Method Article

In vivo Iki foton floresans ömür boyu görüntüleme mikroskobu kullanarak kafa-sabit davranan fareler Içinde bir aktivite, protein kinaz görselleştirme

DOI:

10.3791/59526

⸱

June 7th, 2019

 ,  ,  , 
1Vollum Institute, Oregon Health & Science University

* These authors contributed equally

In This Article

Summary

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bir prosedür protein kinaz görselleştirmek için sunulmuştur baş-sabit, davranan fareler bir aktivite. Gelişmiş A-kinaz aktivite muhabiri, tAKARα, kortikal nöronlar içinde ifade edilir ve kafatası penceresinden görüntüleme için erişilebilir hale gelmiştir. İki foton floresans ömür boyu görüntüleme mikroskopisi, uygulanan lokomotif sırasında PKA etkinliklerini görselleştirmek için kullanılır.

Abstract

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Nöromodüller beyin fonksiyonunda güçlü kontrol sağlar. Nöromodüller sistemlerinin fonksiyon bozukluğu nörolojik ve psikiyatrik bozukluklarla sonuçlanır. Önemini rağmen, hücresel çözünürlük ile nöromodüller olayları izlemek için teknolojiler sadece ortaya çıkmaya başlıyor. Nöromodulatörler, dopamin gibi, norepinefrin, asetilkolin, ve serotonin, onların ilgili G protein-bağlantılı reseptörleri ile nöronal uyarabilirlik modüle için hücre içi sinyal olayları tetikleyici, sinaptik iletişim, ve diğer nöronal fonksiyonları, böylece nöronal ağda bilgi işleme düzenleyen. Yukarıda belirtilen nöromodüller cAMP/protein kinaz A (PKA) yolu üzerine yakınsama. Bu nedenle, tek hücreli çözünürlüğe sahip in vivo PKA görüntüleme, nöronal elektrik faaliyetleri için kalsiyum görüntülemede benzer bir şekilde nöromodüller olayları için bir okuma olarak geliştirilmiştir. Burada, bir yöntem kafa sabit davranan fareler korteks bireysel nöronlar düzeyinde PKA etkinliğini görselleştirmek için sunulmaktadır. Bunu yapmak için, Förster rezonans enerji transferine (FRET) dayanan, tAKARα adlı geliştirilmiş A-kinaz aktivite muhabiri (AKAR) kullanılır. Bu genetik olarak kodlanmış PKA sensörü, DNA plazmidlerinin utero Elektroporasyon (IUE) veya Adeno ile ilişkili virüsün (AAV) stereotaktik enjeksiyonu ile motor korteks haline getirilmiştir. FRET değişiklikleri iki foton floresans ömür boyu görüntüleme mikroskobu (2pFLIM), ışık-saçılma beyin dokusunda FRET sinyali ölçmek için onay FRET ölçümleri üzerinde avantajları sunan kullanılarak görüntülenmiş. Zorunlu lokomotif sırasında PKA etkinliklerini incelemek için tAKARα, hızlı kontrollü bir motorlu koşu bandı üzerinde çalışan veya istirahat eden, uyanık, baş sabit fareler korteks üzerinde kronik kraniyal pencere aracılığıyla görüntülenmiştir. Bu görüntüleme yaklaşımı, ilgili davranışlara bağlı PKA etkinliklerini ve diğer FLIM tabanlı sensörlere in vivo görüntüleme için çalışmak üzere diğer birçok beyin bölgesine geçerli olacaktır.

Introduction

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Neuromodulation, ayrıca yavaş sinaptik iletim olarak bilinen, farklı davranışsal durumlar sırasında beyin fonksiyonu üzerinde güçlü bir kontrol oluşturur, stres gibi, uyarılma, dikkat, ve lokomotasyon1,2,3, 4. önemini rağmen, ne zaman ve nerede nöromodüller olayların yer alır çalışma hala kendi bebeklik içindedir. Nöromodüller, asetilkolin dahil, dopamin, noradrenalin, serotonin, ve birçok nörofobiler, G protein birleştiğinde reseptörleri etkinleştirmek (GPCRs), hangi sırayla sıra tetikleyici hücre içi ikinci haberci yolları zaman çizelgelerin geniş bir pencere ile değişen saniyeye kadar saat. Her nöromodülatör sinyalizasyon olayları ayrı bir dizi tetikler iken, Camp/protein kinaz a (PKA) yolu birçok nöromodüller için ortak bir aşağı yol olduğunu1,5. Kamp/PKA yolu nöronal uyarılabilirlik, sinaptik iletim ve plastisite6,7,8,9düzenler ve bu nedenle, nöronal ağ dinamikleri tunes. Farklı nöronlar veya nöronal türler nöromodüller reseptörlerinin farklı türleri veya seviyeleri ifade çünkü10, aynı hücre içi nöromodüller içinde hücre dışı etkileri farklı nöronlar arasında heterojen olabilir, ve böylece, olması gerekir hücresel çözünürlükte okudu. Bugüne kadar, davranış sırasında bireysel nöronlar in vivo nöromodüller olayları izlemek için zor kalır.

Nöromodülasyonun yer alan dinamiklerini incelemek için uygun bir kayıt modalitesi gereklidir. Mikrodializ ve hızlı tarama döngüsel voltammetri sık nöromodüller serbest çalışma için kullanılır, ancak hücresel olayları izlemek için uzamsal çözünürlük eksikliği11,12. Nüfus görüntüleme13nöronal elektrik aktivitesi için bir vekil olarak kullanılan kalsiyum dinamiklerine benzer, PKA görüntüleme hücresel çözünürlükte nöronal bir nüfus arasında nöromodüller olayları okumak için kullanılabilir. Mevcut protokol, hayvan davranışları sırasında PKA etkinliklerini izlemek için geliştirilmiş A-kinase aktivite muhabirinin (AKAR) kullanımını açıklar. Burada açıklanan yöntem, fizyolojik nöromodüller içeren olayları izleyen temporal çözünürlüğe sahip hücre dışı çözünürlükte nöronal nüfusun eşzamanlı olarak görüntülenmesi için izin verir.

