Kan numuneleri, Ispanyolca mevzuatına (Real Decreto de Biobancos 1716/2011) ve yerel etik komitelerinin onayı uyarınca Instituto de Investis Biomédica Sant Pau biobank 'tan alınmıştır. Hayvansal dokularla yapılan çalışmalar, laboratuar hayvanlarının bakımı ve kullanımı için kurumsal yönergelere uygun olarak (Avrupa Toplulukları Konseyi Direktifi 86/609/EEC), Hayvan deneyi Etik Komitesi tarafından kurulan PRAAL-PCB.
1. tahlil için biyolojik numunelerin hazırlanması.
DIKKAT: Bu protokol, Iş güvenliği ve sağlık Idaresi (OSHA) kan kaynaklı patojenler standardına (29 CFR 1910,1030), Avrupa Parlamentosu 'nun 2000/54/EC Direktifi ve 18 Eylül 2000 Konseyi veya eşdeğer düzenlemeler. Buna ek olarak, biyolojik numuneler biyolojik olarak aktif araştırma kimyasal bileşiklerin izlerini içerebilir ve protokol bu tür bileşiklerin daha fazla manipülasyon gerektirebilir. Denemenin başlangıcından önce kullanılan bileşiklerin güvenlik veri sayfasını (SDS) gözden geçirin ve yeterli kişisel koruyucu ekipman (PPE) kullanımı da dahil olmak üzere araştırma merkezinde kurulan tüm geçerli güvenlik önlemlerini kesinlikle gözlemlemek. Uygun koruyucu giysiler giyin ve deney süresince uygun kalkanı kullanın. Uygun atık konteynerlerde (biyolojik/sitotoksisik atık) kalıntıları atın.
Not: Bu protokol, hücreler veya KDM1A inhibitörü ile tedavi edilen konuların örnekleri ile başlar ve onların tedavi edilmemiş veya araç/plasebo tedavi kontrolleri3.
- Araç veya KDM1A inhibitörü içinde vitro ile tedavi edilen hücreler
- Süspansiyonda yetiştirilen hücreler için, 10 mL kültüründe, süspansiyonları temiz 15 mL konik tüplere aktarın ve 1.1.3 ' e geçin.
- Yapışan hücreler için (75 cm2 flsorunda yetiştirilen), ortamı Flask 'dan çıkarın ve 4 ml PBS kullanarak kısaca yıkayın. 0,5% Trypsin-ED2-5 ta 1,5 mL (tripsinizasyon koşulları değişebilir, hücre hattı için sağlayıcı önerileri takip), 4 mL PBS ekleyin ve temiz 15 mL konik tüplere hücreleri transfer kullanarak kendi gemilerin hücreleri ayırın.
- Tüpleri bir tezgah üstü santrifüjte yerleştirin ve 4 °C ' de 400 x g 'de 5 dakika santrifügasyon ile hücreleri toplayın. Supernatant çıkarın, bir micropipet kullanılarak dağıtılan 1 ml PBS içinde Pelet pelletini ve 1,5 ml microsantrifüz tüp içine süspansiyon transfer.
- Numuneleri bir mikrotüp Santrifüjüne takın ve 4 °C ' de 400 x g 'de 5 dakika santrifüj yapın. PBS 'i bir mikropipet ile aspirasyon ile çıkarın ve peletlerle buzun üzerinde tutun ve adım 2 ' ye geçin; veya kuru buz üzerinde Pellet dondurmak ve onları saklamak-80 °C adım 3 kadar.
- Araç/plasebo veya KDM1A inhibitörü ile tedavi edilen konularda veya hayvanlardan örnekler
- Dokular: küçük, ≈ 1 cm3 adet bir neşter kullanarak doku kes. Sıvı N2 ' de doku parçalarını bir Dewar konteynırı içinde dondurur ve adım 3 ' e kadar-80 °C ' ye saklayın.
- Polimorfik kan mononükleer hücreler (PBMCs): Seyreltmeli 10 mL taze kan (süreç maksimum 2 kan çekilmesinden sonra h) K2toplanan-EDTA tüpler bir 50 ml konik tüp PBS 2 hacimleri ile. Üreticinin talimatlarına göre ticari olarak elde edilen PBMC ayırma tüpleri kullanarak PBMCs kan izole. Buzun üzerinde Pelet tutun ve adım 3,2 devam; veya kuru buz üzerinde Pellet dondurmak ve onları saklamak-80 °C adım 3 kadar.
