Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliğiniz gereklidir. Giriş yapın veya ücretsiz denemenizi bugün başlatın.

Yöntem makalesi

Domuzda Standart Ventriküler Fibrilasyon Ve İleri Kardiyak Yaşam Desteği Modeli

7.9K görüntüleme

⸱

DOI:

10.3791/60707

⸱

30 Ocak 2020

 ,  ,  ,  , 
1Department of Anesthesiology, University Medical Center of the Johannes Gutenberg-University

Bu makalede

Özet

Kardiyopulmoner resüsitasyon ve defibrilasyon ventriküler fibrilasyonun neden olduğu kardiyak arrest sırasında tek etkili tedavi seçenekleridir. Bu model, bu fizyolojik durumu bir domuz modelinde teşvik etmek, değerlendirmek ve tedavi etmek için standart laştırılmış bir rejim sunar, böylece veri toplama ve analiz için çeşitli fırsatlarla klinik bir yaklaşım sağlar.

Özet

Kardiyak arrest sonrası kardiyopulmoner resüsitasyon, kökeni bağımsız, hastanelerde düzenli olarak karşılaşılan bir tıbbi acil durum yanı sıra preklinik ortamlarda. İnsan deneklerde prospektif randomize çalışmalar tasarlamak zordur ve etik açıdan belirsizdir, bu da kanıta dayalı tedavilerin eksikliğine neden olabilir. Bu raporda sunulan model, büyük bir hayvan modelinde standart bir ortamda kardiyak arrestlerin en sık görülen nedenlerinden birini temsil eder, ventriküler fibrilasyon. Bu, klinik olarak doğru koşullar altında tekrarlanabilir gözlemler ve çeşitli terapötik müdahaleler için izin verir, bu nedenle daha iyi kanıt üretimi ve sonunda geliştirilmiş tıbbi tedavi için potansiyel kolaylaştıran.

Giriş

Kardiyak arrest ve kardiyopulmoner resüsitasyon (CPR) düzenli olarak hastane koğuşlarında tıbbi acil durumlar yanı sıra preklinik acil sağlayıcı senaryoları1,2karşılaşılır. Bu durum için en uygun tedavi karakterize etmek için yoğun çabalar olmuştur iken3,4,5,6, uluslararası kurallar ve uzman önerileri (örneğin, ERC ve ILCOR) genellikle prospektif randomize çalışmaların eksikliği nedeniyle düşük dereceli kanıtlara güveniyor3,4,5,7,8,9. Bu kısmen insan deneylerinde randomize canlandırma protokolleri ile ilgili bariz etik çekinceleri nedeniyle10. Ancak, bu da bir hayat tehdit ve stresli durum 11 ,12ile karşı karşıya zaman sıkı protokol bağlılık eksikliğine işaret edebilir. Bu raporda sunulan protokol, insan deneklere ihtiyaç duymadan mümkün olduğunca geçerli ve doğru olurken değerli, prospektif veriler üreten gerçekçi bir klinik ortamda standartlaştırılmış bir canlandırma modeli sunmayı amaçlamaktadır. Ortak canlandırma yönergelerine uyar, kolayca uygulanabilir ve araştırmaların kritik ama kontrollü bir ortamda çeşitli yönlerini ve müdahaleleri incelemesini ve karakterize etmesini sağlar. Bu 1) tedavi seçeneklerini optimize etmek ve sağkalım oranlarını artırmak için kardiyak arrest ve ventriküler fibrilasyon ve 2) daha kaliteli kanıt altında yatan patolojik mekanizmaların daha iyi anlaşılmasına yol açacaktır.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

Bu protokoldeki deneyler Devlet ve Kurumsal Hayvan Bakım Komitesi (Landesuntersuchungsamt Rheinland-Pfalz, Koblenz, Almanya; Başkan: Dr. Silvia Eisch-Wolf; onay no. G16-1-042). Deneyler ARRIVE yönergelerine uygun olarak gerçekleştirilmiştir. Protokole ortalama ağırlığı 30 ± 2 kg ve 12-16 haftalık yedi anestezili erkek domuz(sus scrofa domestica)dahil edildi.