Akars bir donör ve bir PKA fosforilasyon substrat peptid ve bir Forkhead-ilişkili (FHA) alan, alt substrat fosforile serin veya treonin bağlanan bir Acceptor floresan proteinleri oluşur14,15. PKA yolunun aktivasyonu üzerine, AKAR substrat peptid fosforilated olduğunu. Sonuç olarak, FHA etki alanı fosforilated substrat peptid bağlar, böylece yakın yakınlığı içine iki fluorophores getiren, AKAR kapalı devlet olarak anılacaktır. Fosforilated AKAR 'ın kapalı durumu, donör ve alıcı fluorophores arasındaki Förster rezonans enerji transferinin (FRET) artması ile sonuçlanır. Fosforile akars oranı PKA aktivite16düzeyine bağlı olduğundan, biyolojik bir örnekteki fret miktarı PKA aktivite seviyesini ölçmek için kullanılabilir16,17,18, 19,20.

AKARs 'ın erken versiyonları, öncelikle iki renkli onay görüntüleme14için tasarlanmıştır. Beyin dokusuna daha derin görüntüleme yapılırken, onay yöntemi, dalga boyu bağımlı ışık saçılma17,18,21nedeniyle sinyal distorsiyonu muzdarip. Aşağıda anlatıldığı gibi, floresans ömür boyu görüntüleme mikroskopisi (flim) Bu sorunu ortadan kaldırır, çünkü flim sadece florophore18,21tarafından yayılan fotonları ölçer. Sonuç olarak, FRET 'in FLıTM ölçümü doku derinliği17' den etkilenmez. Buna ek olarak, bir "karanlık" (yani, düşük kuantum verimi [QY]) alıcı fluorophore varyantı kullanılabilir. Bu, ikinci bir sensördeki eşzamanlı görüntüleme veya morfolojik Marker17,19,20ile ortogonal nöronal özelliklerin çoğullu ölçümünü kolaylaştırmak için bir renk kanalını serbest bırakır.

FLM görüntüleme bir fluorophore heyecanlı durumda, yani, floresan ömrü18harcıyor zaman nicelik. Bir fluorophore zemin devlet, böylece heyecanlı devletin sonuna dönüş, genellikle bir foton emisyonu ile koncomitates. Bireysel bir heyecanlı molekül için bir foton emisyon Stokastik olmasına rağmen, bir nüfusun ortalama floresan ömrü bu özel fluorophore bir özelliğidir. Florozların saf nüfusu aynı anda heyecanlı olduğunda, ortaya çıkan floresan tek bir üstel çürüme takip edecektir. Bu üstel çürümenin zaman sabiti, genellikle floresan proteinleri için bir ila dört nanosaniyeden oluşan ortalama floresans ömürüne karşılık gelir. Bir heyecanlı donör fluorophore zemin devlet dönüş de FRET tarafından ortaya çıkabilir. FRET varlığında, donör fluorophore floresans ömrü azalır. Fosforlu AKARs, nispeten daha uzun donör floresans ömrünü sergiler. PKA tarafından fosforilasyon üzerine, sensör daha kısa bir ömür sergiliyor çünkü donör ve alıcı fluorophores birbirlerine yakın getirilir ve FRET artar. AKARs nüfusunun floresans ömrünü ölçmek bu nedenle PKA aktivitesinin seviyesini temsil eder.

AKARs 'ın erken versiyonları, tek hücreli çözünürlükte in vivo görüntüleme için başarıyla kullanılmadı. Bu esas olarak, AKAR sensörlerin düşük sinyal amplitüle fizyolojik aktivasyonlarının17' si nedeniyle olur. Son zamanlarda, iki foton floresan ömür boyu görüntüleme mikroskobu (2pFLIM) için mevcut AKAR sensörlerini sistematik olarak karşılaştırarak, alternatif sensörlerin daha fazla gerçekleştirilmesi için FLIM-AKAR denilen bir sensör bulunmuştur. Ayrıca, hedeflenen akars (takars) denilen flim-akar türevleri bir dizi belirli alt hücresel konumlarda PKA etkinliğini görselleştirmek için geliştirilmiştir: mikrotübüller (takarα), sitossol (takarβ), aktin (takarδ), filasentous aktin (takarε), membran (takarγ), ve postsinaptik yoğunluk (tAKARζ). TAKARs arasında, tAKARα 2,7-Fold tarafından norepinefrin tarafından ortaya çıkarılan sinyal genliği arttı. Bu bilgi ile tutarlı olduğunu PKA nöronlar çoğunluğu mikrotübüller için dinlenme durumunda demirlemiş22,23. tAKARα 2pFLIM için mevcut AKARs arasında en iyi oyuncu oldu. Ayrıca, tAKARα birden fazla nöromodüller tarafından saptanan fizyolojik olarak ilgili PKA aktivitesini algıladı ve tAKARα ifadesi nöronal fonksiyonları17değiştirmez.

Son zamanlarda, tAKARα başarıyla kafa sabit davranan fareler17PKA etkinliklerini görselleştirmek için kullanıldı. Bu uygulanan lokomotif yüzeysel tabaka nöronların Soma içinde PKA etkinliğini tetikleyen gösterildi (Katman 1 ile 3, bir derinliğe kadar ~ 300 μm Pia) motor, varil, ve görsel korseleler. Lokomotlama tetiklenen PKA aktivitesi, β-adrenergik reseptörleri ve D1 Dopamin reseptörlerinin sinyallerine bağlı olarak, ancak D2 dopamin reseptör antagonisti tarafından etkilenmez. Bu çalışma, takars 'ın 2pflim kullanarak nöromodülasyon olaylarını izleme yeteneğini göstermektedir.

Geçerli protokolde, uygulanan lokomotif paradigma sırasında baş sabit uyanık fareler içinde PKA aktivite görüntüleme için tüm yöntem altı adımda açıklanmıştır. İlk olarak, geleneksel iki foton mikroskobu 2pFLIM yetenekleri eklenmesi (Şekil 1). İkincisi, motorlu bir koşu bandı inşaatı (Şekil 2). Üçüncü olarak, DNA plazmidlerin utero Elektroporasyon (IUE) veya Adeno ile ilişkili virüsün (AAV) stereotaktik enjeksiyonu ile fare korteksinde takarα sensörünün ifadesi. IUE için ameliyatlar için mükemmel protokoller24,25 ve viral parçacıklar stereotaktik enjeksiyon26 daha önce yayınlandı. Kullanılan anahtar parametreler aşağıda açıklanmıştır. İleri, kraniyal pencerenin montajı. Mükemmel protokoller daha önce kranial pencere cerrahisi için yayımlandı27,28. Standart protokollerden değiştirilmiş birkaç adım açıklanmıştır. Beşinci, performans içinde vivo 2pFLIM. Altıncı, 2pFLIM görüntü analizleri (Şekil 3 ve Şekil 4). Bu yaklaşım, diğer birçok baş-sabit davranışsal paradigmalar ve beyin alanları için kolayca uygulanabilir olmalıdır.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Protocol

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Burada açıklanan tüm yöntemler, Oregon Sağlık ve Bilim Üniversitesi Kurumsal hayvan bakımı ve kullanım Komitesi (ıAYUC) tarafından onaylanmıştır.