Not: 20 ila 50 μL ıslak hücreli Pelet, hücre boyutuna bağlı olarak ≈ 1 x 107 hücre içerir. 10 ml sağlıklı insan kanından elde edilen ıslak PBMC Pelet ≈ 20 μl hacmine sahiptir ve ≈ 1 x 107 pbmcs içerir. doku veya hücre pelalları 6 aya kadar-80 º c 'de depolanabilir.
2. çözüm hazırlığı
- Hazırlamak 2 μM OG-881 çalışma solüsyonu: 20 mm biyotinlenmiş Probe OG-881 stok çözeltisi 10 μL tek kullanımlık bir kısım alın 4 °c buzdolabı dışarı ve 10 dakika için oda sıcaklığında (RT) bırakın. OG-881 Stock broyler 'un seri seyreltilmesi ile 2 μM çalışma çözümünü hazırlayın PBS 'de iyon, filtre uçları ile bir mikropipet kullanarak ve farklı seyreltme adımları arasındaki ucu değiştirerek.
- 10X proteaz inhibitörü hazırlayın: 1 mL PBS 'de 1 tableti bir mikrosantrifüj tüpünde çözülür.
- İstenen hacmi hazırlayın 1x Cell liziz tampon ile 25 nM OG-881 chemoprobe. Her mL için, mix 100 μL ticari olarak elde edilen 10X Cell liziz tampon, 150 μL 10X proteaz Inhibitörü, 12,5 μL 2 μM OG-881 ve 737,5 μL tip 1 çift distile su.
- İsteğe bağlı olarak 1x Cell liziz tamponunun istenilen hacmini hazırlayın ama 25 nM ORY-1001 yerine OG-881 gibi adım 2,3. Daha az güçlü inhibitörler kullanılabilir ama yüksek konsantrasyonlar gerektirebilir, pozitif kontrol kullanımı için 100% inhibisyonu (bkz. Adım 3,5).
Not: OG-881 veya KDM1A inhibitörü stok çözümleri ile çözümlerin veya numunelerin istenmeyen kontaminasyonunu önlemek için uygun önlemleri alın. İstenen hacmi hesaplamak için 1x hücre liziz tampon ile 25 Nm OG-881, varsayalım 400 μL başına gerekli olduğunu 40 mg becerdin doku, veya 200 μL başına 107 hücrelerin ıslak Pelet.
3. yerli protein ekstraksiyon
- Dokulardan:
- Kuru buzda soğutulmuş bir harç ve pestili ile ≈ 1 cm3 küp dondurulmuş doku sindirmek ve homojenize. ≈ 40 mg doku tozu içeren tek kullanımlık şişelerde örneklerin aliquot, her zaman çözülme kaçının. 3.1.2 adıma geçin. -80 °C ' de anında işleme veya mağaza için.
- Resuspend 40 mg toz doku 400 μL 1x hücre Liziz tampon ile 25 nM OG-881, Vortex 10 s, ve örnek en az beş kez bir 18-gauge künt şırınga iğne kadar dokusunun lizit elde edilir ve turuncu süspansiyon için bulanık bir ışık sarı Elde. Kabarcık oluşumundan kaçının.
- Adım 3,3 devam
- Hücre pelletinden (PBMCs ve hücre hatları):
- ≈ 1 x 107 hücrelerinin 200 μL 'de 25 Nm OG-881 içeren 1x hücreli liziz tamponunun bir peleti resuspend. Örnekleri kısa bir süre Vortex ve 5 dakika boyunca buzda tutun.
- 45 kHz 'de her biri 20 s 'Lik 3 darbeleri kullanarak bir sonicoratörün örneklerini sonikat; Bakliyat arasında 20 s için buz üzerine yerleştirin.
Not: biyolojik numuneler 1x hücre liziz tamponunda resuspended olarak, sürecin geri kalanı boyunca buz üzerinde tutun.
- Numuneleri ek 5 dakika boyunca buzda tutun, kısa bir süre Vortex ve 4 °C ' de ön soğutmalı santrifüjte 14 000 x g 'de 10 dakika boyunca numuneleri santrifüjleyin.