1. Anestezi, entübasyon ve mekanik ventilasyon13,14

  1. Stresi en aza indirmek için hayvanları mümkün olduğunca uzun süre normal ortamlarında koruyun. Aspirasyon riskini azaltmak için planlanan deneyden önce 6 saat gıda yıkar, ancak su erişimini reddetmeyin.
  2. Ketamin (4 mg/kg) ve kas içi enjeksiyon için bir iğne (20 G) ile boyun veya gluteal kas ketamin (4 mg/kg) ve azaperon (8 mg/kg) kombine enjeksiyon ile yatıştırmak domuzlar. Sedasyon setleri (15-20 dk) kadar hayvanların ahırlarında rahatsız edilmeden bırakın.
    DİkKAT: Eldivenler hayvanları kullanırken kesinlikle gereklidir.
  3. Uyuşturulmuş hayvanları laboratuvara götürün. Taşıma süresi etkili sedasyon süresini geçmemelidir (burada, 30-60 dk).
  4. Kuyruk veya kulağa kesilen bir sensörle periferik oksijen doygunluğu (SpO2)izleyin.
  5. Bir kulak damarına periferik ven kateteri (20 G) takmadan önce cildi alkollü bir dezenfektanla dezenfekte edin. Sprey alan, 1x silin, tekrar sprey ve dezenfektan kuru izin.
  6. Fentanilin intravenöz enjeksiyonu (4 μg/kg) ile analjezi uygulayın. Propofol intravenöz enjeksiyonu ile anestezi indüklemek (3 mg/kg)
  7. Bir vakum şilte ile bir sedye üzerinde supine pozisyonda domuz yerleştirin ve bandaj ile düzeltmek. Atrakurium intravenöz enjeksiyon yoluyla kas gevşetici uygulayın (0.5 mg /kg)
  8. Doğrudan bir köpek havalandırma maskesi (boyut 2) ile noninvaziv ventilasyon başlar. Ventilasyon parametreleri şunlardır: FiO2 (inspiratuar oksijen fraksiyonu) = %100, solunum hızı = 18-20 nefes/dk, pik inspiratuar basınç = <20 cmH20, PEEP (pozitif son ekspiratuar basınç) = 5 cmH20.
  9. Sürekli fentanil infüzyonu (0.1-0.2 mg kg-1 h-1) ve propofol (8-12 mg kg-1 h-1)ile anesteziyi koruyun. Dengeli elektrolit çözeltisi (5 mL kg-1 h-1)sürekli bir infüzyon başlatın.
  10. Ortak bir endotrakeal tüp (ID 6-7) ve bir tanıtıcı ile entübasyon yoluyla hava yolu güvenli. Macintosh bıçağı (boyut 4) ile ortak bir laringoskop kullanın. Bu adım için iki kişi gereklidir.
    1. Bir kişinin bir doku parçası ile dışında dil düzeltir ve diğer el ile burun açar emin olun.
      1. İkinci kişinin domuz gırtlağa gırtlak gırtlağından bir gırtlak ringozini yaptığından emin olun. Epiglottis ortaya çıktığında, laringoskop ventrally hareket ettirin. Epiglottis yukarı kaldırılmalıdır ve ses telleri görünür olacaktır.
        NOT: Epiglottis ventrally hareket etmezse, yumuşak palatin sopa ve tüp ucu ile seferber edilebilir.
  11. Tüpü ses tellerinden dikkatlice geçirin.
    NOT: Trakeanın en dar noktası ses tellerinin seviyesinde değil, subglottiktir. Tüp takılması mümkün değilse, tüpü saat yönünde döndürmeye veya daha küçük bir tüp kullanmaya çalışın.
  12. Tanıtıcıyı tüpten çıkar. 10 mL hava ile manşeti engellemek için 10 mL şırınga kullanın. Manşet basıncını bir manşet yöneticisi (30 cmH2O) ile kontrol edin.
  13. Bir ventilatörle tüp bağlantısından sonra mekanik ventilasyonbaşlatın (PEEP = 5 cmH2O, gelgit hacmi = 8 mL/kg, FiO2 = 0.4, I:E [son kullanma oranına ilham] = 1:2, solunum hızı = değişken bir son gelgit CO2 <6 kPa, genellikle 20-30/dk elde etmek için. Kapnografi yoluyla karbondioksitin düzenli ve periyodik olarak solunması ile tüp pozisyonunun doğru olduğundan emin olun.
  14. Oskültasyon ile çift taraflı havalandırma kontrol edin.
    NOT: Tüpün yanlış yerleştirilmesi durumunda, hava dolu bir mide hızla karın duvarından açıkça görülebilen bir şişkinlik oluşturur. Bu durumda tüpün hemen değiştirilmesi ve mide tüpü takılması gereklidir. Entübasyon başarılı olmazsa, maske ventilasyonuna geri dönve daha küçük bir tüp veya daha iyi bir şekilde hortumu konumlandırmayı deneyin.
  15. Mide içine mide tüpü yerleştirin reflü ve iki kişi ile kusma önlemek için.
    1. Bir doku parçası ile dışında dil düzeltmek ve diğer el ile burun açın.
      1. İkinci bir kişinin domuz gırtlağagOskopisi yaptığından emin olun sonra yemek borusunu görselleştirin. Mide sıvısı boşaltılınceye kadar mide borusunu magill'in forcep'leri ile yemek borusunun içine itin.
        NOT: Görselleştirme zor olabilir. Bu durumda, yemek borusunu açmak için laringoskop ventrally ile tüp kaldırın.

