değişiklik ve baz çifti tamamlayıcılık) ve/veya protein (amino başlayarak birbirini izleyen işlevleri etkileyebilir asit oyuncu değişikliği, silme, ekleme veya çerçeve-vardiya). Birçok mutasyonlar gen işlevini önemli ölçüde etkilemez ise bazı mutasyonlar DNA büyük etkileri olabilir. Böylece, mutagenesis site yönettiği belirli DNA siteleri her düzeyde önemi eğitim için değerli bir araçtır.

Bu iletişim kuralı belirli mutasyonlar tanıtmak için kullanılan bir hedeflenen mutagenesis yaklaşımı açıklar. Protokol iki farklı PCR stratejileri üzerinde dayanır: 2 adım veya 3 adımlı PCR. 2-adım PCR istenen mutasyon 5' uç ya da ilgi DNA 3' sonu yakın ise geçerlidir (< 200 baz çifti (bp) sonundan itibaren) ve 3-adım PCR tüm durumlarda geçerlidir.

2-adım PCR yaklaşımda, 3 astar tasarlanmıştır, hangi bir astar kümesi DNA'sı (astar 1 ve 3, ileriye ve geriye doğru sırasıyla) faiz yükseltmek için tasarlanmıştır ve tek bir astar mutasyon birleştirmek için tasarlanmıştır. Mutasyon 5' ucu ve ileriye doğru bir yönelim yakın ise mutasyon 3' ucu yakın ise astar (astar 2) tanıtımı mutasyon geriye doğru bir yönelim olmalı. İlk PCR adımda astar 1 + 2 ya da 2 + 3 5' uç veya 3' ucu yakın küçük bir parça sırasıyla güçlendirir. Elde edilen PCR ürünü sonra iki adımda bir astar astar 1 veya 3, böylece bir PCR ürünü faiz (Şekil 1A) DNA'daki bir mutasyon ile sonuçlanan ile kullanılır.

3-adım PCR 4 astar tasarlanmış, astar kümesi DNA'sı (astar 1 ve 4, ileriye ve geriye doğru sırasıyla) faiz yükseltmek için tasarlanmıştır ve astar bir dizi belirli mutasyonlar tamamlayıcılık örtüşen ile birleştirmek için tasarlanmıştır (astar 2 ve 3, geri ve ileri, sırasıyla). Bir ve iki adımda, astar 1 + 2 ve 3 + 4 5' ve 3' son yükseltmek. Üç adımda elde edilen PCR urun adım bir ve iki şablon olarak kullanılır ve astar 1 + 4 ile güçlendirilmiş. Böylece, elde edilen PCR ürünü istediğiniz mutasyon (Şekil 1B) ile ilgi DNA'sı.

Mutasyona uğramış DNA-ebilmek var olmak kullanılmış için aşağı akım herhangi bir uygulama iken, bu iletişim kuralını DNA klonlama vektör yeniden birleştirmek açıklar. Vektörel çizimler klonlama kullanım kolaylığı klonlama gibi çeşitli avantajları vardır ve özelliklere bağlı olarak belirli deneysel uygulamalar Yöneyin. Bu özellik genellikle RNA etkileşimi çalışmalar için kullanılır. Başka bir RNA etkileşim çalışmaları için karmaşık başka bir RNA1,2 veya protein3,ile4RNA'ın yapısal sondalama tekniğidir. Mutagenesis site yönettiği ve sonraki klonlama için etkileşim çalışmaları içinde vivo izin ise ancak, yapısal sondalama sadece tüp bebek gerçekleştirilir.

Site yönettiği mutagenesis yoğun olarak burada sunulan RNA etkileşim çalışmaları için kullanılmıştır. Ancak, anahtar yöntemi ile ilgili 2 - veya 3-adım PCR DNA herhangi bir parça için geçerlidir ve böylece sadece RNA-etkileşim çalışmaları için sınırlı.