- 1 mL mikropipet kullanarak, Süpernatantları taze 1,5 mL mikrosantrifüjlere aktarın ve 2 saat boyunca buzun üzerine bırakın. Adım 4 ' e devam edin.
- İsteğe bağlı olarak,% 100 hedef etkileşimi simüle etmek için pozitif bir denetim aşağıdaki gibi hazırlanabilir:
- Hücre Pelet veya toz doku bir araç ya da tedavi edilmemiş (predose) örnek 1x hücre Liziz tampon ile 25 nM ORY-1001 ve süreç olarak adım 3,1 için 3,3 özetlenen olarak gerekli hacminde resuspend.
- Taze 1,5 ml mikrosantrifüjü tüpler içine olumlu kontrol süpernatanlarında aktarmak ve 1 h. ORY-1001 için buz üzerinde bırakın isteyerek KDM1A inhibe ve chemoprobe bağlayıcı blok.
- Pozitif kontrol süpernatant (40 mg doku örneğinden üretilen pozitif kontrol için hacim) veya 2 μm OG-881 çalışma çözeltisi 2,5 μL (107hücreli örnekteki pozitif kontrol için hacim) elde etmek için 5 μL 2 μm OG-881 çalışma çözümü ekleyin diğer örneklerle aynı OG-881 konsantrasyonu ve 2 saat içinde buzda bırakın. Adım 4 ' e devam edin.
4. Bradford tahlil kullanarak yerli protein ölçümü
- H2O tip 1 çift distile su ile ticari kaynaklı Bradford protein assay reaktünü 5 kez seyreltin. Numune ve standartların toplam miktarı için gerekli reaktif hacmini hesaplayın (örnek başına 1 mL veya standart + 5 mL fazla hacim).
- Sığır serum albumin (BSA) standart eğrisi için, 1 mL seyreltilmiş Bradford protein assay çözeltisi (boş) ve seyreltilmiş Bradford protein assay çözeltisi 995 μL ile yedi mikrosantrifüjlü boru ile bir mikrosantrifüj Tüp hazırlayın. BSA standartlarının her biri için 5 μL (125 ila 2.000 μg/mL arasında değişen konsantrasyon) 7 mikrosantrifüj tüplerin her birini ekleyin ve tüpleri birkaç kez hafifçe ters çevirerek karıştırın. RT 'de 5 dakika boyunca inküye yapın.
- Seyreltilmiş standartları küvetler 'e aktarın ve 280 nm 'de bir spektrofotometrede boş ve sığır serum albumin standart örneklerinin od değerini okuyun.
- Biyolojik numuneler için, 1 mL seyreltilmiş Bradford protein assay çözeltisi (boş) ile bir mikrosantrifüjle Tüp hazırlayın ve 999 μL 'Lik, seyreltilmiş Bradford protein assay reakajının, nicelik olması gereken numuneler olarak birçok mikrosantrifüjle tüpleri yapın. Otomatik P2 mikropipet kullanarak, 3. adımda hazırlanan 1 μL doğal protein özü ekleyin ve her mikrosantrifüjte tüpün içine hafifçe çevirerek tüpleri birkaç kez karıştırın. Numuneleri RT 'de 5 dakika içinde kulyatın.
- Birimler için küvetler aktarmak ve 280 nm bir spektrofotometrede numunelerin od okuyun.
- Tercihen, adım 5 ' e hemen geçin. Alternatif olarak, yerel protein özleri-80 °C ' ye adım 5 ' e kadar saklayın. Dondurmayı çözme döngüleri kaçının.
5. Toplam ve ücretsiz KDM1A belirlenmesi için Işıksaçan ELISAs
Not: Laboratuvar sıcaklığını 23-24 °C ' de (RT) sabit tutun.
- KDM1A antikor veya streptavidin yakalama ile mikrotiter plakaları kaplama
- Toplam KDM1A ELıSA: her plaka için, PBS 'de 2 μg/mL 'Lik son konsantrasyona 10 mL KDM1A yakalama antikor hazırlayın. 100 μL plakanın her bir kuyusu içine aktarın.