2. Enstrümantasyon

  1. Damar katherizasyonu için femoral alanda kıvrımları düzeltmek için arka bacaklar geri çekmek için bandaj kullanın.
  2. Aşağıdaki malzemeleri hazırlayın: şırıngalar (5 mL, 10 mL ve 50 mL), Seldinger iğnesi, tanıtıcı kılıflar (6 Fr, 8 Fr, 8 Fr), kılıflar için kılavuz teller, üç portlu merkezi venöz kateter (7 Fr, 30 cm) kılavuz tel, kardiyak çıkış monitörü(Tablo Malzemeler) ve bir kateter (5 Fr, 20 cm).
  3. Inguinal alanı dezenfekte edin (bkz. adım 1.6). Bu işlemi 2x tekrarlayın.
  4. Tüm kateterleri tuzlu çözelti ile doldurun. Ultrason sondası üzerine ultrason jeluygulayın. Bir steril fenestrated perde ile inguinal alanı kaplayın.
  5. Ultrason ile sağ femoral damarları tarayıp arter ve damar ı tanımlamak için doppler tekniğini kullanın15. Sağ femoral arteri aksiyel olarak görselleştirin. Probu 90° döndürerek arterin uzunlamasına görünümüne geçin.
  6. 5 mL şırınga ile kalıcı aspirasyon altında Seldinger iğnesi ile ultrason görüntüleme altında sağ femoral arter delin.
    NOT: Bize göre, ultrason seldinger tekniği ile ilişkili önemli ölçüde daha az kan kaybı ve doku travması vasküler erişim diğer yöntemlere göre.
  7. Parlak kırmızı zonklayan kanı gözlemleyerek istediğiniz iğne pozisyonunu doğrulayın. Şırıngayı kesin ve kılavuz teli hızlı bir şekilde sağ femoral artere takın.
  8. Sağ femoral venin uzunlamasına eksenini görselleştirin. Seldinger iğnesini 5 mL şırınga ile kalıcı aspirasyon altına yerleştirin. Herhangi bir koyu kırmızı zonklayan olmayan venöz kan aspire.
    NOT: İğnenin farklı damarlarda doğru pozisyonu görsel olarak doğrulanamıyorsa, kan örneği alın ve kan gazı içeriğini analiz edin. Yüksek oksijen seviyesi arteriyel kan için iyi bir işarettir, düşük oksijen doygunluğu intravenöz pozisyonu gösterir iken.
  9. Şırıngakesildikten sonra sağ femoral vene merkezi venöz kateter için kılavuz teltini takın. Seldinger iğnesini geri çek.
  10. Doğru tel konumunu kontrol etmek için ultrason kullanarak her iki sağ damarları görselleştirin. Sağ arter içine kılavuz tel üzerinden arteriyel tanıtıcı kılıf (6 Fr) itin ve kan aspirasyonu ile pozisyon güvenli.
    NOT: Kılıfı deriye yerleştirmek zor olabilir. Daha iyi yerleşimi kolaylaştırmak için tel boyunca küçük bir kesi yapmak yararlı olabilir.
  11. Sağ femoral ven içine merkezi venöz hattı konumlandırmak için Seldinger tekniğini kullanın. Tüm bağlantı noktalarını aspire edin ve tuzlu çözelti ile yıkayın.
  12. Sol femoral arter (8 Fr) ve femoral ven (8 Fr) içine Seldinger tekniğinde diğer tanıtıcı kılıfları eklemek için sol inguinal tarafında aynı işlemi gerçekleştirin.
  13. Sağ arteriyel tanıtıcı kılıfı ve santral venöz kateterini invaziv hemodinamik ölçümü için iki transdüser sistemle bağlayın. Her iki dönüştürücüyü de kalp seviyesinde konumlandırın.
  14. Sistemi sıfıra ayarlamak için atmosfere açık her iki dönüştürücünün ağaç yolu stopcocklarını değiştirin.
    NOT: Makul değerler üretmek için sistemde herhangi bir hava kabarcıkları ve kan lekeleri önlemek için gereklidir.
  15. Periferik ven den merkezi venöz bir çizgi için anestezi korumak için tüm infüzyon değiştirin. 15 dk'lık bir iyileşmeden sonra temel değerleri (hemodinamik, spirometrics ve kardiyak monitörden diğer çıktılar; bkz. bölüm 3) alın.
  16. Ventriküler fibrilasyon başlatın (bkz. bölüm 4).