Teknik ve olası kullanımları örneklemek için bölgeler için mRNA, csgD, Escherichia coli (e.coli) çoğu düzenleme önemli karakterizasyonu kullanılır. E. coli, csgD içinde küçük kodlamayan RNA tarafından McaS, protein, protein-ifade CsgD2,4,5bastırmak için Hfq, ile işbirliği içinde hedeflenmektedir. Teknik mutasyonlar McaS arasındaki csgD Bankası eşleştirme bölge ve csgDHfq bağlama site tanıtmak için kullanılır. Elde edilen DNA sonra sonraki deneyler için uygun bir vektör içine klonlanmış. Tekniğin aşağı akım uygulamalar içinde vivo, tüp bebek deneyleri içerir. İçin örnek, örnek 1 içinde vivo bir western blot yöntemi kullanarak karakterizedir ve örnek 2 tüp bebek bir elektroforetik hareketlilik üst karakter tahlil (Emsan) kullanarak karakterizedir. Her iki durumda da, o resimli nasıl site yönettiği mutagenesis birlikte diğer teknikleri ile ilgi bir gen hakkında biyolojik sonuçlar yapmak için kullanılabilir.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

1. vektör seçimi

  1. Bir vektör ile aşağı akım deneyler gerçekleştirmek için seçin. Herhangi bir vektör bu 2 ve 3 adım PCR yöntemi için geçerlidir.
  2. Vektör seçim üzerinde bağlı olarak, uygun enzimleri klonlama için seçin.

2. astar tasarım site mutagenesis yönetmen

  1. Her iki 2-adım veya 3 adımlı PCR strateji arasında karar (2-adımdır sadece mutasyonlar için < 200 faiz DNA'ın iki ucundan kan basıncı). 2-adım PCR adım 2.2 gidin ve 3 adımlı PCR için adım 2.3'e gidin.
  2. 2-adım PCR tasarım astar.
    1. Astar 1 ve ilgi ve ile 5' DNA yükseltmek için 3 çıkıntı tasarım ilgili kısıtlama tanıma site seçilen vektör clone için gerekli ardından 4 nükleotit (örneğin, ATAT veya AGCT) içerir.
    2. İlk 2 mutation(s), istenen site veya siteleri tanıtmak ve mutasyon ile 10-15 tamamlayıcı nükleotit her iki kanattan için tasarım. Astar mutasyon 5' sonunda kullanılırsa ters yapmak ya da mutasyon 3' sonunda kullanılırsa ileri.
  3. 3-adım PCR tasarım astar.
    1. Astar 1 ve 4 DNA ilgi ve ile 5' yükseltmek için bu çıkıntı tasarım ilgili kısıtlama tanıma site seçilen vektör clone için gerekli ardından 4 nükleotit (örneğin, ATAT veya AGCT) içerir.
    2. Astar 2 ve 3 mutation(s) istenen site (ler), tanıtmak ve mutasyon tarafından 10-15 tamamlayıcı nükleotit her iki kanattan tasarlayın. Astar 2 ve 3 tamamlayıcı ters vardır.

3. PCR vahşi klonlama için tipi DNA amplifikasyon

Not:6PCR hakkında ayrıntılar için bkz.

  1. PCR6 1 + 2 (2-adım PCR) veya 1 + 4 (3-adım PCR) primerler kullanılarak gerçekleştirmek ve vahşi türü DNA PCR ürünü ı. kullanım Tablo 1' deki PCR programını edinmek için şablon olarak kullanmak.
  2. PCR özel jel elektroforez tarafından doğrulayın.
    1. Bir özel çözüm (% 2) jel özel 100 mL 1 x Tris-asetat-ethylenediaminetetraacetic asit (EDTA) (TAE) arabelleği başına 2 g ekleyerek getirin. Özel bir mikrodalga fırında kaynatılarak geçiyoruz. DNA boyama boya etidyum bromür ekleyin (son bir konsantrasyon için ~ 0,5 µg/mL) için özel görüntüleme için çözüm jel.
    2. Özel jel döküm, bir elektroforez birimine yerleştirin ve PCR örnekleri (DNA yükleme boya ile karışık) ve bilinen boyutu DNA merdivenden yüklemek. Bantlar yeterince ayrılır ve bantları bir ultraviyole (UV) tablo ya da bir jel görüntüleme sistemi ile görselleştirmek kadar örnekleri 75 45 dk veya W çalıştırın.
  3. PCR ürünü jel ekstraksiyon kiti (Malzemeler tablo) ile arındırmak ve saf DNA konsantrasyonu spektrofotometre (Malzemeler tablo) ile ölçmek.
  4. -20 ° c (arabellekte Tris-EDTA (TE)-uzun vadeli depolama) veya 4 ° C'de (dH2O – kısa süreli depolama) saf DNA kullanılmış içinde adım 5 kadar saklayın.