- Ücretsiz KDM1A ELISA: her plaka için, PBS 'de 10 μg/mL 'de 10 mL streptavidin hazırlayın. 100 μL plakanın her bir kuyusu içine aktarın.
- Toplam ve ücretsiz KDM1A ELıSA plakalarını yapışkan film ile üst üste mühürleyin ve tabakaları gece 4 °C ' de buzdolabında tutınız.
- Plakaları yıkama ve engelleme
- Buzdolabının tabakları alın ve onları kullanmadan önce RT 45 dk civarında için doğrultma izin.
- Hazırlamak 1.000 mL yıkama tampon (0,1% PBS içinde ara) ve 50 mL engelleme tampon (1% BSA içinde PBS) plaka başına.
- Yıkama tampon ile plakaları 3 kez yıkayın. Bu ve sonraki adımlarda, her yıkama adımının ardından kağıt havluların üzerine plakaya dokunarak kalan solüsyonu çıkarın.
- Her iki plakada her iki plaka için de blok tamponu 200 μL ekleyin, hem yapıştırıcı film ile hem de 2 saat RT 'de inküye yapın.
- Biyolojik numune hazırlama
- Adım 3 ' ün sonunda elde edilen doğal protein ekstrelerini PBS kullanarak uygun konsantrasyona seyreltin. Önerilen konsantrasyon biyolojik örnekteki KDM1A ifade seviyesinin işlevinde farklılık gösterecektir. Uygun aralıkları örnekleri (1) hücre Pellet: 0,5-10 μg başına. (2) PBMCs: 5-30 μg başına iyi. (3) pulverize doku (beyin, akciğer, cilt): 20-100 μg başına. Preparat sırasında örnekleri buzda tutun. Mümkün olduğunda, teknik triplicate örnek analizleri çalıştırın.
- İnsan rKDM1A kullanarak standart eğrisi hazırlayın:
- KDM1A standart çalışma çözümünü hazırlamak için, 25 pg/μL 'nin son konsantrasyonu için rKDM1A uygun hacminin pipet, 2 μM OG-881 75 μL ekleyin ve 15 mL 'Lik Falcon tüpünde toplam 6 mL hacmine 1 x PBS ile doldurun. KDM1A standart çalışma çözümünü 1 saat boyunca buzda tutun ve 15 mL şahin tüpünü her 20 dakikada bir birkaç kez tersine çevirerek çözümü nazikçe karıştırın.
- 1,5 mL mikrosantrifüjli tüplerde KDM1A Standart seyreltme serilerini Tablo 1 ' e göre hazırlayın (Standart hazırlama), 2 96 iyi mikrotiter plakalarının triplicate analizi için yeterli hacimli.
| STANDART SERI | KDM1A standart çalışma çözümü (μL) | |
| (PG KDM1A/Well) | PBS (μL) |
| C için 2500-* | 800 | - |
| 2500 | 800 | - |
| 1750 | 560 | 240 |
| 1250 | 400 | 400 |
| 750 | 240 | 560 |
| 250 | 80 | 720 |
| 25 | 8 | 792 |
| 0 | 0 | 800 |
| Not: | | |
| (1) her seyreltme hazırlanan hacim test triplicate 2 plaka çalıştırmak için yeterlidir. |
| (2) Önerilen Aralık arasında 2,5 ve 5.000 pg/iyi |
| * Negatif kontrol C-KDM1A algılama antikor olmadan |
Tablo 1: Standart hazırlık. Standart KDM1A proteini hazırlamak için, KDM1A standart çalışma çözeltisi ve PBS 'nin belirtilen hacimlerini sekiz düzgün etiketli 1,5 mL mikrosantrifüjli tüplere pipet etmek.

Tablo 2: derin kuyu plaka tasarımı. Standartlar (mavi) ve örnekleri (sarı) adım 5.4.2. mavi (Standart) ve sarı (numune) okları yönünde aşağıdaki ELISA plakaları içine yükleme kolaylaştırmak için derin kuyu plaka yansıyan pozisyonlara pipetli edildi. Bu dosyayı indirmek Için lütfen buraya tıklayın.