3. Nabız kontur kardiyak çıkışı

  1. Transpulmonal termosusulem kateteri sağ arteriyel tanıtıcı kılıfına takın.
    NOT: Klinik tıpta termosulü seyreltme kateterleri doğrudan Seldinger tekniği ile yerleştirilir. Ancak, bir tanıtıcı kılıfı ile yerleştirme de mümkündür. Önerilen protokolde, kılıflar farklı deneyler boyunca enstrümantasyonda maksimum esneklik için standartlaştırılmış vasküler erişim olarak yerleştirilir.
  2. Kateteri kardiyak monitör sisteminin arteriyel teliyle bağlayın. Arteriyel transdüseri doğrudan kardiyak monitör portu ile değiştirin ve adım 2.14'te açıklandığı gibi yeniden kalibre edin. Kardiyak monitör sisteminin venöz ölçüm ünitesini sol venöz tanıtıcı kılıfile bağlayın.
    NOT: Venöz ve arteriyel probları mümkün olduğunca birbirinden ayırmak gerekir; aksi takdirde, venöz sisteme soğuk su uygulanması arteriyel ölçümü etkileyeceğinden, ölçüm bozulacaktır. PiCCO2 ile ilgili daha fazla bilgi daha önce16sağlanmıştır.
  3. Kardiyak monitör sistemini açın. Yeni bir hastanın ölçülmekte olduğunu doğrulayın. Boyutu ve ağırlığı girin.
  4. Kategoriyi yetişkinlere çevirin. Protokol adını ve kimliğini girin. Çıkış'atıklayın.
  5. Enjeksiyon hacmini 10 mL'ye ayarlayın.
    NOT: Seçilen enjeksiyon çözeltisinin hacmi yazılımda değiştirilebilir. Daha yüksek bir birim ölçülen değerleri daha geçerli hale getirir. Herhangi bir hemodilusyon etkileri önlemek için bu deney için küçük bir hacim seçildi.
  6. Merkezi venöz basıncı girin.
  7. Üç yönlü stopcock'u atmosfere açın.
  8. Sistem kalibrasyonu için Sıfır'a tıklayın. Çıkış'atıklayın.
  9. Sürekli kardiyak çıkış ölçümlerini kalibre edin.
    1. TD (termosuleseyreltme) üzerine tıklayın. 10 mL'lik şırıngada 4 °C sıcaklıkta fizyolojik bir tuzlu çözelti hazırlayın. Başlat'atıklayın.
    2. Venöz ölçüm ünitesine hızlı ve istikrarlı bir şekilde 10 mL soğuk tuzlu çözelti enjekte edin. Ölçüm tamamlanana ve sistem tekrar isteyene kadar bekleyin.
    3. Üç ölçüm tamamlanana kadar önceki adımı tekrarlayın. Sistem tüm parametrelerin ortalamasını hesaplar. Çıkış'atıklayın.
      NOT: Ölçümler kalibrasyon tamamlandıktan hemen sonra başlayacaktır. CPR sırasında kardiyak debi ölçümleri düzenli olarak yapılmamasına rağmen, yeterli kalibrasyon17,18sonra makul sonuçlar teyit edilmiştir.