4. site yönettiği mutasyonlar DNA'yı tanıtmak için PCR

  1. PCR 2-adım PCR (bkz. Adım 4.2 3 adımlı PCR için)
    1. Mutasyonlar 5' uç veya Eğer mutasyon 3' 2 + 3 sonlandırmak ve vahşi türü DNA PCR ürünü II elde etmek için bir şablon olarak kullanmak astar 1 + 2 kullanarak PCR6 gerçekleştirmek (bkz. Tablo 1 için PCR program).
    2. Özel jel elektroforez olduğu gibi adım 3.2.1 ve 3.2.2 tarafından PCR doğrulayın.
    3. PCR ürünü jel ekstraksiyon kiti (Malzemeler tablo) ile arındırmak ve saf DNA konsantrasyonu spektrofotometre (Malzemeler tablo) ile ölçmek.
    4. Mağaza DNA-20 ° c (TE arabellekte) veya 4 ° C'de (dH2O) kullanılmış içinde adım 5 kadar saf.
    5. Eğer mutasyonlar 5' ucuna veya astar mutasyonlar sonunda 3' iseniz ve vahşi türü DNA PCR ürünü III almak için şablon olarak 1 PCR ürünü II astar astar 3 birlikte olarak kullanarak PCR6 gerçekleştirmek (bkz. Tablo 1 PCR program için).
    6. Özel jel elektroforez olduğu gibi adım 3.2.1 ve 3.2.2 tarafından PCR doğrulayın.
    7. PCR ürünü jel ekstraksiyon kiti (Malzemeler tablo) ile arındırmak ve konsantrasyon saf DNA'ın bir spektrofotometre (Malzemeler tablo) ile ölçmek.
    8. Mağaza DNA-20 ° c (TE arabellekte) veya 4 ° C'de (dH2O) 5 adım kadar saf.
  2. PCR 3 adımlı PCR
    1. Astar 1 + 2 ve 3 + 4 ayrı tepkileri kullanarak PCR6 gerçekleştirmek ve vahşi türü DNA PCR ürünü elde etmek için şablon olarak kullanın (bkz. Tablo 1 için PCR program) II ve III.
    2. Özel jel elektroforez olduğu gibi adım 3.2.1 ve 3.2.2 tarafından PCR doğrulayın.
    3. PCR ürünleri bir jel ekstraksiyon kiti (Malzemeler tablo) ile arındırmak ve saf DNA konsantrasyonu spektrofotometre (Malzemeler tablo) ile ölçmek.
    4. Mağaza DNA-20 ° c (TE arabellekte) veya 4 ° C'de (dH2O) saf.
    5. 1 + 4 primerler kullanılarak PCR6 gerçekleştirmek ve PCR ürünü IV elde etmek için 2-5 ng her iki PCR ürünlerinin II ve III (kategorisinde de aynı tepkiyi) şablon olarak kullanın (bkz. Tablo 1 için PCR program).
    6. Özel jel elektroforez olduğu gibi adım 3.2.1 ve 3.2.2 tarafından PCR doğrulayın.
      Not: Birkaç yanlış bantları (bazen daha az şablonu kullanılarak azaltılabilir) almak anormal değildir. Ancak, Eğer doğru boy band varlığına ve jel çıkarılan yanlış PCR ürünleri sayılabilir.
    7. Doğruysa, PCR ürünü jel ekstraksiyon kiti (Malzemeler tablo) ile arındırmak ve konsantrasyon saf DNA'ın bir spektrofotometre (Malzemeler tablo) ile ölçmek.
    8. Mağaza DNA-20 ° c (TE arabellekte) veya 4 ° C'de (dH2O) 5 adım kadar saf.