Tablo 3: ELıSA plaka tasarımı. Tahlil plakası rekombinant KDM1A hedef (mavi) azalan miktarlarda standart eğri içerir; sarı biyolojik numune (ler); ve karşılık gelen negatif kontroller (örnekleri içerir, ancak birincil algılama antikor) beyaz, derin kuyu plaka ELıSA plakaları üzerinde yüklenecek. Boş (Standart eğri 0) tüm yakalama ve algılama reaktifleri içerir, ancak örnek yok. Bu dosyayı indirmek Için lütfen buraya tıklayın.
- ELISA
- (Adım 5.2.4 devam eder.) 2 saat inkübasyon yapıldıktan sonra, engelleme tamponunu atın ve plakaları yıkama tamponunu ile yıkayın.
- Tablo 2 ' de (derin kuyu plaka tasarımı) gösterilen plaka dağılımını takiben uygun seyreltilmiş numuneleri (adım 5,3 ' dan gelen doğal protein özler ve standart eğrisi) bir soğutucu 96 derin iyi saklama bloğuna aktarın.
- Tablo 3 ' te (ELISA Plate Design) gösterilen plaka dağılımının ardından toplam ve serbest ELISA plakalarının pipetleme 100 μL numune/kuyusu içinde buz üzerinde bu bloğu tutun.
- RT 'de 1 h için inküye, örnekleri atın ve yıkama tamponu ile 5 kez plakaları yıkayın.
- Hazırlama 20 mL tavşan Anti-KDM1A algılama antikor at 0,125 μg/mL engelleyici tampon, eklemek 100 μL her bir plaka içinde iyi test, dışında kuyu negatif kontrolleri karşılık C-. Plakayı üst-mühürleyin ve RT 'de 1 saat inküye yapın.
- Algılama antikor çözeltisi atın ve yıkama tampon ile plakaları 6 kez yıkayın.
- Hazırlamak 25 mL ikincil keçi Anti-tavşan antikor HRP bir seyreltme için 1:5000 engelleme tampon, eklemek 100 μL başına iyi mikrotiter plakaları; ve RT 'de 1 saat inkübe.
-
Kemiluminesans algılama
- Adım 5.4.7 sonundan önce 30 dk. ve yumuşak ışık koşullarında, luminol-Enhancer ve peroksit solüsyonun eşit parçalarını (10,5 mL: 10,5 mL, 2 plaka için) sarı bir şişede karıştırın ve RT 'de bırakın.
Not: luminol çalışma çözümünü kehribar şişesinde tutun ve herhangi bir yoğun ışığa uzun süreli maruz kalmamak. Tipik laboratuar aydınlatmaya kısa süreli maruz kalma, çalışma çözümüne zarar vermez.
- Luminesans ölçümden en az 20 dakika önce, 25 °C ' de Mikroplaka okuyucusunu açın ve 1.000 MS entegrasyon süresi ve 150 MS kapatma süresi için okuma ayarlayın. Parametre ayarları, cihazın fonksiyonunda optimizasyon gerektirebilir.
- Adım 5.4.7 in inkübasyon 1 h sonra, ikincil antikor çözeltisi atın ve yıkama tampon ile 6 kez plakaları yıkayın.
- Adım 5.5.1 ' de hazırlanan luminol çalışma çözeltisi (kemiluminesans substrat) başına pipet 100 μL. Çok yavaş pipet ve kabarcık oluşumundan kaçının. Çözelti ilavesi ve plakaların Luminesans ölçümü ilavesi arasındaki süreyi kontrol etmek için bir zamanlayıcı kullanın ve iyi bir inter assay yeniden üretilebilirliği elde etmek için bu zaman sabit tutun.
- Üst-mühür plakaları ve 500 x g için RT 45 s için bir plaka santrifüjte kalan kabarcıklar ortadan kaldırmak için santrifüj. 100 RPM 'de bir plaka çalkalayıcı üzerinde 1 dakika için plakaları inküye.
- Plakayı okuyucunun içine yerleştirin ve 25 °C ' de (yapışkan film olmadan) sıcaklığı stabilize etmek için 3 dakika bırakın. Her zaman ücretsiz ELISA plakası ile başlayın.
- Her ELISA plaka tahlil (ücretsiz ve toplam KDM1A) göreli lüminesans üniteleri (RLU) okuyun.
- Kaydet ve RAW verileri Excel dosyaları daha ayrıntılı analiz için RAW RLU değerleri kopyalayın.