4. Ventriküler fibrilasyon ve mekanik resüsitasyon

  1. Gövde üzerinde anterior-posterior pozisyonda defibrilatör yama elektrotlar yerleştirin. Posterior elektrot sol orta hemithorax üzerine yerleştirilmelidir.
    NOT: Optimum iletimi kolaylaştırmak için fazla saç ve kiri gidermek için jilet kullanın.
  2. Elektrotları bir defibrilatöre bağlayın ve bir EKG kurun.
  3. Vakum şiltenin içindeki domuzu hareketsiz hale getir. CPR sırasında istenmeyen hareketi önlemek için yatağı söndürün. Uzuvların kontrol fiksasyonu.
  4. Göğüs sıkıştırma cihazıyerleştirin (burada, LUCAS-2) göğüs etrafında ve vakum yatak altında üreticinin önerilerine göre. Basınç yastığını ortanca pozisyonda sternumun alt üçte biri kadar ayarlayın.
  5. Göğüs sıkıştırma cihazını açın ("güç" düğmesi) ve basınç yastığını cilt seviyesine indirin. Protokolde aksi belirtilmediyse sıkıştırma sıklığını 100/dk olarak ayarlayın. Sıkıştırma cihazını göğüs sıkıştırmaları için hazırlamak için Duraklat düğmesine basın.
  6. I.v. kılıfından sol femoral vene bir fibrilasyon/pacing kateteri yerleştirin.
  7. Kateter manşetini 1-2 mL hava ile şişirin. Şişirilmiş manşeti sağ atriyumun yanına (genellikle yaklaşık 50 cm mesafe) yerleştirilene kadar yavaşça itin.
  8. Kateter elektrotlarını yeterli bir osiloskop/fonksiyon jeneratörüne bağlayın. Fibrilasyon parametrelerini istenilen değerlere ayarlayın (burada 50-200 Hz arasında frekansları olan 13.8 V akım).
  9. Jeneratörü açın ve EKG değişikliklerini izleyin. EKG'de aritmiler tespit edilene kadar kateteri yavaşça ileri doğru hareket ettirin.
    DİkKAT: Kısa devreleri ve muhtemelen yaşamı tehdit eden durumları önlemek için kateterin ucundaki ayrı elektrotların insan derisine veya birbirine dokunmasını önleyin.
  10. Ventriküler fibrilasyon saptayana kadar kateter pozisyonunu dikkatlice değiştirin.
    NOT: Hemen fibrilasyon adüklemek zor olabilir. EKG etkilerinin görülebileceği bir pozisyona ulaşılırsa, frekansı değiştirmek veya jeneratörü tekrar tekrar açıp kapatmak bazen yararlı olabilir.
  11. Ventriküler fibrilasyon onaylandıktan sonra jeneratörü kapatın, balonu söndürün ve fibrilasyon kateterini çıkarın. Fibrilasyonunu gerektiğinde ventilasyonlu veya havalandırmasız koruyun.
  12. Sıkıştırma cihazındaki Oynat düğmesine basarak mekanik göğüs sıkıştırmalarını başlatın. Göğüs sıkıştırmalarını kesmek için sıkıştırma aygıtındaki Duraklat düğmesine basın.
  13. EKG desenlerini analiz edin. Ventriküler fibrilasyon devam ederse, defibrilasyon hazırlayın.
    1. Defibrilatör menüsünde Manuel modu girin. 200 J biphasic enerji ayarlayın.
    2. Yükle düğmesine basın. Hazırlanmış bir şok değerini belirtmek için akustik sinyalin aã§Ä±lananakadar beklemesi. Elektrik çarpmasını başlatın.
      DİkKAT: Sadece deneyimli kullanıcılar defibrilatörler ve fibrilasyon kateterleri kullanmalıdır. Hatalı veya yıpranmış malzemeler için herhangi bir endikasyon varsa herhangi bir şok başlatılmalıdır. Bir elektrik şoku başlatılması her zaman açıkça odadaki her kişi için duyulabilir ilan edilmelidir, ve defibrilasyon başlatan kişi şok bırakmadan önce hayvan veya sedye dokunmadan kimsenin emin olmak için sorumludur.
      NOT: Burada kılavuz tabanlı resüsitasyon protokolü kullanılmıştır (yani, 2 dk göğüs kompresyonu, EKG değerlendirmesi, şok, 2 dk göğüs kompresyonu, adrenalin yönetimi vb.). Daha fazla bilgi için, yönergeleri4ile danışın.
  14. Spontan sirkülasyon (ROSC) dönüşü durumunda, göğüs kompresyonunu durdurun, ventilasyona devam edin ve yoğun ve gerektiği kadar uzun süre izleme uygulayın.
    NOT: Anestezik ilaç uygulaması protokole bağlı olarak CPR sırasında kesintiye uğrayabilir veya kesilmeyebilir. Sedasyon kesilirse, infüzyon teyit ROSC üzerine yeniden başlatılmalıdır.
  15. Deneysel başarısızlığa yol açan ROSC fazında kardiyorespiratuar bozulmayı önlemek için sıvı ve katekolamin uygulamasının yanı sıra standart solunum ve ventilasyon ayarlarının yönlendirilmesi için hedefe yönelik bir yaklaşım önerilmektedir.