5. vahşi türü ve DNA'sı mutasyona uğramış sürümleri seçilen vektör içine rekombinasyon

Not: aşağıdaki adımları ayrıntılı bilgi için bkz.7.

  1. Özet saf PCR ürünleri ı ve III (üzerinden 2-adım PCR) ve/veya ilgili kısıtlama enzimler kullanarak IV (gelen 3 adımlı PCR).
    1. 1 sindirim arabellek x 20 µL 1 µL PCR ürünü için 30-60 dk 37 ° C'de Özet 200 ng her Restriksiyon enzimi ile içinde.
  2. Jel bir jel ekstraksiyon kiti (Tablo reçetesi) kullanarak çıkarma tarafından sindirilmiş PCR ürünü arındırmak, saf DNA'ın DNA toplama bir spektrofotometre (Malzemeler tablo) ile ölçmek ve stok-20 ° c (TE arabellekte) ya da 4 ° C'de (dH2 O) kadar adım 5.6 için kullanılır.
  3. İlgili enzimleri ile arıtılmış vektör sindirmek ve alkalen fosfataz ile vektör yeniden ligasyonu olaylar azaltmak için tedavi. PCR ürünleri alkalen fosfataz ile muamele yapmak.
    1. 1 x 1 µL her Restriksiyon enzimi ve alkalen fosfataz, Özet 1000 ng vektörünün 30-60 dk 37 ° C'de 1 µL ile sindirim tampon 30 µL içinde.
  4. Atık DNA (örneğin, kesilmemiş vektör ve boşaltma DNA) ayrı sindirilir vektöründen özel jel elektroforez adım 3.2.1 ve 3.2.2 olduğu gibi kullanarak.
  5. Jel bir jel ekstraksiyon kiti (Tablo reçetesi) kullanarak çıkarma tarafından sindirilmiş vektör arındırmak, DNA toplama saf DNA'ın bir spektrofotometre (Malzemeler tablo) ile ölçmek ve stok-20 ° c (TE arabellekte) ya da 4 ° C'de (dH2O) Adım 5.6 için kullanana kadar.
  6. Sindirilir PCR ürünleri sindirilmiş vektör Tablo 2' de belirtilen reaksiyonlar ile ligate.
  7. 2 h veya 16 ° C'de gece için oda sıcaklığında kuluçkaya
  8. Alıcı zorlanma (örneğin, E. coli K12) tüp ligasyonu reaksiyonlar ile dönüşümü.
    1. Zorlanma OD600için büyümek = 0,3-0,5 ve transfer 1 mL kültür ligaz tepkiler olarak kadar 1,5 mL tüpler için.
    2. 3.500 x g 5 min için de spin ve süpernatant atın.
    3. Dönüştürme arabelleği (0,1 g/mL Polietilen glikol 3350, %5 dimetil sülfat ve 20 mM MgCl2lysogeny suyu (LB): 10 mL) 200 μL hücrelerde resuspend.
    4. Ve buz için 30 dk tüpler yer ligasyonu tepki ekleyin.
    5. Isı-şok 42 ° C'de 2 min için
    6. 1 mL lb 1,5 mL tüpler ekleyin ve 37 ° C'de en az 45 dakika için antibiyotik direncinin fenotipik ifade sağlar
    7. Hücreleri 3.500 x g 5 min için de spin, 1 mL süpernatant atmak ve kalan süpernatant hücrelerde resuspend.
    8. Hücreleri plakalar üzerinde uygun antibiyotiklerle plaka ve gecede 37 ° C'de kuluçkaya
  9. Vektörel çizimler (örneğin, vektör ve Ekle özel primerler kullanılarak PCR ile) DNA ekleme başarılı entegrasyonu ile yataklık transformants tanımlayın.
  10. Sanger tarafından DNA dizisi doğrulamak sıralama.
    Dikkat: aynı astar için adım 5,9 kullanılan sıralama için kullanmayın.