1.2pFLIM mikroskop kurulum

  1. Bir foton Zamanlama sayımı modülü (PTCM, malzeme tablosu) yükleyin ve üreticinin kılavuzuna göre bilgisayara (Şekil 1) bağlanın.
    Not: Ptcm genellikle lazer darbe zamanlaması için bir "Senkronizasyon" girişi ve fotomultipler tüpünden (PMT) bir foton girişi alan bir bilgisayar tahtasındadır. Ayrıca iki foton görüntüleme kontrol yazılımından pikseller, çizgiler ve çerçeveler için saat zamanlaması alır. PTCM, bireysel fotonları farklı piksel ve çerçevelere ayırmak için saat sinyallerini kullanır.
  2. Lazer zamanlamasını ölçmek için > 200 MHz bant genişliğine sahip bir fotodiyot ekleyin. Işık yoluna dik olarak yerleştirilen fotodiyot içine lazer ışığın küçük bir kısmını yansıtmak için ışık yoluna standart bir cam lamel magazini yerleştirin (Şekil 1). Fotodiyot çıkışını PTCM 'nin "Senkronizasyon" girişine bağlayın.
    Not: Birçok modern lazerler de lazer zamanlaması çıktı. Bu lazerler için, fotodiyot gerekli değildir ve bir doğrudan PTCM senkron girişine lazer zamanlama çıkışını bağlayabilirsiniz.
  3. Düşük gürültü, hızlı GaAsP PMT (Şekil 1) ile yeşıl kanal PMT 'Nin tAKARα durumunda PMT 'yi değiş tokuş yapın. PMT çıkışını PTCM 'nin sinyal girişine bağlayın.
    1. Konvansiyonel iki foton görüntüleme kanalı ile aynı anda yoğunluğun elde edilmesi durumunda isteğe bağlı bir sinyal bölücü (Şekil 1) ekleyin. PMT çıkışını sinyal Bölücüsü ile Birleştir ve Splitter çıkışını PTCM 'ye ve geleneksel iki foton görüntüleme modülüne bağlayın.
      Not: GaAsP PMTs, konvansiyonel bialkali PMTs 'den daha hızlı tek foton sinyalleri verir ve foton zamanlamasının daha hassas bir şekilde belirlenmesi için izin verir. GaAsP PMTs 'nin bazı modelleri, ortam sıcaklığının altında 10 − 35 °C ' ye kadar soğutulabilir ve karanlık sayılarının saniyede birkaç yüz altında bir seviyeye bastırılmasına izin verir (genellikle ≤ 200 sayar/s). Bu düşük gürültü seviyesi, floresan ömrünü kesin olarak ölçmek için önemlidir, çünkü gürültü foton sayımları floresans ömür eğrisinden kolayca ayırt edilemez veya çıkartılamaz.
  4. Eğer varsa, alıcı fluorophore gelen spektral kontaminasyonu en aza indirir bir bant-Pass floresan emisyon filtresi ekleyin. Örneğin, takarα için, yeşil kanal için 500 Nm ± 20 Nm bariyer filtresi, karanlık (qy ~ 0,07) Sarı floresan protein (YFP)29,30olan Acceptor Sreach 'ten gelen kontaminasyonunu azaltmak için kullanılır. Kontrol yazılımına uygun olarak ve PTCM kullanım kılavuzunda açıklandığı gibi, bireysel görüntü pikselleri, çizgiler ve çerçeveler için saatler gibi zamanlama sinyallerini bağlayın. Uygun veri denetimi ve edinme yazılımını yükleyin.
    Not: Bazı PTCM üreticileri (malzeme tablosu) 2pFLIM görüntüleme için kendi yazılım sağlar. Burada, özel yazılım Flimımage denilen kullanılır, hangi Yasuda Lab tarafından geliştirilen (Max Planck Florida, kişisel iletişim yoluyla). Bu yazılım, belirli iki foton edinme yazılımına (malzeme tablosu) bir eklenti Kullanıcı işlevi olarak işlev görür. 2pFLIM görüntü elde etmek için iki foton görüntüleme sırasında uygun zamanlamayla PTCM ile iletişim kurar ve kontrol eder.

2. Motorlu Koşu bandı inşaatı

Not: Özel yapılı Motorlu Koşu bandı tasarımı Şekil 2' de gösterilir.