5. Deney sonu ve ötenazi (ROSC durumunda)

  1. Merkezi venöz çizgiye 0.5 mg fentanil enjekte edin. 5 dk. Merkezi venöz hattına 200 mg propofol enjekte edin.
  2. 40 mmol potasyum klorür enjeksiyonu ile hayvan ötenazi.
  3. Gerektiğinde organ kaldırma/fiksasyon veya analizler yapın.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

Yedi domuzda kalp durmasına neden oldu. CPR sonrası spontan dolaşım dönüşü dört Domuzda (W) sağlandı ortalama 3 ± 1 biphasik defibrilasyon. Sağlıklı ve yeterli anestezi domuzlar tüm deney boyunca titreme ve ajitasyon belirtileri olmadan supine pozisyonda kalmalıdır. Ortalama arteriyel kan basıncı fibrilasyon başlamadan önce 50 mmHg altına düşmemelidir18. Optimal sonuçlar için kan gazı analizleri yapılabilir ve sıcaklık dahil tüm değerler normale getirilmelidir.

...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

Bir domuz modelinde anestezi ile ilgili bazı önemli teknik sorunlar daha önce grubumuz tarafından tarif edilmiştir13,14. Bu stres ve hayvanlar için gereksiz ağrı sıkı kaçınma dahil, hava yolu yönetimi sırasında olası anatomik sorunlar, ve özel personel gereksinimleri19.

Ayrıca, ultrason eşliğinde kateterizasyonun yararları daha önce vurgulanmış ve enstrümantasyon sırasında vasküler hasarları önlemek için tercih ...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

LUCAS-2 cihazı stryker/Physio-Control, Redmond, WA, USA tarafından deneysel araştırma amacıyla koşulsuz olarak sağlanmıştır. Hiçbir yazar çıkar çatışması bildirmez.

Teşekkürler

Yazarlar mükemmel teknik destek için Dagmar Dirvonskis teşekkür etmek istiyorum.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
1 M- Kaliumklorid-Lö sung 7,46% 20mlFresenius, Kabi Deutschland GmbHpotasyum klorür
Arterenol 1mg/ml 25 mlSanofi-Aventis, Seutschland GmbHnorepinefrin
Atracurium Hikma 50mg/5mlHikma Pharma GmbH, Martinsriedatracurium
BD Discardit II Spritze 2,5,10,20 mlBecton Dickinson S.A. Carretera Mequinenza Fraga, İspanyaşırınga
BD Luer ConnectaBecton Dickinson İnfüzyon Terapisi AB Helsingborg, Schweden3 musluk
BD Microlance 3 20 GBecton Dickinson S.A. Carretera Mequinenza Fraga, İspanyacanula
CorPatch Kolay ElektrotlarCorPuls, Kaufering, Almanyadefibrilatör elektrotları
Corpuls 3Corpuls, Kaufering, Almanyadefibrilatör
Datex Ohmeda S5GE Healthcare Finland Oy, Helsinki, Finlandiyahemodinamik monitör
Mühströ m Bakım İstasyonuGE Heathcare, Madison ABDventilatör
Fentanil-Janssen 0,05mg/mlJanssen-Cilag GmbH, Neussfentanil
Fü hrungsstab, Durchmesser 4.3Rü endotrakeal tüp tanıtıcı
Incetomat-line 150 cmFresenius, Kabi Deutschland GmbHperfusorline
Ketamin-Hameln 50mg/mlHameln Pharmaceuticals GmbHketamin
laringoskopRü laringoskop
logicath 7 Fr 3 lümen 30cm langSmith- Medical Deutschland GmbHmerkezi venöz kateter
LUCAS-2Physio-Control/Stryker, Redmond, WA, ABDgöğüs kompresyon cihazı
Masimo Radical 7Masimo Corporation Irvine, Ca 92618 ABDperiferik oksijen doygunluğu
Neofox Oksijen sensörü 300 mikron fiberOkyanus optik Largo, FL USAultra hızlı pO2 ölçümleri
ve Ouml; lsä Eur NF C18H34O2 M0282,47g/mol Dichte 0,9Applichem GmbH Darmstadt, Deutschlandoleik asit
Orijinal Perfüzör şırınga 50ml Luer LockB.Braun Melsungen AG, Almanyaperfüzörşinge
Osypka pace, 110 cmOsypka Medical GmbH, Rheinfelden-Herten, AlmanyaPacing/fibrilasyon kateteri
PA-Katheter Swan Ganz 7,5 Fr 110cmEdwards Lifesciences LLC, Irvine CA, ABDPAC
Perkütan kılıf tanıtıcı seti 8,5 und 9 Fr, 10 cm, entegre hemostaz valfi/yan paneli ileArrow international inc. Okuma, PA, ABDtanıtıcı kılıf
Perfusör FM BraunB.Braun Melsungen AG, Almanyaşırınga pompası
Propofol %2 20mg/ml (50ml şişeler)Fresenius, Kabi Deutschland GmbHpropofol
Radifocus Introducer II, 5-8 FrTerumo Corporation Tokio, Japonyaintroducer kılıfı
Rü Schelit Super Safety Clear >ID 6/ 6,5 /7,0 mmTeleflex Medical Sdn. Bhd, Malezyaendotrakeal tüp
Seldinger Nadel mit Fixierflü jelSmith- Medical Deutschland GmbHseldinger canula
Sonosite Micromaxx UltrasoundsystemSonosite Bothell, WA, ABDultrason
Paslanmaz Macintosh Grö ß e 4Welsch Allyn69604laringoskop için bıçak
Stresnil 40mg/mlLilly Deutschland GmbH, Abteilung Elanco Hayvan Sağlığıazaperone
Vasofix Güvenlik 22G-16GB.Braun Melsungen AG, Almanyavenöz kateter
Voltcraft Model 8202Voltcraft, Hirschau, Almanyaosiloskop/fonksiyon üreteci
sch sch