6. tüp bebek ve/veya içinde vivo deneyler için inşa vektörel çizimler kullanarak

  1. İn vivo deney
    Not: Bu vahşi türü/mutasyona çoğu düzenleme karakterize etmek için RNA ifade etmek için bir vektör kullanmanın bir örneği olduğunu. Western Blot üzerinde daha fazla bilgi için bkz:8.
    1. E. coli K12 suşları inşa vektörel çizimler ile uygun ortamda büyümeye ve gerekirse ifade teşvik. Santrifüjü tarafından hasat örnekleri.
    2. Örnekleri Sodyum Lauryl Sülfat-polyacrylamide jel elektroforez (SDS-sayfa) hücre topakları SDS örnek arabellek x 1 çözülerek hazırlamak (62,5 mM Tris-HCl pH 6.8, % 2.5 SDS, %0,002 bromophenol mavi, %5 β-mercaptoethanol, % 10 gliserol) ve kaynatın 5 95 ° c Min.
      Not: Bir jel döküm veya piyasada bulunan prekast jel kullanımı mümkündür. İkinci sonuçları Şekil 3 ' te (Tablo reçetesi) sunulan kullanılmıştır.
    3. 107 hücreleri her örneği ayrı Wells (protein merdivenle dahil) yükleyin ve proteinler (yaklaşık 45 dk) ayrılır kadar jel 200 V çalıştırın.
    4. Proteinler bir selüloz-zar 80, yarı kuru havalesiyle üzerine leke mA 1 h için.
    5. Membran proteinleri (örneğin, % 5-1 x Tween 20-Tris arabelleğe alınmış serum fizyolojik (TTBS) arabellekte çözünmüş Süttozu) karışımı ile engelleyin.
    6. Faiz (örneğin, GFP, bayrak veya HIS öğesini protein) protein hedef ve nazik ajitasyon ile 1 h için kuluçkaya (1 x TTBS arabellekte çözünmüş) birincil antikor ekleyin.
    7. Membran ilişkisiz antikorlar kaldırmak için 1 x TTBS içinde 10 dakika yıkayın. İki kez daha tekrarlayın.
    8. Birincil antikorlar hedefleyen ikincil antikor (1 x TTBS arabellekte çözünmüş) ekleyin ve algılama için sağlar (örneğin, horseradish peroksidaz (HRP)-Birleşik ikincil antikorlar. Nazik ajitasyon ile 1 h için kuluçkaya.
    9. Membran ilişkisiz antikorlar kaldırmak için 1 x TTBS içinde 10 dakika yıkayın. İki kez daha tekrarlayın.
    10. İkincil antikorlar ile uyumlu bir teknik ile membran (HRP Birleşik ikincil antikor kullandıysanız Örneğin, kuluçka sonra luminol kaynaklı bir Kemiluminesan ile düşsel tarafından) gözünün önüne getir.
  2. İn vitro deney
    Not: Bu vektör şablon olarak tüp bebek RNA transkripsiyonu için RNA-protein etkileşimleri karakterize kullanmanın bir örneği olduğunu. Emsan hakkında daha fazla bilgi için bkz:9.
    1. Tüp bebek tutanaklar bir T7 vitro transkripsiyon kiti (Malzemeler tablo) ve adım 5 vektörlerinden şablon olarak kullanarak olun.
    2. Tarafından sayfası RNA transkript jel denaturing % 4.5 7 M üre üzerinde ayrı ve RNA elektro elüsyon diyaliz tüpler (Tablo reçetesi) tarafından doğrudan jel ayıklayın.
    3. Etiket RNA (örneğin, γ -32ile P-ATP radiolabeling T4-polinükleotit kinaz (Tablo reçetesi) kullanarak ve tekrar içeren sütunlar (Tablo reçetesi) arındırmak.
      Dikkat: radyoaktif madde ile çalışmaya başlamadan önce yerel radyasyon emniyet amiri ile başvurun.
    4. Etiketli-RNA bağlama arabellek (20 mM Tris, pH 8, 100 mM KCl, 1 mM MgCl2, 1 mM dithiothreitol (DTT)) x 1 ayrı reaksiyonlarda protein konsantrasyonları artan ile karıştırın.
      Not: sonuçlarında sunulan (Şekil 4), 2 nM radiolabeled csgD mRNA bir gradyan 0-2 µM Hfq protein (monomer konsantrasyon) ile karışık oldu.
    5. Protein ve RNA bir sigara denaturing polyacrylamide jel hibridizasyon mix yüklemeden önce melezlemek ve 1,5 saat için jel 200 V'de çalıştırmak için izin verir.
    6. 6.1.3 adımından etiketleme ile uyumlu bir teknik ile jel görselleştirin. (radiolabeling uygulandıysa Örneğin, phosphoimaging tarafından).
    7. Bir görüntü işleme programı ötelenen bantları göreli yoğunluğunu ölçmek ve uygun bir eğri (sigmoidal) için bir grafik kullanarak veri ve veri analiz yazılımı (Malzemeler tablo). Monte eğri dayalı, ayrılma sabit (Kd) değerleri otomatik olarak yazılım ile belirlenebilir.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