  1. Bir köpük silindiri (Ø = 200 mm), ince bir testere ile 150 mm uzunluğa keser. Alternatif olarak, tutkal bir köpük topu iki yarısı birlikte ve dikiş üzerine yer bandı. İsteğe bağlı olarak, silindir üzerinde çekiş artırmak için silindir üzerinde profil ile bir kauçuk Mat tutkal.
  2. Silindir düz tarafında silindir merkezi üzerinden bir 1/4 inç çapı delik matkap veya köpük topu kullanılırsa topun her yarısında ortasında bir 1/4 inç çapı delik matkap.
  3. Bir 1/4 inç çapı çelik aks delik üzerinden yükleyin. Köpük silindir/topu aks için köpük uyumlu tutkal kullanarak tutkal. İsteğe bağlı olarak, iki esnek şaft kavramaları değiştirin (1/4 inç iç çapı) köpük silindir/topu aks bağlantı güçlendirmek için.
    Not: Birçok ortak yapıştırıcı köpük çözünebilir unutmayın.
    1. Her Şaft bağlantısı için, şaft bağını düz tarafına ve dikdörtgen metal plakasının (0,7 mm x 15 mm x 76 mm) ortasına yerleştirin. Plakayı şaft bağlamasına kaynak yapın. Matkap bir 1/4 inç delik plakanın merkezinde modifiye mil montaj için izin aks ve iki vida delik orta metal plaka lateral içine.
    2. Şaft bağını, köpük silindiri/topuna karşı aks üzerine takın. İkincisi kullanıldığında, hafifçe topun eğriliği sığacak şekilde plaka viraj. Makarayı/topu aks üzerinde düzeltmek için yan deliklere vidalar yerleştirin.
  4. Bir kafes plakasının merkezinde 3/8-32 bir iplik matkap ve dokunun ve döner kodlayıcı takın. Motorun Post tutucuya ekmesine izin vermek için sağ açılı motor Braketinin tabanına bir vida deliği takın. Esnek şaft bağlantısı kullanarak hem döner kodlayıcı hem de motoru aks sonuna takın.
  5. Motor ve döner kodlayıcı için mesajlar kullanarak bir alüminyum ekmek tahtası üzerinde monte koşu bandı yükleyin (Şekil 2). Motor girişlerini hız kumandasını ve döner kodlayıcı çıkışını bilgisayar veri edinme (DAQ) kartının analog girişine bağlayın.
    Not: Rotasyon açısal hız voltaj olarak döner kodlayıcı tarafından kodlanmış ve MATLAB yazılmış AnimalTracker denilen özel yazılım kullanılarak dijimleştirilmiş.
  6. Headplate uyumlu tutucuyu sağ açılı bir braket üzerine takın. Koşu bandı önünde ekmek plakasına sağlam bir yazı takın ve montajlı headplate tutucuyu gönderinin sağ açılı braketi ile takın (Şekil 2). Headplate tutucu çubukların aks ile hizalandığından emin olun, böylece Mouse koşu bandı üzerinde yeterli ve rahat bir yürüyüş pozisyonu kabul edebilir (Şekil 2C).

3. fare Cortex tAKARα sensörü ifadesi

  1. Utero Elektroporasyon içinde
    1. IUE için bir DNA çözümünü, bir plazmid DNA 'Sı (3 − 4 μg/μL; bir CAG promotor, sensör dizisi ve bir Woodchuck hepatit virüsü içeren sensör yapıları) hızlı yeşil boya (enjeksiyon sırasında görselleştirme için)% 0,2 son konsantrasyonu ekleyerek hazırlayın Transkripsiyon sonrası yanıt elemanı [WPRE] translasyonel arttırıcı) çözünür/su veya Tris-EDTA seyreltilmiş.
    2. E1624' de IUE için zamanlanmış hamile kadın fareyi (örn. C57BL/6) hazırlayın. Isoflurane ile fareyi anestezize (indüksiyon için% 4 ve bakım için% 1,5,% 95 O2 ile% 5 CO2) ve 5 mg/kg Meloxicam ve 4 mg/kg Bupivacaine içeren peri-operatif analjeziklerin subkutan enjeksiyonu uygulayın. Karın boşluğunu bir neşter ve bir çift makas ile açın ve uterin boynuzlarını dikkatlice açığa çıkarın.
    3. Daha önce24tarif olarak, bir yarımküre lateral ventrikül embriyo başına 1 ΜL DNA çözeltisi enjekte.
    4. Düzenli ıUE gerçekleştirin24 kortikal nöronlar için korteks pozitif elektrot sonu ayak yerleştirerek ve kullanarak 5 100-ms kare bakliyat (38 V) 1 Hz bir electroporator ile.
      Not: Elektroporasyon için farklı kortikal bölgeler, elektrot son ayak lateral ventrikül göreli yerleştirme değiştirerek hedeflenebilir.
  2. Stereotaktik enjeksiyon
    1. Stereotaktik cerrahi26için postnatal gün 30 bir fare hazırlayın. Adım 3.1.2 ' de açıklandığı gibi fareyi anestezize ve 5 mg/kg Carprofen içeren peri-operatif analjeziklerin subkutan enjeksiyonu uygulayın.
    2. Dilute AAV serotip 2/1 (AAV2/1) şırınga filtrelenmiş (0,2 μm selüloz asetat membranı) fosfat tamponlu salin içinde hsyn-takarα-wpre ' i ampirik olarak belirlenmiş bir titresi (~ 1 x 109− 1 x 1010 genomes/μL) olarak ifade eder.
    3. Motor korteks için aşağıdaki koordinatlarda bir mikroskoptan altında bir el matkap kullanarak bir ~ 500 μm çapı delik matkap: 0,5 mm anterior bregma, 1,2 AA lateral orta çizgi için.
    4. Bir enjektör monte (örneğin, yağ hidrolik manipülatör, özel yapılan dalgıç/Cam Pipet tutucu ile) bir motorlu manipülatör. Enjeksiyon iğnesini bregma-lambda düzlemine göre 15 ° açıyla yerleştirin. Sırasıyla anterior-posterior ve dorsal-ventral eksenler boyunca 700 μm ve 200 μm ilerlemesine eşdeğer x-ve z-Axes arasında diyagonal bir hareket programlamak.
      Not: Amaçlanan görüntüleme alanının hemen üstündeki dokuya zarar vermemek için, AAV parçacıkları bregma-lambda düzlemine göre bir açıyla enjekte edilir.
    5. Enjeksiyon iğnesinin ucunu matkap deliğinin ortasına yerleştirin ve yukarıda açıklanan diyagonal hareketi (~ 25 μm/s) yavaşça çalıştırın. Bu prosedür enjeksiyonu Merkezi 1,2 mm anterior bregma, 1,2 mm lateral orta hat, 0,2 mm Pia altında konumlandıracaktır.
    6. 20 nL seyreltilmiş viral parçacıklar (~ 10 nL/dak) enjekte edilir. En az 10 dakika bekleyin ve yavaşça enjeksiyon iğnesini (~ 12,5 μm/s) geri çekin.
    7. Stereotaktik enjeksiyon prosedürü ve tutkal/sütür cilt26bitirmek.