Kaynaklar

  1. Grasner, J. T., et al. EuReCa ONE-27 Nations, ONE Europe, ONE Registry: A prospective one month analysis of out-of-hospital cardiac arrest outcomes in 27 countries in Europe. Resuscitation. 105, 188-195 (2016).
  2. Raffee, L. A., et al. Incidence, Characteristics, and Survival Trend of Cardiopulmonary Resuscitation Following In-hospital Compared to Out-of-hospital Cardiac Arrest in Northern Jordan. Indian Journal of Critical Care Medicine. 21 (7), 436-441 (2017).
  3. Brooks, S. C., et al. Part 6: Alternative Techniques and Ancillary Devices for Cardiopulmonary Resuscitation: 2015 American Heart Association Guidelines Update for Cardiopulmonary Resuscitation and Emergency Cardiovascular Care. Circulation. 132 (18 Suppl 2), S436-S443 (2015).
  4. Callaway, C. W., et al. Part 4: Advanced Life Support: 2015 International Consensus on Cardiopulmonary Resuscitation and Emergency Cardiovascular Care Science With Treatment Recommendations. Circulation. 132 (16 Suppl 1), S84-S145 (2015).
  5. Sandroni, C., Nolan, J. ERC 2010 guidelines for adult and pediatric resuscitation: summary of major changes. Minerva Anestesiology. 77 (2), 220-226 (2011).
  6. Tanaka, H., et al. Modifiable Factors Associated With Survival After Out-of-Hospital Cardiac Arrest in the Pan-Asian Resuscitation Outcomes Study. Annals of Emergency Medicine. , (2017).
  7. Kleinman, M. E., et al. Part 5: Adult Basic Life Support and Cardiopulmonary Resuscitation Quality: 2015 American Heart Association Guidelines Update for Cardiopulmonary Resuscitation and Emergency Cardiovascular Care. Circulation. 132 (18 Suppl 2), S414-S435 (2015).
  8. Link, M. S., et al. Part 7: Adult Advanced Cardiovascular Life Support: 2015 American Heart Association Guidelines Update for Cardiopulmonary Resuscitation and Emergency Cardiovascular Care. Circulation. 132 (18 Suppl 2), S444-S464 (2015).
  9. Olasveengen, T. M., et al. 2017 International Consensus on Cardiopulmonary Resuscitation and Emergency Cardiovascular Care Science With Treatment Recommendations Summary. Circulation. 136 (23), e424-e440 (2017).
  10. Rubulotta, F., Rubulotta, G. Cardiopulmonary resuscitation and ethics. Revista Brasileira de Terapia Intensiva. 25 (4), 265-269 (2013).
  11. McInnes, A. D., et al. The first quantitative report of ventilation rate during in-hospital resuscitation of older children and adolescents. Resuscitation. 82 (8), 1025-1029 (2011).
  12. Maertens, V. L., et al. Patients with cardiac arrest are ventilated two times faster than guidelines recommend: an observational prehospital study using tracheal pressure measurement. Resuscitation. 84 (7), 921-926 (2013).
  13. Ziebart, A., et al. Standardized Hemorrhagic Shock Induction Guided by Cerebral Oximetry and Extended Hemodynamic Monitoring in Pigs. Journal of Visualized Experiments. (147), (2019).
  14. Kamuf, J., et al. Oleic Acid-Injection in Pigs As a Model for Acute Respiratory Distress Syndrome. Journal of Visualized Experiments. (140), (2018).