RNA etkileşimleri ile ilgili çoğu, düzenleme, csgD, bir çift vektör Kurulum seçildi araştırmak için: bir csgD ifade etmek için mRNA ve başka bir küçük kodlamayan RNA McaS ifade etmek için. csgD bir arabinoz indüklenebilir orta-kopya plazmid kloramfenikol direnci ile olan pBAD33 içine klonlanmış ve McaS izopropil β-D-1-thiogalactopyranoside (IPTG) indüklenebilir düşük kopya plazmid olan mini R1 pNDM220, klonlanmış ile ampisilin direnç. Vahşi türü csgD ya...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

Site yönettiği mutagenesis farklı uygulamaları geniş bir dizi var ve burada, bir içinde vivo ve tüp bebek deney temsilcisi sonuçlarından nasıl biyolojik sonuçlar yöntemi kullanarak yapmak için örnek olarak dahil edildi. Site yönettiği mutagenesis uzun süre RNA etkileşim çalışmaları için altın standart olmuştur. Aşağı akım deneyleri ve deneyler gen ürünlerinde fonksiyonları içinde belirli DNA siteleri ve onların önemi hakkında sonuçlara (örneğin, Batı leke veya Emsan) ile ilgili mutasyonlar tanıtımı ile birlikte teknik gü...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

Yazarlar hiçbir rakip ilgi bildirin.

Teşekkürler

Yazarlar Güney Danimarka Üniversitesi açık erişim ilkesi hibe teşekkür etmek istiyorum.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
MerckG6532'deüretilen anti-GroEL antikoruBirincil antikor
Azure c200AzureNAJel görüntüleme iş istasyonu
Özel DNA oligoMerckVC00021
DeNovix DS-11Nükleik asit ölçümleri içinDeNovixNA
DNA Jel Yükleme Boyası (6X)Thermo ScientificR0611
Etidyum bromür çözeltisi %1Carl Roth2218.1
GeneJET Jel Ekstraksiyon KitiThermo ScientificK0691
GeneRuler DNA Merdiven KarışımıFermentasSM0333
Gerard GeBAflex tüp MidiGerard BiotechTO12Elektro elüsyon için diyaliz tüpleri
MEGAscript T7 Transkripsiyon KitiInvitrogenAM1334
Mini-Sub Hücre GT HücresiBio-Rad1704406Yatay elektroforez sistemi
Fare MerckF3165'teüretilen monoklonal ANTI-FLAG M2 antikoruantikor
Fare İmmünoglobulinleriDako SitomasyonuP0447HRP konjuge ikincil antikor
NucleoSpin miRNAMacherey Nagel740971RNA saflaştırması
NuPAGE %4-12 Bis-Tris Protein JelleriThermo ScientificNP0323BOXProtein ayırma için Bis-Tris jelleri
Phusion HF Tamponlu Yüksek Kaliteli PCR Master KarışımıNew England BiolabsM0531SDNA polimeraz
PowerPac HC Yüksek Akım Güç KaynağıBio-Rad1645052
Tavşan İmmünoglobulinleriDako CytomationP0448HRP konjuge ikincil antikor
SeaKem LEAgarose Lonza50004
SigmaPlotSystat Software IncNAGrafik ve veri analizi yazılım aracı
T100 Termal DöngüleyiciBio-Rad1861096PCR makinesi
T4 DNA ligazNew England BiolabsM0202Ligaz
T4 Polinükleotid KinazNew England BiolabsM0201S
TAE Tampon (Tris-asetat-EDTA) (50X)Thermo ScientificB49
Tavşan Spektrofotometre Birincil