4. kraniyal pencerenin montajı

  1. IUE (Bölüm 3,1) veya viral partiküllerin stereotaktik enjeksiyonu (Bölüm 3,2), postnatal gün 30 ve 60 arasında tAKARα ifade fareler üzerinde kraniyal pencerenin yerleştirme gerçekleştirin. Viral parçacıklar ile enfekte fare için, virüs enjeksiyonu sonra en az iki hafta kraniyal pencereyi uygulayın. Aşağıdaki detaylar ile daha önce27,28, açıklandığı gibi kranial pencereyi yükleyin. Adım 3.1.2 olarak açıklandığı gibi fareyi anestezize ve peri-operatif analjezikler 0,075 mg/kg Buprenex ve anti-inflamatuar Ajan Dexamethasone 4 mg/kg deri altı enjeksiyon uygulayın.
  2. Periost çıkarın ve boyun kas geri çekin. Cerrahi sonrası boyun kas maruz önlemek için doku yapıştırıcı ile kafatası cildin kenarı tutkal.
  3. Bir neşter kullanarak yavaşça kazarak kafatasından herhangi bir periost kurur ve çıkarın. İstenilen görüntüleme alanını çevreleyen görüntüleme başlığı (8 mm iç çapı) yerleştirin. Yapıştırıcı, siyoakrilat bazlı tutkal kullanarak kafatası headplate, diş akrilik çimento izledi. Optimum yapışma için, headplate maruz ve kurutulmuş kafatası bağlı olduğundan emin olun. Tutkal Hızlandırıcı sertleştirme hızlandırmak için kullanılabilir.
  4. Bir diş matkap kullanarak ve Dura mater maruz (adım 3.2.3 belirtildiği gibi koordinatlar) hedeflenen görüntüleme alanı üzerinde çapı 5 mm 'lik bir daire çizin.
  5. Tüm kraniyal pencereyi kapsayacak şekilde dura yüzeyine, yapay dura olarak da adlandırılan şeffaf polimer ince bir tabaka uygulayın. Polimer korur ve Dura mater stabilize. Dura mater üzerinde steril bir dairesel lamel magazini (5 mm çapı) yerleştirin. Pencerenin kenarlarında uygulanan siyoakrilat tutkal ile lamel magazini sabitleyin ve ardından diş akrilik çimento.

5. In vivo Two-foton floresans ömür boyu görüntüleme mikroskobu

  1. Kranial pencerenin yükleme sonrası 2 hafta içinde veya ötesinde 2pFLIM görüntüleme başlar (Bölüm 4). Fare habituate görüntüleme çalışması başlamadan önce fare sık kullanım ve scru, stres nedeniyle deneysel girişim minimize.
  2. İki foton lazeri kontrol eden yazılımı kullanarak 960 Nm 'ye iki foton uyarma lazer dalga boyu ayarlayın.
  3. Fare% 4 Isoflurane kullanarak anestezize. Kuyruk-tutam ve nefes oranları gözlemleyerek uygun anestezizasyon onaylayın. Yani, Kuyruk-tutam ve solunum hızı hiçbir yanıt olmalıdır ~ 1 saniye başına nefes azaltılmalıdır. Gereksiz prosedür süresini en aza indirmek ve anestezinin sadece 2-3 dakika sürdüğü için göz yağları kullanılmaz.
  4. Anestezileştirilmiş fareyi Motorlu Koşu bandına aktarın (Şekil 2C) ve Mouse 'un headplate 'i koşu bandı kurulumunun headplate tutucusuna bağlayın (Ayrıntılar için bkz. Şekil 2 ). 70% etanol ile Mouse üzerinde kranial pencere lamel magazini yüzeyini temizleyin.
  5. 2pFLIM amacı altında monte fare ile motorlu koşu bandı yerleştirin. Kranial pencere lamel magazini ve amaç arasında damıtılmış su bir damla uygulayın.
  6. Takılı fare anesteziden uyanırken, takılı fare anesteziden uyanıp, Mouse 'un en az 10 dk. monitör solunum hızı için koşu bandı ve mikroskop ortamına acclimated hale bırakın.
  7. Epi-aydınlatma altında enjeksiyon konumuna gidin. Sonraki görüntüleme seanslarında aynı ilgi alanının (YG) görüntülemesinde yardımcı olmak için, aydınlık alan altında belge fiducial özellikleri (yani, kan damarlarını).
  8. Beyin dokusu yayılan ışık dışında herhangi bir gelen ışık ortadan kaldırır. Epi-aydınlatma ışık kaynağını kapatın ve 2pFLIM makinesinin muhafazasının kapanmasını yapın. Donanım komut voltajı kontrolünü değiştirerek 2pFLIM PMT 'yi etkinleştirin.
  9. Bir z-Stack 2pFLIM görüntü kullanarak 2pFLIM edinme yazılımı Flimımage aşağıdaki önerilen ayarları görüntüleme tAKARα-pozitif somata uyanık fareler. Kare ortalaması 3 kare, tarama hızı 2 ms/hat, görüntü boyutu 128 x 128 piksel ve görüş alanı 90 − 100 μm olarak ayarlanır. Hazırlama ve donanım yapılandırmasına göre görüntüleme ayarlarını yapın.
  10. Elde edilen görüntüyü FLIMview 'de inceleyin (ev içinde geliştirilen özel yazılımlar; bkz. Bölüm 6). Foton sayımı optimize etmek ve fotobleaching en aza indirmek için adım 5,9 aşağıdaki görüntüleme ayarlarını yapın.
    Not: Bir tAKARα-pozitif Soma in vivo yaşam boyu görüntüleme için YG 'de uygulanabilir bir entegre foton sayısı, belirli bir uyarıcının sonucu olan sinyal genine bağlı olarak ~ 1000 − 10000 fotonlar ( tartışmakonusuna bakın).
    1. Gerektiğinde, azaltılmış görüş alanı, düşük tarama hızı, artan lazer gücü ve entegre foton sayılarını artırmak ve ömür boyu tahmin hatasını azaltmak için ortalamanın artan kare sayısı kullanın. Aynı zamanda, fotoobleaching en aza indirmek için minimal temel lazer gücü, çerçeve ortalamasını ve tarama hızını kullandığınızdan emin olun.
  11. 5,10 adımda belirlenen ayarları kullanarak z-yığını alımını tekrarlayarak normal bir zaman aralığında görüntü (örn. her 30 − 60 s). Sıfır koşu bandı hızında en az 15 dakika için temel 2pFLIM görüntüleri kazanın.
  12. 2pFLIM görüntüler alırken 15 dk için ~ 15 cm/s koşu bandı rotasyon hızını ayarlayın. Koşu bandı rotasyonunu kapattıktan sonra ≥ 20 dk için görüntüleme işlemine devam edin, zorunlu lokomotif durdurulduktan sonra PKA aktivitesinin süresini değerlendirmek için.