  15. Weiner, M. M., Geldard, P., Mittnacht, A. J. Ultrasound-guided vascular access: a comprehensive review. Journal of Cardiothoracic and Vascular Anesthesiology. 27 (2), 345-360 (2013).
  16. Mayer, J., Suttner, S. Cardiac output derived from arterial pressure waveform. Current Opinions in Anaesthesiology. 22 (6), 804-808 (2009).
  17. Hartmann, E. K., et al. Ventilation/perfusion ratios measured by multiple inert gas elimination during experimental cardiopulmonary resuscitation. Acta Anaesthesiologica Scandanivica. 58 (8), 1032-1039 (2014).
  18. Ruemmler, R., et al. Ultra-low tidal volume ventilation-A novel and effective ventilation strategy during experimental cardiopulmonary resuscitation. Resuscitation. 132, 56-62 (2018).
  19. Wani, T. M., et al. Upper airway in infants-a computed tomography-based analysis. Paediatric Anaesthesia. 27 (5), 501-505 (2017).
  20. Tuna Katircibasi, M., et al. Comparison of Ultrasound Guidance and Conventional Method for Common Femoral Artery Cannulation: A Prospective Study of 939 Patients. Acta Cardiol Sin. 34 (5), 394-398 (2018).
  21. Hartmann, E. K., et al. Correlation of thermodilution-derived extravascular lung water and ventilation/perfusion-compartments in a porcine model. Intensive Care Medicine. 39 (7), 1313-1317 (2013).
  22. Hartmann, E. K., et al. An inhaled tumor necrosis factor-alpha-derived TIP peptide improves the pulmonary function in experimental lung injury. Acta Anaesthesiol Scand. 57 (3), 334-341 (2013).
  23. Ziebart, A., et al. Low tidal volume pressure support versus controlled ventilation in early experimental sepsis in pigs. Respiratory Research. 15, 101(2014).
  24. Tan, D., et al. Duration of cardiac arrest requires different ventilation volumes during cardiopulmonary resuscitation in a pig model. Journal of Clinical Monitoring and Computing. , (2019).
  25. Kill, C., et al. Mechanical ventilation during cardiopulmonary resuscitation with intermittent positive-pressure ventilation, bilevel ventilation, or chest compression synchronized ventilation in a pig model. Critical Care Medicine. 42 (2), e89-e95 (2014).
  26. Speer, T., et al. Mechanical Ventilation During Resuscitation: How Manual Chest Compressions Affect a Ventilator's Function. Advances in Therapy. 34 (10), 2333-2344 (2017).
  27. Kill, C., et al. Chest Compression Synchronized Ventilation versus Intermitted Positive Pressure Ventilation during Cardiopulmonary Resuscitation in a Pig Model. PLoS ONE. 10 (5), e0127759(2015).
  28. Newell, C., Grier, S., Soar, J. Airway and ventilation management during cardiopulmonary resuscitation and after successful resuscitation. Critical Care. 22 (1), 190(2018).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Etiketler

Kardiyak ArrestDomuz ModeliG s Bas CihazDefibrilat r PedleriTranspulmoner Termodil syonFibrilasyon stim lasyon KateteriMekanik G s Bas larSpontan Dola m n Geri D nKardiyopulmoner Res sitasyon
Domuzda Standart Ventriküler Fibrilasyon Ve İleri Kardiyak Yaşam Desteği Modeli
Bize ulaşın
Kütüphaneye tavsiye et

Gizlilik

Kullanım Şartları

İlkeler

Telif hakkı © 2026 MyJoVE Corporation. Tüm hakları saklıdır.