Kaynaklar

  1. Bouvier, M., et al. Small RNA binding to 5' mRNA coding region inhibits translational initiation. Molecular Cell. 32 (6), 827-837 (2008).
  2. Jorgensen, M. G., et al. Small regulatory RNAs control the multi-cellular adhesive lifestyle of Escherichia coli. Molecular Microbioly. 84 (1), 36-50 (2012).
  3. Antal, M., et al. A small bacterial RNA regulates a putative ABC transporter. The Journal of Biological Chemistry. 280 (9), 7901-7908 (2005).
  4. Andreassen, P. R., et al. sRNA-dependent control of curli biosynthesis in Escherichia coli: McaS directs endonucleolytic cleavage of csgD mRNA. Nucleic Acids Research. , (2018).
  5. Thomason, M. K., et al. A small RNA that regulates motility and biofilm formation in response to changes in nutrient availability in Escherichia coli. Molecular Microbioly. 84 (1), 36-50 (2012).
  6. Lorenz, T. C. Polymerase chain reaction: basic protocol plus troubleshooting and optimization strategies. Journal of Visualized Experiments. (63), e3998(2012).
  7. JoVE Science Education Database. Basic Methods in Cellular and Molecular Biology. Molecular Cloning. Journal of Visualized Experiments. , Cambridge, MA. (2018).
  8. JoVE Science Education Database. Basic Methods in Cellular and Molecular Biology. The Western Blot. Journal of Visualized Experiments. , Cambridge, MA. (2018).
  9. JoVE Science Education Database. Biochemistry. Electrophoretic Mobility Shift Assay (EMSA). Journal of Visualized Experiments. , Cambridge, MA. (2018).
  10. Kunkel, T. A. Rapid and efficient site-specific mutagenesis without phenotypic selection. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 82 (2), 488-492 (1985).
  11. Laible, M., Boonrod, K. Homemade site directed mutagenesis of whole plasmids. Journal of Visualized Experiments. (27), (2009).
  12. Wells, J. A., Vasser, M., Powers, D. B. Cassette mutagenesis: an efficient method for generation of multiple mutations at defined sites. Gene. 34 (2-3), 315-323 (1985).
  13. Cong, L., et al. Multiplex genome engineering using CRISPR/Cas systems. Science. 339 (6121), 819-823 (2013).
  14. Mali, P., et al. RNA-guided human genome engineering via Cas9. Science. 339 (6121), 823-826 (2013).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Etiketler

PCR AmplifikasyonuJel ElektroforeziWestern BlottingEMSA AnaliziDNA KlonlamaPrimer Tasar mTE Tamponu SaklamaAgaroz Jel
Site yönettiği Mutagenesis in Vitro ve Escherichia Coli etkileşimlerde RNA ile örneği Vivo deneyler için
Bize Ulaşın
Kütüphaneye Öner

Gizlilik

Kullanım Koşulları

Politikalar

Telif Hakkı © 2026 MyJoVE Corporation. Tüm hakları saklıdır.