6.2pFLIM görüntü analizi

  1. Elde edilen görüntüleri FLIMview içinde açın ve aşağıdaki parametreleri FLIMview olarak ayarlayın.
    Not:     parametre ayrıntıları tartışma bölümünde açıklanmıştır.
    1. FLIMview 'deki tek foton sayımı (SPC) minimum ve maksimum Aralık alanlarını tıklayın. Genellikle sırasıyla 1,2 − 2 ile 10 − 12 NS arasında değişen uygun minimum ve maksimum SPC aralığı değerini girin.
    2. FLIMview t0 değer alanına tıklayın ve t0 değeri (genellikle ~ 2 NS) girin. FLIMview 'da ömür boyu parlaklık minimum eşik değeri alanına tıklayın ve istenen eşik değerini 5 − 30 fotonlara girin.
  2. Yeni Grup düğmesine (N) tıklayın ve bir deneme grubu adı atayın. Bu, eklenen her FLIM görüntüsünden veri birleştiren bir grup oluşturur.
  3. FLIMview Roi kontrolleri modülünde Roi düğmesine tıklayın ve bir takarα-pozıtıf Soma etrafında bir ROI çizin. Diğer z derinliklerindeki arka plan fotonlardan kaynaklanan sinyal kontaminasyonunu en aza indirmek için, FLIMview 'daki z-yığını kontrol sürgülerinde alt ve üst z sınırını taşıyarak z-yığını aralığını azaltın.
  4. + Butonuna tıklayarak gruba flim görüntüsünü ekleyin (adım 6,2). YG ve ömür boyu tahmin hatası (δ,) için Ortalama yaşam süresini (LT, ortalama foton emisyon süresi [MPET] olarak da adlandırılır) hesaplamak için Calc düğmesine tıklayın.
  5. Kronik 2pflim görüntüleme dizisinde bir sonraki dosyayı açın. 6,4 adımı yineleyin. Zaman içinde doku sürüklenme olabilir, çünkü zaman içinde aynı tAKARα-pozitif Soma ölçmek için YG ve z-Stack aralığının konumunu ayarlamak emin olun.
  6. Grup denetimleri modülünün açılan menüsünde DELTAMPET/mpet0 ' ı seçin. Taban çizgisi # alanına tıklayın ve dizin (ler) girin (örn., 6,3 adımda oluşturulan gruptaki ilk beş görüntü için 1 2 3 4 5 ). Bu, temel kullanım ömrünü hesaplamak için kullanılan görüntüleri (LT0) tanımlayacaktır.
  7. Grafiğe tıklayın tanımlanan ROI 'de deneme sırasında tAKARα 'NıN flim yanıtı (δlt/lt0) içeren bir grafik oluşturmak için. Tek ROIs 'in ömür boyu (ΔLT) karşılık gelen temel ömür (LT0) arasında normalleştirilmiş değişiklikler, farklı roıs genelinde lokomotlama SıRASıNDA PKA aktivitesinin karşılaştırılması için izin verir.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Results

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

FRET-FLıTM sensörleri, neuromodulation ile ilgili cAMP/PKA yolu da dahil olmak üzere birçok farklı sinyalizasyon yollarının görselleştirilmesine olanak tanır. Geçerli protokol, son zamanlarda geliştirilen tAKARα sensörünü 2pFLIM ile kombinasyon halinde kullanır ve kafa sabit davranan farelerde PKA etkinliklerini görselleştirebilir. Çoğu mevcut iki foton mikroskopları, Şekil 1 ' de gösterildiği gibi üç ila dört bileşen ekleyerek 2pFLIM yetenekleriyle yükseltil...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Discussion

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bu protokol, beyin-sabit davranan fareler içinde nöromodülasyon-tetiklenen PKA etkinliğini görselleştirmek için FRET-FLıTM sensörü tAKARα kullanımını gösterir. Bu uygulama, elde edilen FLIM sinyalinin fizyolojik nöroformüller arasındaki olayların17ile alakalı olduğunu göstermek Için tAKARα in vitro ve in vivo kapsamlı test ve karakterizasyonu üzerine kuruludur. Burada, bir in vivo uygulama, motor korteks lokomotif kaynaklı PKA aktivite, beyin sensörü teslim prosedürleri tanımlamak için kullanılır,...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Disclosures

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Yazarların ifşa etmesi gereken hiçbir şey yok.