6. hedef etkileşimi hesaplanması
- Bir elektronik tablo yazılımında, SX ve referans NUMUNELERININ RLU ücretsiz ve RLU toplam değerlerini hesaplayın (tedavi edilmemiş, araç veya ön doz örneği) aşağıda ayrıntılı olarak teknik çoğaltır RAW verilerinden:
- Bireysel RAW Rluı Total ve RAW Rluı ücretsiz verileri boşluklar, standart eğri, negatif kontroller C-ve biyolojik örnekler (SX ve ref) analiz veri sayfasına (örn., Excel) girin. Ayrıca, veri sayfasındaki standart eğri 'den KDM1A miktarlarını (PG cinsinden) girin.
- Ham ortalama RLU, standart sapma σRLUve her teknik çoğaltma DataPoint Için bireysel RAW Total ve RAW ücretsiz Rluı verilerinden varyasyon CVRLU katsayısı hesaplayın.
- Outlier eliminasyonu uygulayın (triplicates için örnek): her biri için RAW RLU toplam ve RAW RLU ücretsiz veri noktası Rluı teknik bir triplicate DataPoint, uygulamak Grubbs ölçütleri ne zaman için CV triplicate > 0,15 ve tek şüpheli RAW RLU değeri Reddet Tesis
,
Bu nedenle Z = 1,148 n = 3 ve 90% güven aralığı (CI) için.
- Outlier eleme uygulanmışsa, yeniden hesaplamak RAW ortalama RLU, standart sapma σ RLU ve CVRLU olmayan reddedilen (NR) RAW rlui Total ve RAW rluı ücretsiz değerleri her DataPoint için.
- Arka plan düzeltmeyi uygulayın: ortalama RLU ücretsiz ve RLU toplam değerleri her standart örnek için hesaplayın ve her örnek SX ve başvuru örnek ref olarak:

- Verileri aşağıdaki gibi grafiksel olarak temsil eder:
- RLUserbest ve RLUToplam değerleri (Y ekseni) bir çubuk grafikte örnek kimlik (X ekseni) göreli olarak çizin.
- Ayrıca, ücretsiz ve toplam ölçümler için rKDM1A protein (X-eksen) pg kendi miktarına göre bir dağılım çizim standartlarının RLU değerleri (Y-eksen) çizmek yanı sıra karşılık gelen Lineal eğilim çizgileri ve hesaplamak r2 (kare doğrusal bağıntı katsayısı) değerleri.
- Hedef etkileşimi hesaplayın (TE); Örneğin, her örnekteki KDM1A inhibitörü tarafından KDM1A bağlı olan bir referans örnek REF (tedavi edilmeyen, araç veya ön doz örneği) göreli olarak aşağıdaki gibidir:
- SX ve REF örnekleri için Ortalama RLU ücretsiz değerleri R oranını hesaplayın:

- Ardından, örnek SX 'in hedef ETKILEŞIMI (te) hesaplayın:

İsteğe bağlı: (1) N biyolojik çoğaltma denemeleri gerçekleştirilmiştir, her biri n teknik çoğaltır; önce teknik çoğaltma setleri için TESX hesaplayın. Daha sonra, biyolojik çoğaltma seti için Ortalama TE, SD ve CV değerlerini hesaplayın.
- Tahlil kabul kriterlerinin karşılanması olup olmadığını gözden geçirin: (1) tahlil arka plan kabul edilebilir ve ortalama boş < 0,05 x 107 RLU olduğunu doğrulayın; (2) örnek Auto-Luminescence yok ve negatif kontroller C RLUs-quantification alt sınırı (LLOQ = Mean Blank + 10X SD) altındadır; (3) rKDM1A standart eğrisi doğrusal ve R2 ≥ 0,98; (4) biyolojik numuneler, LLOQ ve 2.500 pg/iyi arasında test yani dinamik ve doğrusal aralıkta düşen RLU değerlerine sahiptir.
Not: 6,1 adımları. 6,4 için. bir matematik veri sayfasında kolaylıkla otomatik olabilir.
- Te değerlerini ve ek istatistiksel değerlendirmeleri grafik gösterimi için tercih edilen bir açık kaynak veya ticari olarak elde edilen istatistik yazılımına TE verilerini dışa aktarın.