Acknowledgements

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Biz MS. Tess J. Lameyer, Bayan Ruth Frank, ve Dr Michael A. Muniak düzenlemeler ve yorumlar için, ve Dr Ryohei Yasuda Max Planck Florida 2pFLIM edinme yazılımı için teşekkür ederiz. Bu çalışma iki beyın girişimi Ödülleri U01NS094247 (H.Z. ve Me) ve R01NS104944 (H.Z. ve tum), bir R01 Grant R01NS081071 (tum) ve bir R21 Grant R21NS097856 (H.Z.) tarafından destekleniyordu. Tüm ödüller Ulusal nörolojik hastalıklar Enstitüsü ve Stroke, Amerika Birleşik Devletleri vardır.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
0.2 ve mu; m selüloz asetat şırınga filtresiNalgene190-2520Adım 3.2.2.
16x 0,8 NA suya daldırma objektifiNikonMRP07220Adım 5.5.
3 pinli kabloABD dijitalCA-MIC3-SH-NCAdım 2.5. Dönme sensörünü mikroskobun DAQ girişine bağlamak için
Alüminyum ekmek tahtasıThorlabsMB1012Adım 2.5.
AnimalTracker MATLAB yazılımıN/AN/AAdım 2.5 ve bölüm 5 - 6. Talep üzerine baş yazara sağlanacaktır
Bant geçiren bariyer filtresiChromaET500-40mAdım 1.4.
Kafes plakasıThorlabsCP01Adım 2.4. Dönme sensörü için montaj parçası olarak kullanılır
Mikro matkap için karbon çelik frezeler, 0,5 mm uç çapıFST19007-05Adım 3.2.3. ve 4.4.
Dairesel lamel (5 mm çap)VWR101413-528Adım 4.5.
Özel yapım enjeksiyon iğnesi tutucusuN/AN/AAdım 3.2.4. Talep üzerine baş yazara sağlanan teknik detaylar:
Dental akrilikYates, Motloid44114Adım 4.3. ve 4.5.
Diş matkabı; Microtorque iiRam ürünleri66699Adım 3.2.3. ve 4.4.
Dowsil şeffaf polimerDow Chemical Company3-4680Adım 4.5. Yapay dura
Elektroporasyon elektroduBexLF650P5Adım 3.1.4.
ElektroporatörBexCUY21Adım 3.1.4.
Hızlı yeşil FCFSigma-aldrichF7258-25GAdım 3.1.1.
FLIMimage MATLAB yazılımıN/AN/ABölüm 5. Nazikçe Dr. Ryohei Yasuda, Max Planck Florida,
FLIMview MATLAB yazılımıN/AN/ABölüm 5. ve 6. Talep üzerine baş yazara sağlanacaktır
Köpük uyumlu yapıştırıcı (Gorilla White Glue)Gorilla5201204Adım 2.3.
Başlık plakasıN/AN/AAdım 4.3. Talep üzerine baş yazara verilen teknik detaylar
Başlık tutucusuN/AN/A Adım2.6. Teknik detaylar istek üzerine sağlanır Baş yazar, montaj direği braketi ve dik açılı braket ile birlikte kullanılır
Hidrolik mikromanipülatörNarishigeMO-10Adım 3.2.4.
Krazy tutkalKrazy tutkalKG82648RAdım 4.3. Siyanoakrilat bazlı yapıştırıcı
Düşük gürültülü hızlı fotoçoğaltıcı tüpHamamatsuH7422PA-40 veya H10769PA-40Adım 1.3.
MATLAB 2012bMathworksN/AAdım 2.6 ve bölüm 5 ve 6. Mikroskop toplama ve veri analiz yazılımı
MotorZhengkeZGA37RGStep 2.4'ü
Motor hız kontrol cihazıElenkerEK-G00015A1-1Adım 2.5.
Motorlu mikromanipülatörSutterMP-285Adım 3.2.4.
Montaj tabanıThorlabsBA1SAdım 2.5. PH4 ve TR2 ile birlikte motor ve sensör direkleri için kullanılır
Montaj direğiThorlabsP14Adım 2.6. PB2
Montaj direği tabanıThorlabsPB2Adım 2.6 ile birlikte başlık tutucu direği için kullanılır. P14
Montaj direğiThorlabsC1515Adım 2.6 ile birlikte başlık plakası tutucu direği için kullanılır. Dik açılı braket ve başlık tutucusu ile birlikte kullanılır
Optik direkThorlabsTR2Adım 2.5. BA1S ve PH4 Fosfat tamponlu salin ile birlikte motor ve sensör direkleri için kullanılır
Ν/Αν/&alfa;Adım 3.2.2. Protokol: Cold Spring Harbor Protokolleri 2006, doi: 10.1101/pbd.rec8247
FotodiyotThorlabsFDS010Adım 1.2.
Foton zamanlama sayma modülüBecker ve HicklSPC-150Adım 1.1.
Plazmid: tAKAR&alfa; (CAG-tAKARα-WPRE)Addgene119913Adım 3.1.3.
Direk tutucuThorlabsPH4Adım 2.5. BA1S ve TR2 ile birlikte motor ve sensör direkleri için kullanılır
Dik açılı braketThorlabsAB90Adım 2.6 Montaj direği braketi ve başlık plakası tutucusu ile birlikte kullanılır
Rotasyon kodlayıcıUS dijitalMA3-A10-250-NAdım 2.4.
Kauçuk paspasRubber-CalB01DCR5LUGAdım 2.1.
Şaft bağlantısı (1/4 inç x 1/4 inç)McMaster6208K433Adım 2.3. ve 2.4.
ScanImage 3.6Svoboda Lab/Vidrio TechnologyN/AAdımları 5.9. ve 6.1.
Sinyal ayırıcıBecker ve HicklHPM-CON-02Adım 1.3.1.
Paslanmaz çelik aks (çap 1/4 inç, L = 12 inç)McMaster1327K66Adım 2.3.
Stereotaksik hizalama sistemiDavid kopf1900Adım 3.2. ve 4.1. değiştirilmiş; Sutter mikromanipülatör, ısmarlama enjeksiyon iğnesi tutucusu, hidrolik mikromanipülatör
İki fotonlu mikroskopN/AN/A Bölüm5. HHMI Janelia Araştırma Kampüsü'nden (https://www.janelia.org/open-science/mimms) Modüler in vivo çoklu foton mikroskobu sistemine (MIMMS) dayalı olarak üretilmiştir
Vetbond doku yapıştırıcısı3M14006Adım 3.2.6.
Virüs: tAKAR&alfa; (AAV2/1 hSyn-tAKAR&alfa;-WPRE)Addgene119921Adım 3.2.2.
Beyaz PE köpük rulo (8 inç x 12 inç)İmalat işletmeleri A.Ş.30-2261Adım 2.1.1.
Beyaz polistiren fom top yarısıGrahamSweet200mm çap 2 içi boş yarımAdım 2.1.1.
ZipkickerPACERPT29Adım 4.3. Sertleştirme hızlandırıcı
, , çalıştırmak için kullanılır. braketi

References

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Greengard, P. The Neurobiology of Slow Synaptic Transmission. Science. 294 (5544), 1024-1030 (2001).
  2. Petersen, S. E., Posner, M. I. The attention system of the human brain: 20 years after. Annual Review of Neuroscience. 35 (2), 73-89 (2012).
  3. Sun, Y., Hunt, S., Sah, P. Norepinephrine and Corticotropin-Releasing Hormone: Partners in the Neural Circuits that Underpin Stress and Anxiety. Neuron. 87 (3), 468-470 (2015).
  4. Berke, J. D. What does dopamine mean? Nature Neuroscience. 21 (6), 787-793 (2018).
  5. Chen, Y., et al. Endogenous Gαq-Coupled Neuromodulator Receptors Activate Protein Kinase A. Neuron. 96 (5), 1070-1083 (2017).
  6. Madison, D. V., Nicoll, R. A. Cyclic adenosine 3’,5’-monophosphate mediates beta-receptor actions of noradrenaline in rat hippocampal pyramidal cells. The Journal of Physiology. 372 (1), 245-259 (1986).
  7. Yasuda, H., Barth, A. L., Stellwagen, D., Malenka, R. C. A developmental switch in the signaling cascades for LTP induction. Nature Neuroscience. 6 (1), 15-16 (2003).
  8. Pedarzani, P., Storm, J. F. PKA mediates the effects of monoamine transmitters on the K+ current underlying the slow spike frequency adaptation in hippocampal neurons. Neuron. 11 (6), 1023-1035 (1993).
  9. Brandon, E. P., Idzerda, R. L., McKnight, G. S. PKA isoforms, neural pathways, and behaviour: making the connection. Current Opinion in Neurobiology. 7 (3), 397-403 (1997).
  10. Radnikow, G., Feldmeyer, D. Layer- and Cell Type-Specific Modulation of Excitatory Neuronal Activity in the Neocortex. Frontiers in Neuroanatomy. 12 (January), (2018).
  11. Kennedy, R. T. Emerging trends in in vivo neurochemical monitoring by microdialysis. Current Opinion in Chemical Biology. 17 (5), 860-867 (2013).
  12. Rodeberg, N. T., Sandberg, S. G., Johnson, J. A., Phillips, P. E. M., Wightman, R. M. Hitchhiker’s Guide to Voltammetry: Acute and Chronic Electrodes for In Vivo Fast-Scan Cyclic Voltammetry. ACS Chemical Neuroscience. 8 (2), 221-234 (2017).
  13. Hamel, E. J. O., Grewe, B. F., Parker, J. G., Schnitzer, M. J. Cellular level brain imaging in behaving mammals: An engineering approach. Neuron. 86 (1), 140-159 (2015).
  14. Allen, M. D., Zhang, J. Subcellular dynamics of protein kinase A activity visualized by FRET-based reporters. Biochemical and Biophysical Research Communications. 348 (2), 716-721 (2006).
  15. Zhang, J., Ma, Y., Taylor, S. S., Tsien, R. Y. Genetically encoded reporters of protein kinase A activity reveal impact of substrate tethering. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 98 (26), 14997-15002 (2001).
  16. Chen, Y., Saulnier, J. L., Yellen, G., Sabatini, B. L. A PKA activity sensor for quantitative analysis of endogenous GPCR signaling via 2-photon FRET-FLIM imaging. Frontiers in Pharmacology. 5 (April), 1-12 (2014).
  17. Ma, L., et al. A Highly Sensitive A-Kinase Activity Reporter for Imaging Neuromodulatory Events in Awake Mice. Neuron. 99 (4), 665-679 (2018).
  18. Yellen, G., Mongeon, R. Quantitative two-photon imaging of fluorescent biosensors. Current Opinion in Chemical Biology. 27, 24-30 (2015).
  19. Tang, S., Yasuda, R. Imaging ERK and PKA Activation in Single Dendritic Spines during Structural Plasticity. Neuron. 93 (6), 1315-1324 (2017).
  20. Tillo, S. E., et al. Liberated PKA Catalytic Subunits Associate with the Membrane via Myristoylation to Preferentially Phosphorylate Membrane Substrates. Cell Reports. 19 (3), 617-629 (2017).
  21. Yasuda, R. Imaging spatiotemporal dynamics of neuronal signaling using fluorescence resonance energy transfer and fluorescence lifetime imaging microscopy. Current Opinion in Neurobiology. 16 (5), 551-561 (2006).
  22. Theurkauf, W. E., Vallee, R. B. Molecular characterization of the cAMP-dependent protein kinase bound to microtubule-associated protein 2. Journal of Biological Chemistry. 257 (6), 3284-3290 (1982).
  23. Zhong, H., et al. Subcellular dynamics of type II PKA in neurons. Neuron. 62 (3), 363-374 (2009).
  24. Borrell, V., Yoshimura, Y., Callaway, E. M. Targeted gene delivery to telencephalic inhibitory neurons by directional in utero electroporation. Journal of Neuroscience Methods. 143 (2), 151-158 (2005).
  25. Baumgart, J., Baumgart, N. Cortex-, Hippocampus-, Thalamus-, Hypothalamus-, Lateral Septal Nucleus- and Striatum-specific In utero Electroporation in the C57BL/6 Mouse. Journal of Visualized Experiments. (107), e53303(2016).
  26. Lowery, R. L., Majewska, A. K. Intracranial Injection of Adeno-associated Viral Vectors. Journal of Visualized Experiments. (45), 1-4 (2010).
  27. Mostany, R., Portera-Cailliau, C. A Craniotomy Surgery Procedure for Chronic Brain Imaging. Journal of Visualized Experiments. (12), 18-19 (2008).
  28. Holtmaat, A., et al. Long-term, high-resolution imaging in the mouse neocortex through a chronic cranial window. Nature Protocols. 4 (8), 1128-1144 (2009).
  29. Murakoshi, H., Lee, S. J., Yasuda, R. Highly sensitive and quantitative FRET-FLIM imaging in single dendritic spines using improved non-radiative YFP. Brain Cell Biology. 36 (1-4), 31-42 (2008).
  30. Murakoshi, H., Shibata, A. C. E., Nakahata, Y., Nabekura, J. A dark green fluorescent protein as an acceptor for measurement of Förster resonance energy transfer. Scientific Reports. 5, 1-11 (2015).
  31. Guo, Z. V., et al. Procedures for behavioral experiments in head-fixed mice. PLoS ONE. 9 (2), (2014).
  32. Yu, K., et al. The central amygdala controls learning in the lateral amygdala. Nature Neuroscience. 20 (12), 1680-1685 (2017).
  33. Harvey, C. D., Collman, F., Dombeck, D. A., Tank, D. W. Intracellular dynamics of hippocampal place cells during virtual navigation. Nature. 461 (7266), 941-946 (2009).
  34. Yasuda, R. Imaging intracellular signaling using two-photon fluorescent lifetime imaging microscopy. Cold Spring Harbor Protocols. 7 (11), 1121-1128 (2012).
  35. Mehta, S., et al. Single-fluorophore biosensors for sensitive and multiplexed detection of signalling activities. Nature Cell Biology. 20 (10), 1215-1225 (2018).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Tags

Protein Kinase A ActivityTwo photon Fluorescence Lifetime ImagingIn Vivo ImagingHead fixed Behaving MicetAKAR SensorFRET based PKA SensorIn Utero ElectroporationStereotaxic AAV InjectionChronic Cranial WindowEnforced Locomotion Treadmill

Related Articles